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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del NaClO sobre la actividad de la polifenol oxidasa en explantes de hoja y peciolo de dos genotipos de Jatropha curcas L.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The implementation of plant tissue culture of Jatropha curcas encounters many problems such as the browning caused by phenolic oxidation. Therefore, a rapid methodology for comparison of treatments that can prevent this oxidation of the plant tissue is required. The determination of the enzyme polyphenol oxidase (PPO) activity could be used for this purpose due to the association between browning and the activity of the enzyme in J. curcas. In the present investigation the effect of sodium hypochlorite (NaClO) as a disinfecting agent on PPO enzyme activity in leaf and petiole explants of INI-3 and INI-6 genotypes of the species was evaluated. The results showed that the NaClO caused an increase in the PPO activity of leaves and petioles in both genotypes, thus indicating that the disinfectant is an indirect agent that can promote tissue browning in the plant. In addition, significant differences of PPO activity were found in both explant types and genotypes.]]></p></abstract>
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<kwd lng="es"><![CDATA[Desinfección superficial]]></kwd>
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</front><body><![CDATA[ <p style="page-break-after: auto" align="center"><b><font face="Verdana"> <span lang="ES-MX" style="text-transform: none; background: white">Efecto del</span><span lang="ES-MX" style="background: white"> </span><span lang="ES-MX" style="text-transform: none; background: white">NaClO  sobre la actividad de la polifenol oxidasa en explantes de hoja y peciolo de dos  genotipos de</span><span lang="ES-MX" style="background: white"> </span><i> <span lang="ES-MX" style="text-transform: none; background: white">Jatropha  curcas</span></i></font></b><span class="ecxapple-converted-space"><span lang="ES-MX" style="text-transform: none; font-weight: 700; background: white"><font face="Verdana"> </font></span></span> <span lang="ES-MX" style="font-weight: 700; background: white"> <font face="Verdana">L.</font></span></p>     <p style="page-break-after: auto" align="center"><font face="Verdana"> <font size="2">Iván Pequeño-Granado<sup>1</sup>, Guillermo Martínez-Ávila<sup>2</sup>,  Víctor Aguirre-Arzola<sup>2</sup>, Leobardo Iracheta-Donjuan<sup>3</sup>,  Virgilio Mojica-Marín<sup>4</sup>, Gilberto Rodríguez-Pérez<sup>5</sup> y María  Ojeda-Zacarías</font><sup><font size="2">1</font></sup></font></p>     <p style="page-break-after: auto; text-align: justify"><font face="Verdana"> <span lang="ES-MX" style="background: white"><sup><font size="2">1</font></sup><font size="2">  Universidad Autónoma de Nuevo León. Facultad de Agronomía. C.P. 66700. Marín,  Nuevo León, México.</font></span></font></p>     <p style="page-break-after: auto; text-align: justify"><font face="Verdana"> <span lang="ES-MX" style="background: white"><sup><font size="2">2</font></sup><font size="2">  Universidad Autónoma de Nuevo León. Facultad de Agronomía.. C.P. 66050.  Escobedo, Nuevo León, México.</font></span></font></p>     <p style="page-break-after: auto; text-align: justify"><font face="Verdana"> <span lang="ES-MX" style="background: white"><sup><font size="2">3</font></sup><font size="2">  Instituto Nacional Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias. Rosario  Izapa. C.P. 30870. Chiapas, México.</font></span></font></p>     <p style="page-break-after: auto; text-align: justify"><font face="Verdana"> <span lang="ES-MX" style="background: white"><sup><font size="2">4</font></sup><font size="2">  Universidad Juárez del Estado de Durango, Facultad de Ciencias Químicas.  Durango, Durango, México.</font></span></font></p>     <p style="page-break-after: auto; text-align: justify"><font face="Verdana"> <span lang="ES-MX" style="background: white"><sup><font size="2">5</font></sup><font size="2">  Instituto Tecnológico de Roque. C.P. 38110. Roque Celaya, Guanajuato, México.</font></span></font></p>     <p align="justify"><b><span lang="ES-MX"><font size="2" face="Verdana">RESUMEN</font></span></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La implementación del cultivo  de tejidos vegetales de <i>Jatropha curcas</i> enfrenta importantes problemas  como es el oscurecimiento producido por la oxidación fenólica. Por tal razón, es  necesario el desarrollo de una metodología rápida para la comparación de  tratamientos que puedan controlar el oscurecimiento de los tejidos vegetales. La  determinación de la actividad de la enzima polifenol oxidasa (PPO) puede ser  utilizada con este fin, debido a la asociación que existe entre el  oscurecimiento y la actividad de esta enzima en <i>J. curcas</i>. En la presente  investigación se analizó el efecto del agente desinfectante hipoclorito de sodio  (NaClO) sobre la actividad de la enzima PPO en explantes de hoja y peciolo en  los genotipos INI-3 y INI-6 de esta especie. Los resultados mostraron que el  NaClO al 3,24 % ocasionó el aumento en la actividad de la PPO en hojas y  pecíolos de ambos genotipos, lo que indica que este desinfectante es causante  indirecto del oscurecimiento de los tejidos de la planta. Además se encontraron  diferencias significativas en la actividad de la PPO entre explantes y entre  genotipos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">Palabras clave  adicionales: </font></b><font size="2">Desinfección superficial, <i>in vitro, </i><span style="color: black">oscurecimiento</span>, PPO</font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"> <span lang="EN-GB" style="font-weight: 700; background: white"> <font size="2" face="Verdana">NaClO effect on polyphenol oxidase activity in  leaf and petiole explants of two of <i>Jatropha curcas</i> L. genotypes</font></span></p>     <p align="justify"><b><span lang="EN-GB"><font size="2" face="Verdana">ABSTRACT</font></span></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><span lang="EN-US"><font size="2">The  implementation of plant tissue culture of <i>Jatropha curcas</i> encounters many  problems such as the browning caused by phenolic oxidation. Therefore, a rapid  methodology for comparison of treatments that can prevent this oxidation of the  plant tissue is required. The determination of the enzyme</font></span><font size="2"><span lang="EN-GB">  polyphenol oxidase (</span></font><span lang="EN-US"><font size="2">PPO)  activity could be used for this purpose due to the association between browning  and the activity of the enzyme in <i>J. curcas</i>. In the present investigation  the effect of sodium hypochlorite (NaClO) as a disinfecting agent on PPO enzyme  activity in leaf and petiole explants of INI-3 and INI-6 genotypes of the  species was evaluated. The results showed that the NaClO caused an increase in  the PPO activity of leaves and petioles in both genotypes, thus indicating that  the disinfectant is an indirect agent that can promote tissue browning in the  plant. In addition, significant differences of PPO activity were found in both  explant types and genotypes.</font></span></font></p>     <p align="justify"><b><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana"> Additional key words: </span></b> <span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">Browning</span><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana; color: black">, </span><i><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">in vitro</span></i><span style="font-size: 10.0pt; font-family: Verdana">,  PPO, surface disinfection</span></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Recibido: Febrero 13,  2015&nbsp;&nbsp;&nbsp;Aceptado: Agosto 31, 2015</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El cultivo de tejidos vegetales  es una herramienta de la biotecnología, comúnmente utilizada en estudios de  mejoramiento de plantas, producción de metabolitos secundarios, transformación  genética y propagación clonal (Bhojwani y Dantu, 2013). No obstante, la  implementación de esta herramienta presenta importantes problemas como la  contaminación microbiana (Hernández y González, 2010), la cual puede producir  cuantiosas pérdidas de material, tanto en los trabajos de investigación como en  la micropropagación comercial a causa del desarrollo de microorganismos  patógenos y no patógenos que crecen rápidamente en medios de cultivo e infestan  el material vegetal de crecimiento lento (Cassells, 2011). Debido a esto, es  preponderante llevar a cabo la desinfección de tejidos vegetales para su  establecimiento <i>in vitro</i>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Uno de los métodos más  empleados para el control de la contaminación microbiana en cultivo de tejidos  vegetales consiste en la inmersión de los explantes en etanol, seguido de una  inmersión en NaClO de 1 a 3 % (Mroginski et al., 2010). Sin embargo, este  procedimiento que puede ocasionar daño a los tejidos vegetales. Por otro lado,  en numerosas plantas, principalmente en especies leñosas, los explantes liberan  fenoles dentro del medio de cultivo que se oxidan desarrollándose una tonalidad  oscura o marrón en los tejidos y perjudicando su crecimiento en el cultivo <i>in  vitro</i> (De Filippis, 2014).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La oxidación fenólica en el  cultivo de tejidos es causada por la acción de la enzima polifenol oxidasa (PPO)  que se libera o sintetiza cuando los tejidos sufren lesiones (Azofeifa, 2009).  Los tejidos seleccionados para el cultivo <i>in vitro</i> sufren lesiones  principalmente en la extirpación y desinfección del explante, donde ambas  prácticas son un factor importante sobre el oscurecimiento, y por lo tanto en la  tasa de supervivencia del material (Tabiyeh et al., 2006; Chien-Ying et al.,  2009).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La enzima PPO ocasiona  oscurecimiento en <i>J. curcas</i> L., debido a que cataliza la reacción entre  variados compuestos fenólicos y oxígeno molecular para producir quinonas (He et  al., 2009), las cuales pueden inhibir el crecimiento e incluso causar la muerte  celular de explantes. Por lo anterior, el presente estudio tuvo por objetivo  analizar el efecto del NaClO sobre la actividad enzimática de la PPO en  explantes de hojas y pecíolos de dos genotipos de <i>J. curcas</i> L., una  planta de la familia Euphorbiaceae utilizada como medicinal y cuyas semillas  contienen un aceite no comestible que se utiliza como biocombustible en motores  diesel.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Esta investigación se realizó  en el Laboratorio de Biotecnología Vegetal de la Facultad de Agronomía de la  Universidad Autónoma de Nuevo León (FAUANL), Marín, N.L. México, durante el  periodo de agosto-septiembre de 2014. El material vegetal se colectó en la  FAUANL de árboles en campo de <i>J. curcas</i>, proporcionados por el banco de  germoplasma de <i>J. curcas</i> del Instituto Nacional de Investigaciones  Forestales, Agrícolas y Pecuarias (INIFAP), Campo Experimental Rosario Izapa,  ubicada en el municipio Tuxtla Chico, estado de Chiapas, México.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La desinfección consistió en la  selección de hojas y pecíolos del tercer nudo a partir de la yema terminal de  manera descendente hacia la base del tallo recolectados de árboles establecidos  en campo en condiciones óptimas de saneamiento. El material vegetal fue lavado  en una solución de jabón líquido y agua potable, seguido del tratamiento de  desinfección el cual se realizó en condiciones asépticas bajo una campana de  flujo laminar donde se establecieron los tratamientos. Con la finalidad de  determinar el comportamiento de la enzima PPO se utilizaron ocho tratamientos  con tres repeticiones bajo un diseño completamente al azar con arreglo factorial  2 x 2 x 2 donde el factor A estuvo representado por la presencia o ausencia de  NaClO, el factor B por tipo de explante (hojas y pecíolos) y el factor C por los  genotipos (INI-3 e INI-6). En todos los tratamientos se realizó la inmersión de  explantes en etanol al 70 % durante 30 segundos. La solución de NaClO al 3,24 %  fue adicionada con 0,1 % de tween-20, seguido del tratamiento se realizaron tres  enjuagues con agua estéril y por último, se incubaron los tejidos en agua  durante una hora.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Para determinar la actividad de  la PPO, los extractos enzimáticos se prepararon a partir de un gramo de hoja o  pecíolo después de la aplicación de los tratamientos. Los explantes se  trituraron en mortero con buffer de fosfato potásico (0,1 M, pH 7) y se  centrifugaron a 10.000 g por 15 min a 4 ºC. Por último se extrajo el  sobrenadante, para ser utilizado como extracto crudo enzimático.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Se determinó la actividad  enzimática en relación al aumento en la absorbancia con base en el sustrato  ácido gálico mediante espectrofotometría a 420 nm, después de incubar las  muestras en los tiempos: 0, 10, 20, 30, 40, 50, 60, 80, 100 y 120 min a 35 °C,  con el fin de encontrar el punto en el cual la absorbancia se vuelve constante.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Una vez transcurrido el tiempo  de reacción se determinó la actividad enzimática por espectrofotometría a 420 nm  después de incubar las muestras a 35 °C por 120 min. La mezcla de reacción  consintió en 1,7 mL de una solución amortiguadora de fosfato potásico (0,1 M, pH  7), 0,5 ml de extracto enzimático y 0,5 mL de sustrato (ácido gálico 1 mM). Se  realizaron controles en donde el extracto enzimático o sustrato se reemplazó por  el buffer según fuera el caso. Una unidad de actividad enzimática (UE) se  definió como la cantidad de enzima que causa la variación en la absorbancia de  0,001 a los 120 min de reacción. La variable actividad enzimática se evaluó en  un análisis de varianza. Los datos fueron analizados utilizando el programa  estadístico SPSS versión 20.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">Determinación de  actividad enzimática</font></b><font size="2">. La máxima actividad enzimática  se encontró a los 120 min para el ácido gálico bajo las condiciones de ensayo.  Se seleccionó este mismo tiempo para la determinación de la actividad de la PPO  en este estudio (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</font></font></p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v27n3/art05fig1.gif" width="371" height="308"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">Efecto del NaClO sobre  la actividad de la PPO</font></b><font size="2">. El análisis de varianza  presentó diferencias significativas para los factores de estudio: NaClO,  explante y genotipo aunque no fueron significativas las interacciones (<a href="#cua1">Cuadro  1</a>). Se encontró que la aplicación de NaClO influenció significativamente la  actividad de la PPO en comparación a la del tratamiento control (<a href="#cua2">Cuadro 2</a>),  debido probablemente al efecto oxidante y/o hidrolizante de éste compuesto sobre  los compuestos fenólicos presentes en los tejidos vegetales o sobre la misma  enzima. Del mismo modo, los explantes de hoja presentaron una mayor actividad de  la PPO comparados con los explantes de pecíolo (<a href="#cua3">Cuadro 3</a>), posiblemente  atribuido al alto contenido de fenoles totales en este tipo de explante, sobre  los cuales actúa la PPO. De acuerdo con Sabandar et al. (2013), los flavonoides  y taninos se encuentran dentro de los principales compuestos presentes en las  hojas de diversos géneros de <i>Jatropha</i>, compuestos sobre los cuales actúa  la enzima. Esto sugiere que sería mejor usar pecíolos en lugar de hojas en la  micropropagación de esta especie.</font></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="cua1"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v27n3/art05cua1.gif" width="557" height="203"></a></p>     
<p align="center"><a name="cua2"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v27n3/art05cua2.gif" width="308" height="125"></a></p>     
<p align="center"><a name="cua3"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v27n3/art05cua3.gif" width="306" height="119"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Por otro lado, el genotipo  INI-3 presentó una actividad superior de la PPO a diferencia del genotipo INI-6  (<a href="#cua4">Cuadro 4</a>). La comparación de medias de tratamientos demostró que los explantes  de hoja del genotipo INI-3 presentaron la mayor actividad de la PPO al ser  tratados con hipoclorito de sodio al 3,24 %, mientras que la menor actividad se  encontró en los explantes de pecíolo del genotipo INI-6 sin aplicación del  hipoclorito (<a href="#cua5">Cuadro 5</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="cua4"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v27n3/art05cua4.gif" width="308" height="122"></a></p>     
<p align="center"><a name="cua5"> <img border="0" src="/img/fbpe/ba/v27n3/art05cua5.gif" width="578" height="162"></a></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En términos porcentuales, la  actividad de la PPO en los explantes de hoja tratados del INI-3 superó a la  actividad en los explantes de pecíolo del genotipo INI-6 sin tratar en 83,9 %.  Las diferencias entre los tratamientos de NaClO en contraste con el control se  podrían atribuir al efecto oxidante del agente desinfectante al aumentar la  actividad de la PPO lo cual es muy importante en la selección del desinfectante  y sus dosis de aplicación en el establecimiento <i>in vitro</i> del material  vegetal.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Además los altos niveles de  actividad de la PPO en los tratamientos donde se emplearon explantes de hoja  guardan correspondencia con los resultados de Tomar et al. (2014), quienes  demostraron que las hojas presentan un mayor contenido de fenoles totales en  comparación de otras partes de la planta de <i>J. curcas</i>; en consecuencia,  dichos compuestos fenólicos son oxidados por la enzima PPO y de esta forma  promueven el oscurecimiento del material vegetal. Asimismo, Brandelli y Lopes  (2005) encontraron una correlación positiva entre el grado de oscurecimiento de  duraznos (<i>Prunus persica</i>) y la actividad de la PPO. Resultados similares  fueron obtenidos por Scalzo et al. (2005) quienes demostraron diferencias en el  contenido de fenoles entre diferentes genotipos de fresa (<i>Fragaria x ananassa</i>),  albaricoque (<i>Prunus armeniaca</i> L.) y durazno (<i>Prunus persica</i> L.).  Por estos antecedentes se puede atribuir que el contenido de fenoles y la  actividad de la PPO están relacionados con el genotipo. En consecuencia, la  metodología empleada en este trabajo podría ser aplicada para la comparación de  diferentes tratamientos antioxidantes en el control de oxidación fenólica de <i> J. curcas</i> y otras especies que presenten una correlación positiva entre el  oscurecimiento fenólico y la actividad de la PPO.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">CONCLUSIONES</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La aplicación de NaClO al 3,24  % como agente desinfectante en hojas y pecíolos de dos genotipos de <i>J. curcas</i>  aumentó la actividad de la PPO, lo que indica que este desinfectante es causante  indirecto del oscurecimiento de los tejidos de la planta; además, se encontraron  diferencias estadísticas entre explantes y entre genotipos de estudio según las  cuales el genotipo INI-6 y los explantes de pecíolo presentan la menor actividad  de la PPO.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">LITERATURA CITADA</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1. Azofeifa, Á. 2009. Problemas  de oxidación y oscurecimiento de explantes cultivados <i>in vitro</i>. Agronomía  Mesoamericana 20: 153-175.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699452&pid=S1316-3361201500030000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2. Bhojwani, S.S. y P.K. Dantu.  2013. Micropropagation. In: S. Bhojwani y P. Dantu (eds.). Plant Tissue Culture:  An Introductory Text. Springer India. New Delhi. pp. 245-274.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699453&pid=S1316-3361201500030000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3. Brandelli, A. y C.H. Lopes.  2005. Polyphenoloxidase activity browning potential and phenolic content of  peaches during postharvest ripening. Journal of Food Biochemistry 29: 624-637.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699454&pid=S1316-3361201500030000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">4. Cassells, A.C. 2011.  Detection and elimination of microbial endophytes and prevention of  contamination in plant tissue culture. In: R. Trigiano y D. Gray (eds.). Plant  Tissue Culture, Development and Biotechnology. CRC Press. Boca Raton, FL. pp.  223-238.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699455&pid=S1316-3361201500030000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">5. Chien-Ying, K., A. Al-Abdulkarim,  S. Al-Jowid y A. Al-Baiz. 2009. An effective disinfection protocol for plant  regeneration from shoot tip cultures of strawberry. African Journal of  Biotechnology 8: 2611-2615.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699456&pid=S1316-3361201500030000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">6. De Filippis, L.F. 2014. Crop  Improvement through tissue culture. In: P. Ahmad, M. Wani, M. Azooz y L. Tran (eds.).  Improvement of Crops in the Era of Climatic Changes. Springer. NY. pp. 289-346.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699457&pid=S1316-3361201500030000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">7. He, Y., X. Guo, R. Lu, B.  Niu, V. Pasapula, P. Hou, F. Cai, Y. Xu y F. Chen. 2009. Changes in morphology  and biochemical indices in browning callus derived from <i>Jatropha</i> <i> curcas</i> hypocotyls. Plant Cell, Tissue and Organ Cult. 98: 11-17.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699458&pid=S1316-3361201500030000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">8. Hernández, Y. y M.E.  González. 2010. Efectos de la contaminación microbiana y oxidación fenólica en  el establecimiento <i>in vitro</i> de frutales perennes. Cultivos Tropicales  31(4): 58-69.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699459&pid=S1316-3361201500030000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">9. Mroginski, L., P. Sansberro  y E. Flaschland. 2010. Establecimiento de cultivos de tejidos vegetales. In: G.  Levitus, V. Echenique, C. Rubinstein, E. Hopp y L. Mroginski (eds.).  Biotecnología y Mejoramiento Vegetal II. Instituto Nacional de Tecnología  Agropecuaria. Buenos Aires. pp. 17-25.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699460&pid=S1316-3361201500030000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">10. Sabandar, C.W., N. Ahmat,  F. Jaafar e I. Sahidin. 2013. Medicinal property, phytochemistry and  pharmacology of several <i>Jatropha</i> species (Euphorbiaceae): A review.  Phytochemistry 85: 7-29.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699461&pid=S1316-3361201500030000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">11. Scalzo, J., A. Politi, N.  Pellegrini, B. Mezzetti y M. Battino. 2005. Plant genotype affects total  antioxidant capacity and phenolic contents in fruit. Nutrition 21: 207-213.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699462&pid=S1316-3361201500030000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">12. Tabiyeh, D., F. Bernard y  H. Shacker. 2006. Investigation of glutathione, salicylic acid and GA<sub>3</sub>  effects on browning in Pistacia vera shoot tips culture. Acta Horticulturae 726:  201-204.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699463&pid=S1316-3361201500030000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font size="2" face="Verdana">13. Tomar, N.S., M.A. Ahanger y  R.M. Agarwal. 2014. <i>Jatropha curcas</i>: An Overview. In: P. Ahmad, y M. Wani  (eds.). Physiological Mechanisms and Adaptation Strategies in Plants Under  Changing Environment. Springer. NY. pp. 361-383.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=699464&pid=S1316-3361201500030000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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