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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto del tratamiento con praziquantel sobre la actividad de la fosfatasa alcalina, fosfatasa acida, superoxido dismutasa en extractos crudos y productos de excreción-secreción de gusanos de Schistosoma mansoni]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Effect of Treatment with Praziquantel on the activity of alkaline phosphatase acid phosphatase, superoxide dismutase in Crude Extracts and Excretion-secretion Products of Schistosoma mansoni worms.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Venezuela is among South American countries affected by schistosomiasis and chemotherapy with praziquantel (PZQ) is the main control strategy. We determined the quantitative effect of treatment with PZQ on alkaline phosphatase activity (ALP), acid phosphatase (ACP) and superoxide dismutase (SOD) in soluble antigens of worms (SWAP) and excretion-secretion products (EEP) of male and female worms (SMWAPc, SFWAPc, ESPWMc and ESPWHc) or incubated with PZQ in vitro (SMWAP PZQ, SFWAP PZQ, ESPWM PZQ and ESPWH PZQ). Total proteins were determined by colorimetry, SOD and ACP by spectrophotometry and fluorometry ALP. There was higher protein concentration in the untreated worms EG, and the preparations obtained after incubation with PZQ in vitro, in the EG, an increase in ACP activity in the EG and PG prepared with non-treated worms and a decrease of such activity on the EG and treated PG. On the other hand, SOD activity, the EG showed statistical significance in the treated worms. In the PG showed the same behavior, but those differences were not statistically significant. Similarly, there was a decrease in the concentration of ALP noticeable in the EG and worm PGh treated worms relative to untreated statistically significant. In conclusion, we observed a decrease in total protein, ACP and SOD enzyme activities and concentration of ALP, and EG in PG treated worms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Efecto del tratamiento con  praziquantel sobre la actividad de la fosfatasa alcalina, fosfatasa acida,  superoxido dismutasa en extractos crudos y productos de excreción-secreción de  gusanos de Schistosoma mansoni</font></b></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Emilia E Barrios<sup>1,2</sup>,  Jesús Rodríguez<sup>1</sup>, Naim Richani<sup>1</sup>, Wolfan Araque<sup>1</sup>,  Juan F Quintana<sup>1,3</sup>, Lisset Sánchez<sup>1</sup></font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">1 Laboratorio de Helmintología  del Instituto de Biología Molecular de Parásitos (Instituto BioMolP). Facultad  de Ciencias de la Salud, Universidad de Carabobo. Valencia, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">2 Departamento de Investigación  y Desarrollo Profesional, Escuela de Bioanálisis. Facultad de Ciencias de la  Salud, Universidad de Carabobo. Valencia, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">3 Centre for Infection,  Immunity and Evolution, Ashworth Laboratories, University of Edinburgh, West  Mains Road, Edinburgh EH9-3JT, UK.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Correspondencia: Emilia Barrios  E-mail: <a href="mailto:barrios.emilia@gmail.com">barrios.emilia@gmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Venezuela se encuentra entre  los países sudamericanos afectados por la esquistosomiasis y la quimioterapia  con praziquantel (PZQ) es la principal estrategia de control. Se determino el  efecto cuantitativo del tratamiento con praziquantel sobre la actividad de la  Fosfatasa Alcalina (ALP), Fosfatasa Acida (ACP) y Superoxido Dismutasa (SOD), en  antígenos solubles (ASG) y productos de excreción-secreción (PESG) de gusanos  hembras y machos condición control (ASGH<sub>c</sub>, ASGM<sub>c</sub>, PESGH<sub>c</sub>  and PESGM<sub>c</sub>) o incubados con PZQ in vitro (ASGM<sub>pzq</sub>, ASGH<sub>pzq</sub>,  PESGM<sub>pzq</sub> and PESGH<sub>pzq</sub>). Las proteínas totales se  determinaron por colorimetría, la SOD y ACP mediante espectrofotometría y la ALP  por fluorometría. Se encontró una mayor concentración de proteínas en las ASG de  gusanos no tratados, y en las preparaciones obtenidas luego de la incubación con  PZQ in vitro, en los PESG, un incremento en la actividad ACP en los ASG y PESG  preparados con gusanos no-tratados, y una disminución de dicha actividad en los  ASG y PESG tratados. La SOD, evidenció en los ASG una disminución  estadísticamente significativa en los gusanos tratados. La concentración de la  ALP disminuyó significativamente en los ASG y PESGH de gusanos tratados en  relación a los gusanos no tratados. En conclusión, se observó una disminución en  las proteínas totales, actividades enzimáticas ACP y SOD, y concentración de ALP,  en ASG y PESG obtenidos con gusanos tratados.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana"><b>Palabras clave</b>:  praziquantel, enzimas, Schistosoma mansoni.</font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">Effect of Treatment with  Praziquantel on the activity of alkaline phosphatase acid phosphatase,  superoxide dismutase in Crude Extracts and Excretion-secretion Products of  Schistosoma mansoni worms.</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">ABSTRACT</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Venezuela is among South  American countries affected by schistosomiasis and chemotherapy with  praziquantel (PZQ) is the main control strategy. We determined the quantitative  effect of treatment with PZQ on alkaline phosphatase activity (ALP), acid  phosphatase (ACP) and superoxide dismutase (SOD) in soluble antigens of worms (SWAP)  and excretion-secretion products (EEP) of male and female worms (SMWAP<sub>c</sub>,  SFWAP<sub>c</sub>, ESPWM<sub>c</sub> and ESPWH<sub>c</sub>) or incubated with  PZQ in vitro (SMWAP<sub>PZQ</sub>, SFWAP<sub>PZQ</sub>, ESPWM<sub>PZQ</sub> and  ESPWH<sub>PZQ</sub>). Total proteins were determined by colorimetry, SOD and ACP  by spectrophotometry and fluorometry ALP. There was higher protein concentration  in the untreated worms EG, and the preparations obtained after incubation with  PZQ in vitro, in the EG, an increase in ACP activity in the EG and PG prepared  with non-treated worms and a decrease of such activity on the EG and treated PG.  On the other hand, SOD activity, the EG showed statistical significance in the  treated worms. In the PG showed the same behavior, but those differences were  not statistically significant. Similarly, there was a decrease in the  concentration of ALP noticeable in the EG and worm PGh treated worms relative to  untreated statistically significant. In conclusion, we observed a decrease in  total protein, ACP and SOD enzyme activities and concentration of ALP, and EG in  PG treated worms.</font></p>     <p align="justify"><b></b><font size="2" face="Verdana"><b>Keys Words</b>:  Praziquantel, enzymes, Schistosoma mansoni, crude extracts, excretory-secretory  products.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La Esquistosomiasis, también  conocida como Bilharziasis, es una parasitosis producida por trematodos  digenéticos de la familia Schistosomatidae, prevalentes en las regiones  tropicales y subtropicales del mundo, afectando más de doscientos millones de  personas (1). En América del Sur, el agente causal es Schistosoma mansoni y en  Venezuela el área endémica comprende la región centro norte del país, con una  extensión de 15 mil Km2, lo que corresponde al 1,6 % del territorio nacional  (1,2)</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La infección en el humano  ocasiona una enfermedad endémica frecuentemente de forma crónica leve, la cual  se presenta de manera asintomática u oligoasintomática. En otros individuos, las  lesiones ocurren en el hígado y en estas las formas graves presentan cuadros  clínicos con hepato-esplenomegalia, hipertensión portal y fibrosis hepática (2).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El mecanismo de transmisión se  inicia con la mala disposición de las heces con los huevos de las personas  infectadas en el medio ambiente, favoreciendo la eclosión de estos y la  liberación de las larvas denominadas miracidios. Estas infectan al caracol  hospedador intermediario, Biomphalaria glabrata, en el cual la multiplicación y  transformación del parásito da origen a las cercarias, las cuales abandonan al  molusco e infectan a su hospedador definitivo (el hombre o mamíferos roedores),  a través de la piel, transformandose en esquistosómulo. En el sistema porta  hepático los gusanos adultos diferenciados sexualmente se aparean y la hembra en  el canal ginecóforo del macho se traslada a los plexos hemorroidales  intestinales y deposita los huevos (2).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los adultos del S. mansoni  alargados, cilíndricos y curvos hacia la parte posterior, miden entre 1 y 2 cm  de longitud. El macho posee una apertura longitudinal llamada canal ginecóforo,  el cual aloja a la hembra. Externamente el parásito se encuentra recubierto por  capas de células multinucleadas formando un sincitio, denominado tegumento.  Durante la transformación de cercarías a esquistosómulo, la superficie externa  del tegumento se modifica desde una capa celular única que contiene un  glucocalix, a una membrana doble.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Las proteínas encontradas en el  exterior de la doble membrana, entre ellas enzimas como la Fosfatasa Alcalina (ALP)  y la Fosfatasa Acida (ACP) permiten absorber moléculas encontradas en la  circulación sanguínea del hospedador definitivo y además son específicamente  reconocidas por los anticuerpos de humanos y animales infectados, siendo de  utilidad para diagnóstico y confirmación de la infección en zonas de baja  transmisión, donde la sensibilidad de la mayoría de las pruebas conocidas tiende  a disminuir debido a la baja carga parasitaria infectante (3).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El tubo digestivo incompleto de  estos gusanos, determina que se alimenten, excreten sus desechos y secreten  productos metabólicos a través de un orificio único. Enzimas relacionadas con  mecanismos de inmunoevasión de la respuesta inmune del hospedador, como la  Superóxido Dismutasa (SOD), y por tanto, una molécula con potencial utilidad en  vacunación, forman parte de los productos de excreción-secreción (4-6).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">El PZQ (2-(cyclohexilcarbonil)-1,2,3,6,7,11b-hexahidro-4H-pirazino  (2,1-alfa) isoquinolin-4-uno) es un derivado de la pirazinoisoquinolina,  empleado en el tratamiento de la esquistosomiasis y ensayos in vitro muestran  que el PZQ produce contracción muscular o parálisis y daño, debido a cambios en  el flujo del calcio en la membrana tegumental externa, aumentando la  permeabilidad. El PZQ interfiere con el transporte de iones inorgánicos puesto  que la paralisis ocasionada en el gusano adulto se acompaña un aumento en el  influjo de calcio y disminución del influjo de sodio y potasio. Adicionalmente,  el tegumento del gusano es dañado y en consecuencia se exponen nuevos antígenos  en la superficie del parásito (7, 8).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Además el PZQ produce cambios  en los hidratos de carbono, proteínas, metabolismo de los nucleótidos; y en la  actividad de enzimas parasitarias como la SOD, ACP y ALP (9). La preparación  comercial es una mezcla compuesta por partes iguales de isómeros levógiros y  dextrógiros, de los cuales, solo los primeros tienen actividad biológica in vivo  e in vitro (10). Se absorbe vía oral y es hidroxilado a nivel hepático, el t<sub>max</sub>  es de 1 hora y la sobrevida plasmática de 0,8 a 1,2 horas (11).El mecanismo  preciso de acción del PZQ no se ha identificado, algunos autores sugieren que el  PZQ interfiere con el transporte de iones inorgánicos y que la rapidez con la  que daña el tegumento del parásito, se relaciona con alteración en la  homeóstasis del calcio (12), específicamente a nivel de canales de calcio  (13).Otros autores demostraron que la acumulación de calcio no es el único  factor que determina los efectos del PZQ en gusanos, al parecer la alteración de  la fluidez en la membrana tegumental (14) y la reducción de las concentraciones  de glutatión, permite que la respuesta inmune del hospedador contribuya en la  eliminación del gusano, y la unión a la actina de los esquistosomas ocasiona la  interrupción en el tegumento o la inhibición de la captación de nucleósidos  (15). De 726 genes inducidos en gusanos adultos expuestos a 50 &#956;g de PZQ/ ml por  hasta 4 h y analizados por ensayos de microarreglos, 347 disminuyeron  abundantemente, 131 fueron expresados con éxito y dos de las categorías mas  importantes de las moléculas identificadas 40% correspondieron a genes asociados  a adhesión y 27 % procesos celulares. Curiosamente entre los grupos de genes  inducidos en respuesta al tratamiento con PZQ, 4% correspondieron a actividad  antioxidante, entre ellos a un precursor de la superóxido dismutasa extracelular  (8),</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">La concentración de PZQ  requerida para matar los esquistosomas adultos in vitro es más alta que la  máxima concentración plasmática alcanzada en humanos. Se estimó que la  concentración en plasma es de 0,3 &#956;g/ml, luego de 2 horas de la administración  oral de 46 mg de PZQ/Kg de peso. Mientras para producir el mismo efecto in vitro  es 0,5 &#956;g/ml pero el gusano debe exponerse toda la noche al fármaco (16).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Resultados obtenidos por  nuestro grupo de investigación demuestran que la actividad ALP no es modificada  por el tratamiento con praziquantel y la actividad SOD se alteró en antígenos  solubles, mas no en productos de excreción del gusano, a consecuencia del  tratamiento (17). No obstante, dicho estudio evalúo cualitativamente la  presencia de esta actividad, lo que sugiere que pequeñas fluctuaciones pudieron  no ser detectadas. Por lo tanto, es de interés realizar estudios o evaluaciones  cuantitativas sobre las enzimas SOD, ALP y ACP en Productos de  Excreción-Secreción (PES) y Extractos Crudos del Gusano (ECG) de S. mansoni que  permitan establecer alteraciones en la actividad de estas por su papel clave en  el metabolismo del parásito. En este sentido, se determinó el efecto  cuantitativo del tratamiento con PZQ, sobre la actividad ALP, ACP, SOD en  extractos crudos y productos de excreción de gusanos adultos de S. mansoni.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">MATERIAL Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Obtención de los estadios de S.  mansoni. En esta investigación se empleó el aislado Puerto Rico de S. mansoni,  mantenido viable por pases sucesivos entre B. glabrata y hámsters dorados (Mesocricetus  auratus), en el Laboratorio de Helmintos del Instituto BioMolP. Los hámsters con  7 semanas de infección con 1000 cercarías de S. mansoni, fueron perfundidos y  los gusanos recogidos de la vena porta hepática (18, 19) se conservaron en medio  RPMI1640 pH 7.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Gusanos adultos de S. mansoni.  En el estudio experimental se emplearon gusanos hembras y machos (n=1x10<sup>5</sup>),  obtenidos del ciclo de mantenimiento de S. mansoni los cuales se utilizaron en  la preparación de los Productos de Excreción-Secreción de gusanos (PESG),  hembras (PESGH) y machos (PESGM) producidos por el gusano in vitro y en los  Extractos Crudos de Gusanos o antígenos solubles de gusanos (ASG), hembras (ASGH)  y machos (ASGM).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Tratamiento de ratones con PZQ.  A ratones NRMI jóvenes machos se les administró una dosis de PZQ de 40 mg/kg de  peso, vía intragástrica, se esperó 1 hora y 30 min para la metabolización de la  droga en el ratón. Posteriormente se extrajo la sangre mediante punción cardíaca.  Se retrajo el coágulo a 37 ºC por 10 minutos y se centrifugó a 2500 rpm por 10  minutos, para separar el suero con el metabolito activo del PZQ.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Producción de antígenos  solubles y productos de excreción-secreción. Los gusanos machos y hembras  (n=1000), obtenidos del ciclo de mantenimiento de S. mansoni fueron colocados en  un medio comercial RPMI1640 pH 7 en frío. En la condición con el PZQ, los  gusanos machos y hembras se incubaron una hora a 37 ºC en el suero con el  metabolito activo de la droga y se lavaron tres veces con medio. En la condición  control, se sustituyó el suero con RPMI1640 y ambas condiciones se incubaron en  medio, dos horas a 37 ºC con agitación. Luego se centrifugó por 30 minutos a  14000 rpm a 4 ºC. Los sobrenadantes o Productos de Excreción-Secreción de  Gusanos (PESG) obtenidos de las hembras y machos incubados en ausencia de la  droga, PESGM<sub>c</sub> y PESGH<sub>c</sub> y en presencia de esta, PESGM<sub>pzq</sub>  y PESGH<sub>pzq</sub> (20).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Los gusanos incubados y  centrifugados fueron macerados con un homogenizador de tejidos de teflón. El  homogenato obtenido se centrifugó a 14000 rpm por dos horas a 4 ºC y los  sobrenadantes o antígenos solubles de gusanos (ASG) de hembras y machos  incubados en RPMI1640 (ASGM<sub>c</sub> y ASGH<sub>c</sub>) e incubados en  RPMI1640 con PZQ (ASGM<sub>pzq</sub> y ASGH<sub>pzq</sub>). Los ASG y PESG  fueron recolectados, se dializaron contra agua durante 12 h a 4 ºC y fueron  guardados a -20 ºC hasta su uso, dentro de la misma semana de obtención (21) y  previa determinación enzimática se les hizo la de proteínas totales, empleando  el método de Bradford modificado por Spector (22).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">Determinación de las enzimas.  En la determinación de la superóxido dismutasa (SOD), se empleó un método de  detección indirecta, basado en el método de reducción del anión superóxido, el  cual guarda una relación directa con la xantina oxidasa e inversamente  proporcional a la SOD, con el kit para superóxido dismutasa de Calbiochem (USA)  siguiendo instrucciones del fabricante. La lectura de la actividad de la  reacción fue médida a partir de una curva construida con patrones de actividad  SOD (0,025; 0,05; 0,1; 0,15; 0,2; 0,25 UI/ml). A los patrones y muestras se les  adicionó la sal de tetrazolio y se inició la reacción enzimática en con la  adición de Xantina oxidasa, seguida de incubación 20 min a temperatura ambiente  y lectura a 450 nm (23).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">En la determinación de la  actividad Fosfatasa Acida (ACP) se empleo como sustrato 4-nitrofenil fosfato en  medio ácido y una solución estándar de p-nitrofenol (10 mM), en medio alcalino  (SIGMA, USA). Para la determinación los PESG y ASG fueron diluidos 1:2 con agua  destilada, y se incubaron por 30 minutos a 37 ºC con solución sustrato y se leyó  la absorbancia a 405 nm en el lector de Elisa, y se calculó la actividad con la  siguiente fórmula:</font></p>     <p align="center" style="margin-top: 0; margin-bottom: -12px"> <font face="Verdana" size="2">U/mL= [(A [muestra] – A [blanco]) x 0,05 x 0.3 x  FD</font></p>     <p align="center" style="margin-top: 0; margin-bottom: 0"> ____________________________________________</p>     <p align="center" style="margin-top: 0; margin-bottom: 0"> <font face="Verdana" size="2">A [estándar] x tiempo x V enz</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A [muestra]: absorbancia de la  muestra; A [blanco]: absorbancia del blanco; 0,05: concentración de 4-nitrofenol  en solución estándar; 0,3: 0.3 mL, el volumen total del ensayo en la placa de 96  pozos, incluyendo la solución Stop; FD: factor de dilución de la muestra  estándar; A del [estándar]: absorbancia del estándar; Tiempo: tiempo de  incubación a 37 ºC en minutos; V enz: volumen de la muestra enzimática añadida  al ensayo en mL.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la evaluación de la  fosfatasa alcalina (ALP) se preparó una solución sustrato de 4-metil-lumbeliferril-fosfato  (10mM) en H2O desionizada (SIGMA, USA), y se incubó con los PESG y ASG o control  enzimático (100 &#956;g/ml), por 15 minutos a 37 °C y se leyó la reacción  fluorimétrica con un filtro de absorción de 360 nm y de emisión de 440 nm en el  fluorímetro.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Análisis de los datos</b>.  Los datos cuantitativos de las determinaciones enzimáticas, se expresaron como  el promedio ± desviación estándar.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La comparación de las  determinaciones en hembras y machos pre y post-incubación con PZQ se realizó  mediante una prueba T de Student, y valores de p menores a 0,05 se consideraron  estadísticamente significativos. En el análisis estadístico se empleó el  programa STATISTIC versión 9.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La determinación de proteínas  totales de PESG y ASG, reveló una mayor concentración de proteínas en las  preparaciones provenientes de gusanos no tratados en los ASGMc y ASGMc, y en las  preparaciones obtenidas luego de la incubación con PZQ in vitro, en los ASGMPZQ  y ASGHPZQ (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/s/v17s1/art07tab1.gif" width="472" height="256"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al evaluar la actividad  enzimática de la ACP en los ASG y PESG se encontró un incremento en los ASG y  PESG preparados con gusanos no-tratados, y una disminución de dicha actividad en  los ASG y PESG tratados (<a href="#tab2">Tabla 2</a>), observándose diferencias  estadísticamente significativas en los ASG preparados con gusanos tratados y no  tratados, mientras que en los PESG tales diferencias no son significativas.</font></p>     <p align="center"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/s/v17s1/art07tab2.gif" width="457" height="270"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El análisis de las actividades  enzimáticas para la SOD, mostró en los ASG una disminución estadísticamente  significativamente en los gusanos tratados.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En los PESG se observó el mismo  comportamiento, pero dichos resultados no fueron estadísticamente significativos  (<a href="#tab3">Tabla 3</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/s/v17s1/art07tab3.gif" width="429" height="273"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En conjunto con la ACP y la SOD  se evaluó la actividad enzimática de la ALP donde se evidenció la disminución  notable de la actividad enzimática en los ASG Y PESH de gusanos tratados en  relación a los gusanos no tratados, (<a href="#tab4">tabla 4</a>) obteniendo  datos estadísticamente significativos que demuestran que la acción farmacológica  empleada es efectiva.</font></p>     <p align="center"><a name="tab4"> <img border="0" src="/img/fbpe/s/v17s1/art07tab4.gif" width="412" height="279"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En los PESGM se evidencia el  incremento de la actividad enzimática en los gusanos tratados, pero los datos no  son estadísticamente significativos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los extractos crudos y  productos de excreción-secreción de S. mansoni, se caracterizan por su gran  contenido enzimático, relacionado con mecanismos de inmunoevasión de la  respuesta inmune y antigenicidad. El presente estudio determinó el efecto del  tratamiento con PZQ sobre enzimas del parásito presentes en ambas preparaciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al inicio del estudio se  determinaron las proteínas totales de PG y EG, encontrándose una mayor  concentración de proteínas en las preparaciones provenientes de gusanos no  tratados en los EG, y en las preparaciones obtenidas luego de la incubación con  PZQ in vitro, en los PG (<a href="#tab1">Tabla 1</a>).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El efecto del tratamiento sobre  las proteínas totales en los extractos crudos del parásito se relacionan con  estudios recientes que demuestran el papel de las P- glicoproteínas (SMDR2) y  las proteínas asociadas a multiresistencia a drogas (MRP1) que se encuentran en  el sistema excretor del gusano de Schistosoma mansoni, asociadas a resistencia a  fármacos, puesto que la expresión de estas proteínas se altera en los gusanos  expuestos a praziquantel (PZQ), y se expresa en niveles más altos en los gusanos  de las cepas con susceptibilidad reducida al fármaco (24). Además, el  tratamiento pudiera afectar genes como el Gen MEG que en S. mansoni induce la  variación en las proteínas secretadas por el tegumento, relacionadas a la  interacción inmune con el hospedador (25). En consecuencia, los hallazgos  encontrados en el presente estudio pueden tener implicaciones no solo a nivel de  tratamiento quimioterapéutico, además pueden estar relacionados con eventos de  interacción con el sistema inmune del hospedador.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Todas las enzimas lisosomales  como la ACP son activadas en condiciones especificas por el catabolismo  creciente del tejido fino, por lo tanto, el aumento de la fosfatasa ácida está  relacionada con el aumento en el catabolismo de los tejidos (26), como resultado  del aumento de los productos del metabolismo del gusano S. mansoni por tanto, la  disminución de la ACP en ASG y PESG observada en nuestro estudio, indican  indirectamente que el PZQ altera este metabolismo enzimático, ocasionando una  disminución del metabolismo del parásito que afecta la producción y  secreción-excreción de esta enzima. En relación a las isoenzimas de la ACP se  conoce que su actividad es afectada por diferentes agentes como el mercurio  (bovino y porcino) y herbicidas (plantas) (27,28), constituyendo importantes  flancos de control de plantas que compiten con los cultivos de interés  alimenticio.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Desde el enfoque del presente  estudio, la disminución de la ACP constituye uno de los elementos claves  mediante los cuales, el PZQ afecta la capacidad del parásito de contrarrestar la  respuesta celular y humoral del hospedador, alterando la hidrólisis de  fosfomonoésteres y liberación de fosfato inorgánico del parásito (29), un  mecanismo altamente relacionado con el influjo de Ca<sup>+2</sup> en respuesta a  la despolarización de la membrana tegumental y por ende la contracción muscular,  la secreción, y la expresión genética (29).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El análisis de las actividades  enzimáticas para la SOD, mostró en los ASG una disminución estadísticamente  significativamente en los gusanos tratados. Un efecto similar en menor magnitud  se observa en los PESG, y demuestra que uno de los efectos del tratamiento con  PZQ, posiblemente relacionado con su efectividad, consiste en la disminución de  enzimas claves para la defensa del parásito contra radicales tóxicos que  producen las células del sistema inmune, lo que sugiere que al evaluar el uso de  enzimas antioxidantes como la SOD en diseños de vacunas o terapia inmune en los  pacientes infectados debe tomarse en cuenta el estatus en cuanto a tratamiento  del paciente, puesto que en individuos recientemente tratados, puede no tener la  misma efectividad el empleo de vacunas elaboradas con ADN codificante para la  SOD, con la finalidad de estimular la producción de anticuerpos capaces de  reducir de manera constante la carga parasitaria del S. mansoni, disminuyendo la  infección existente (30). No obstante, otras alternativas tales como la  sustitución de la Leu132 y la Val135 en la Superóxido Dismutasa Citosolica del  parásito (SmCtSOD), postuladas para inducir cambios en la conformación,  distribución de las cargas electrostáticas y la disminución de la protección del  parásito pudieran ser de mayor utilidad como herramienta inmunoterapeútica, en  pacientes con historia de reinfecciones postratamiento (31). Por otra parte,  estos resultados coinciden con estudios realizados in vivo, en los cuales se  demuestra que el tratamiento combinado de PZQ y pentoxifilina producen  disminución en los niveles séricos de citoquinas pro-fibróticas (TGF-&#946; y TNF-&#945;)  y de las enzimas hepáticas antioxidantes, glutation peroxidasa, glutatión-S-transferasa,  glutatión reductasa y SOD (32)</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En cuanto a la actividad  enzimática de la ALP se observa la disminución notable de la actividad  enzimática en los ASG y PESG, particularmente significativo en los PESGH,  hallazgos de fundamental interés puesto que durante la infección por S. mansoni  ocurre un aumento en la excreción de la ALP como producto del catabolismo del  parásito, lo que se refleja en la persona infectada con un aumento de la enzima  en sistema porta venoso hepático, y constituye un elemento estimulador de la  respuesta inmune del hospedador, por lo cual la ALP es considerada altamente  inmunógena y es empleada como antígeno en el diagnóstico serológico (33).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Además, recientemente se  demostró que la ALP se ubica en la capa externa tegumental de S. mansoni, y que  mediante mecanismo que generan adenosina, el parásito es capaz de modular la  respuesta inmunitaria del hospedador contra el, como demuestran estudios en los  cuales al suprimir el ARN de la ALP disminuye la producción de adenosina, y la  capacidad del parásito para evadir la respuesta inmunitaria del hospedador (34).  Ambos estudios reflejan la importancia de esta enzima de S. mansoni para la  supervivencia y como marcador diagnóstico, resaltando que cualquier estrategia  quimioterapeútica, inmunoterapeútica o de vacunación debe medir el efecto sobre  esta enzima.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Similarmente, estudios previos  de nuestro grupo de investigación lograron definir a nivel cualitativo el efecto  del PZQ sobre la actividad enzimática SOD, ALP y ACP (17) de PESG y PESG, así  como la utilidad potencial en el inmunodiagnóstico de antígenos preparados con  gusanos y huevos de S. mansoni incubados in vitro con PZQ (35). En este sentido,  los hallazgos del presente estudio contribuyen a definir y comparar en términos  cuantitativos el efecto del PZQ sobre enzimas tegumentales y de  excreción-secreción, faltaría por caracterizar y definir la contribución que  esto tiene sobre la expresión o inhibición de antígenos que puedan favorecer el  diagnóstico, permitan evaluar la efectividad del tratamiento en los pacientes  infectados y definir posibles variantes enzimáticas relacionadas con la  resistencia antihelmíntica descritas en otros metazoarios (36), en S. mansoni.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">No obstante, los hallazgos del  presente contribuyen a comprender los efectos positivos del praziquantel sobre  la patogenia de la enfermedad, puesto que las enzimas contribuyen en la evasión  de la respuesta inmune y en la estimulación del sistema inmune del hospedador,  lo que contribuye en exacerbar la inflamación y consecuentes secuelas. Además  reviste importancia porque estas enzimas se encuentran asociadas al tegumento y  este se considera un potencial blanco para el desarrollo de vacunas anti-esquistosoma,  puesto que se ha logrado reducir el número de huevos en el hígado, la  eliminación de huevos en las heces, número de granulomas hepáticos y adultos  empleando antígenos tegumentales del estadio esquistosómulo (37), por lo que una  combinación de quimioterapia con inmunoterapia podría aumentar la protección  contra la esquistosomiasis, en el humano.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En conclusión, en el presente  estudio se encontró una disminución en las proteínas totales, actividades  enzimáticas ACP y SOD y la concentración de la ALP de extractos crudos y  productos de excreción de S. mansoni preparados con gusanos tratados con PZQ in  vitro, particularmente significativos en los PESGM postratamiento para la ACP,  en los ASG para la SOD y en ASG y PESGH para la ALP.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>AGRADECIMIENTO</b>. Los  autores agradecen el apoyo técnico a las Asistentes de investigación, Olga Ojeda  y Jennifer Ayala.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>FINANCIAMIENTO</b>. El  trabajo fue financiado por los Proyectos de Investigación CDCH-UC Nº 00220-08 y  CDCHUC Nº 2010-004.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Gryseels B. Schistosomiasis.  Infect Dis Clin North Am. 2012 Jun;26(2):383-97.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221958&pid=S1316-7138201300040000700001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. King CH, Dangerfield-Cha M.  The unacknowledged impact of chronic schistosomiasis. Chronic Illness 2008; 4:  65-79.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221959&pid=S1316-7138201300040000700002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Ash LR, Orihel TC. Quinta  edición. Madrid, España: Panamericana; 2010.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221960&pid=S1316-7138201300040000700003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Cesari I, Ballen D, Mendoza  L, Matos C. Detection of Schistosoma mansoni membrane antigens by immunoblot  analysis of sera of patients from low-transmision areas. Clin Diagn Lab Immunol  2005; 12(2): 280-286.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221961&pid=S1316-7138201300040000700004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Botero D, Retrepo M, Rodrigo  A, Parra G. Parasitosis Humanas. 4ta edición. Medellín, Colombia: 2005.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221962&pid=S1316-7138201300040000700005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Tran M, Freitas T, Cooper L,  Gase S, Gatton M, Jones M, Lovas E, Pearce EJ, Loukas A. Suppression of mRNAs  encoding tegument tetraspanins from Schistosoma mansoni results in impaired  tegument turnover. PloS Pathogens 2010; 6(4):1-10.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221963&pid=S1316-7138201300040000700006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Carvallho C, Cook R, Wang C,  Oliveira R, Bailey N, Egilmez N, Mathiowitz E, Philip T. Cross-reactivity of  Shistosoma mansoni cytosolic supeoxide dismutase, a protective vaccine candidate,  with host superoxide dismutase and identification of parasite-specific B  epitopes. Infect Immun 2004; 72(5):2635-2647.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221964&pid=S1316-7138201300040000700007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Pica-Mattoccia L, Cioli D.  Sex-and stage-related sensitivity of Schistosoma mansoni to in vivo and in vitro  praziquantel treatment. Int J Parasitol 2004; 34: 527-533.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221965&pid=S1316-7138201300040000700008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Aragon AD, Imani TAm,  Blackburn VE, Cupit PM, Melman SD, Goronga T, Webb T, Loker E, Cunnigham C.  Towards an understanding of the mechanism of action of praziquantel. Mol Biochem  Parasitology 164: 57-65.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221966&pid=S1316-7138201300040000700009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Doenhoff MJ, Cioli D,  Utzinger J. Praziquantel: mechanisms of action, resistance and new derivates for  schistosomiasis. Curr Opin Infect Dis 2008; 21: 659-667.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221967&pid=S1316-7138201300040000700010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Manual Merck. Praziquantel.  Consulta: 12/02/2012. Disponible en: MANUALMERCK: <a href="http://www.merckmanuals.com/professional/lexicomp/praziquantel.html"> http://www.merckmanuals.com/professional/lexicomp/praziquantel.html</a>.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221968&pid=S1316-7138201300040000700011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Caffrey CR. Chemotherapy of  schistosomiasis: present and future. Current Opinion in Chemical Biology 2007;  11: 433-439.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221969&pid=S1316-7138201300040000700012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Harder A, Goossens J,  Andrews P. Infuence of praziquantel and Ca2+ on the bilayer-isotropic-hexagonal  transition of model membranes. Mol Biochem Parasitol 1988;29:55–9.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221970&pid=S1316-7138201300040000700013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Lima SF, Vieira LQ, Harder  A, Kusel JR. Effects of culture and praziquantel on membrane fluidity parameters  of adult Schistosoma mansoni. Parasitology 1994;109:57–64.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221971&pid=S1316-7138201300040000700014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Ribeiro F, Coelho PM,  Vieira LQ, Watson DG, Kusel JR. The effect of praziquantel treatment on  glutathione concentration in Schistosoma mansoni. Parasitology. 1998;116:229–36.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221972&pid=S1316-7138201300040000700015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Andrews PA. A summary of  the efficacy of praziquantel against schistosomes in animal experiments and  notes on its mode of action. Arzneimittel-Forschung 1981; 31: 530-41.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221973&pid=S1316-7138201300040000700016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Barreto O, Blanco R,  Barrios EE, Sánchez L, Araque W, Delgado V, Pinto V. Efecto in vitro del  praziquantel sobre la actividad enzimática de superóxido dismutasa, fosfatasa  acida y fosfatasa alcalina en gusanos adultos de schistosoma mansoni. Memorias  VII Congreso de Investigación y 1er Congreso Internacional de la Universidad de  Carabobo 2010. Tomo III: 2007-2010.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221974&pid=S1316-7138201300040000700017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Araque W, Barrios E,  Rodríguez P, Delgado V, Finol H. Ultrastuctural study of the in vitro  interaction between Biomphalaria glabrata hemocytes and Schistosoma mansoni  miracidia. 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Proteomic Identification of IPSE/alpha-1 as a Major  Hepatotoxin Secreted by Schistosoma mansoni Eggs. PLoS Negl Trop Dis 2011;  5(10): e1368.doi:10.1371/journal.pntd.0001368.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221977&pid=S1316-7138201300040000700020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Ramajo Hernández A.  Analisis de los proteomas y glicoproteomas del tegumento y de los productos de  excreción-secreción de Schistosoma bovis. Estudio de la interacción del parásito  con el sistema fibrinolítico del hospedador. Tesis Doctoral. 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Protective role of L-2-oxothiazolidine-4-carboxylic  acid in cisplatin-induced renal injury. Nephrol Dial Transplant 2006; 21:  2085-2095.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221980&pid=S1316-7138201300040000700023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Kasinathan RS, Morgan WM,  Greenberg RM. Schistosoma mansoni express higher levels of multidrug resistance-associated  protein 1 (SmMRP1) in juvenile worms and in response to praziquantel. Mol  Biochem Parasitol 2011; 173(1): 25–31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221981&pid=S1316-7138201300040000700024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. DeMarco R, Mathieson W,  Manuel SJ, Dillon PG, Curwen RS, Ashton PD, Ivens AC, Berriman M, Almeida SV,  Wilson RA. Protein variation in blood-dwelling schistosome worms generated by  differential splicing of micro-exon gene transcripts. 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Mecanismo de acción de las fosfatasa ácidas de bajo peso molecular. An Fac  Med Lima 2007; 68(4): 356-362.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221984&pid=S1316-7138201300040000700027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">28. Alvear M, López R, Rosas A,  Espinoza N. Efecto de la Aplicación de Herbicidas en Condiciones de Campo Sobre  Algunas Actividades Biológicas. Rev Cienc Suelo Nutr Veg 2006; 6(1): 64-76.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221985&pid=S1316-7138201300040000700028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">29. Suh B-C, Leal K, Hille B.  Modulation of high-voltage activated Ca+2 channels by membrana  phosphatidylinositol 4,5-bisphosphate. Neuron 2010; 62(2): 224-238.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221986&pid=S1316-7138201300040000700029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">30. Cook RM, Carvalho-Queiroz  C, Wilding G, LoVerde PT. Nucleic Acid Vaccination with Schistosoma mansoni  Antioxidant Enzyme Cytosolic Superoxide Dismutase and the Structural Protein  Filamin Confers Protection against the Adult Worm Stage. Infect Immun 2004, p.  6112–6124.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221987&pid=S1316-7138201300040000700030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">31. Cardoso RM, Silva CH, Ulian  de Araújo AP, Tanaka T, Tanaka M, Garratt RC. Structure of the cytosolic Cu,Zn  superoxide dismutase from Schistosoma mansoni. Acta Cryst 2004; 60(9):  1569-1578.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221988&pid=S1316-7138201300040000700031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">32. El-Lakkany N, Seif el-Din  S, Ebeid F. The use of pentoxifylline as adjuvant therapy with praziquantel  downregulates profibrogenica cytokines, collagen deposition and oxidative stress  in experimental schistosomiasis mansoni. Exp Parasitol 2011; 129(2): 152-157.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221989&pid=S1316-7138201300040000700032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">33. Cesari IM, Ballen DE,  Mendoza L, Matos C. Detection of Schistosoma mansoni membrane antigens by  immunoblot analysis of será of patientes from low-transmission areas. Clin  Vaccine Immunol 2005; 12: 280-286.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221990&pid=S1316-7138201300040000700033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">34. Bhardwaj R, Skelly PJ.  Characterization of schistosome tegumental alkaline phosphatase (SmAP). PLOS  Negl Trop Dis 2011. (citado: 2011 Septiembre 25). Disponible en: e1011.doi:10.1371.  journal.pntd.0001011.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221991&pid=S1316-7138201300040000700034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">35. Barrios EE, Delgado V,  Araque W, Pinto V, Ojeda O, Ayala J. Respuesta humoral murina y humana contra  antígenos solubles de huevo y excreción-secreción de gusanos de Schistosoma  mansoni, tratados con praziquantel. 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