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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Células inflamatorias en la secreción nasal y citocinas proinflamatorias Th1, Th2, Th17 y reguladoras en el suero de pacientes con leishmaniasis cutánea Americana]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In mucocutaneous (MCL) and cutaneous (LCL) leishmaniasis, the inflammatory mediators (cytokines and cells) have been associated with ulcers severity and tissue damage observed in these patients, particularly in MCL. Therefore, we decided to identify the predominant cell groups in the nasal secretion of LCL and MCL patients, and related pro-inflammatory and regulatory cytokines. It was evaluated in LCL (n = 20), MCL patients (n = 14) and 20 healthy volunteers: a) Differential leukocyte count by optical microscopy performed in: smear of a runny nose, skin ulcers and peripheral blood dyed with Giemsa, b) serum levels of IL-8, IL-4 and IL-10 using cytometric bead array (CBA) assay and IFN-&#947;, TNF-&#945; and IL-17 by ELISA. In MCL patients, neutrophils (80.7%) were the most abundant cellular group in nose secretion, followed by a small amount of eosinophils (0.6%) compared to the LCL and controls, where no such cells were observed. In contrast, in peripheral blood from ACL patients were observed an abundant amount of neutrophils and lymphocytes together with a significant frequency of monocytes (MCL:5.3%; LCL: 6.3%) and eosinophils (MCL:8.2%; LCL:5.2%). While the smear from skin ulcers of LCL patients showed 45.3% of neutrophils and 43% lymphocytes. All of these indicate that neutrophils might play a role in the MCL immunopathogenesis. Moreover, an increased serum levels of IL-8 (P=0.03) were found in LCL (18.5&#961;g/mL) and MCL (18.2&#961;g/mL) patients, suggesting that this cytokine promotes the recruitment of neutrophils to the infection site in MCL; while in LCL patients may contribute with CD4 + Th1 (IFN-&#947;) cells in the activation of leishmanicida mechanisms.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Células inflamatorias en la secreción  nasal y citocinas proinflamatorias Th1, Th2, Th17 y reguladoras en el suero de  pacientes con leishmaniasis cutánea Americana</p>     <p align="center">Inflammatory cells in the nasal secretion and serum pro-inflammatory  Th1, Th2, Th17 and regulatory cytokines from American cutaneous leishmaniasis  patients</p> </font><font SIZE="2" face="Verdana">     <p align="center">Dennis A. Lugo<sup>1</sup>, Orquídea L. Rodríguez<sup>1</sup>,  Wilmen Galindo<sup>1</sup>, María E. Ortega<sup>1</sup>, Ángel Cardozo<sup>2</sup>,  Arlet Ferrer<sup>2</sup>, Rosaura Benítez<sup>2</sup>, Aura M. Suarez<sup>2</sup>,  Dorila Delgado<sup>2</sup>, Iraida Mendoza<sup>2</sup>, José Carrero<sup>2</sup>,  Elizabeth Giganti<sup>2</sup>, Alexis Castrillo<sup>2</sup>, Olga Zerpa<sup>1</sup>  &amp; Maira Cabrera*<sup>1</sup></p> </font></b>     <p align="justify"><font size="2"><font face="Verdana">1 Instituto de  Biomedicina &quot;Jacinto Convit&quot;. Universidad Central de Venezuela - Ministerio del  Poder Popular para la Salud (UCV-MPPS). San Nicolás a Providencia. Parroquia San  José. Caracas 1010A, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">2 Servicios de Dermatología Sanitaria  Regionales. Ministerio del Poder Popular para la Salud. Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">*Autor de correspondencia: <a href="mailto:mairacab@gmail.com">mairacab@gmail.com</a></font></p> </font>     <p align="justify"><font size="2"><font face="Verdana"><b>RESUMEN</b> </font> </p>     <p align="justify"><font face="Verdana">En la forma mucocutánea (LCM) y cutánea  (LCL) de la leishmaniasis, se genera una respuesta inflamatoria cuyos mediadores  (células y citocinas) se han involucrado en la severidad de las úlceras y en el  daño tisular observado en estos pacientes, particularmente en los LCM. Por ello,  nos propusimos identificar los grupos celulares predominantes en la secreción  nasal de pacientes con LCL y LCM, y relacionarlos con citocinas proinflamatorias  y reguladoras. Evaluamos en pacientes LCL (n=20), LCM (n=14) y 20 individuos  sanos: a) La cuantificación de tipos de leucocitos en &quot;frotis&quot; de secreción  nasal, úlceras cutáneas y sangre periférica teñidos con Giemsa empleando  microscopía óptica, b) Concentraciones séricas de IL-8, IL-4 e IL-10 por  citometría de flujo (CBA array) e IFN-&#947;, TNF-&#945; e IL-17 por ELISA. El grupo  celular predominante en la secreción nasal de pacientes con LCM fueron los  neutrófilos (80,7%) y escasos eosinófilos (0,6%), comparados con los LCL y  controles, en los que no se observaron estas células. Mientras que los &quot;frotis&quot;  de las ulceras de los LCL presentaron 45,3% de neutrófilos y 43% de linfocitos.  En contraste, en sangre periférica, de los pacientes se observó un incremento de  neutrófilos y linfocitos junto a una frecuencia significativa de monocitos (LCM:  5,3; LCL: 6,3%) y eosinófilos (LCM: 8,2%; LCL: 5,2%). Todo esto sugiere la  participación de los neutrófilos en la inmunopatogénesis en la LCM.  Adicionalmente, se demostró una mayor (</font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>P</i>=0,03)  concentración sérica de IL-8 en los pacientes con LCL (18,5&#961;g/mL) y LCM (18,2&#961;g/mL)  respecto a los individuos sanos, sugiriendo que esta citocina promueve el  reclutamiento de neutrófilos al sitio de infección en los LCM, mientras que en  los LCL contribuyen junto con los linfocitos T CD4+ de la subpoblación Th1 y  productores de IFN-&#947;, en la activación de mecanismos leishmanicidas.</p>     <p align="justify"><b>Palabras clave</b>: leishmaniasis, células  polimorfonucleares, citocinas, secreción nasal.</font></p>     <p align="justify"><font size="2"><font face="Verdana"><b>SUMMARY</b><i> </i> </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana">In mucocutaneous (MCL) and cutaneous (LCL)  leishmaniasis, the inflammatory mediators (cytokines and cells) have been  associated with ulcers severity and tissue damage observed in these patients,  particularly in MCL. Therefore, we decided to identify the predominant cell  groups in the nasal secretion of LCL and MCL patients, and related pro-inflammatory  and regulatory cytokines. It was evaluated in LCL (n = 20), MCL patients (n =  14) and 20 healthy volunteers: a) Differential leukocyte count by optical  microscopy performed in: smear of a runny nose, skin ulcers and peripheral blood  dyed with Giemsa, b) serum levels of IL-8, IL-4 and IL-10 using cytometric bead  array (CBA) assay and IFN-</font></font><font size="2" face="Verdana">&#947;, TNF-&#945;  and IL-17 by ELISA. In MCL patients, neutrophils (80.7%) were the most abundant  cellular group in nose secretion, followed by a small amount of eosinophils  (0.6%) compared to the LCL and controls, where no such cells were observed. In  contrast, in peripheral blood from ACL patients were observed an abundant amount  of neutrophils and lymphocytes together with a significant frequency of  monocytes (MCL:5.3%; LCL: 6.3%) and eosinophils (MCL:8.2%; LCL:5.2%). While the  smear from skin ulcers of LCL patients showed 45.3% of neutrophils and 43%  lymphocytes. All of these indicate that neutrophils might play a role in the MCL  immunopathogenesis. Moreover, an increased serum levels of IL-8 (P=0.03) were  found in LCL (18.5&#961;g/mL) and MCL (18.2&#961;g/mL) patients, suggesting that this  cytokine promotes the recruitment of neutrophils to the infection site in MCL;  while in LCL patients may contribute with CD4 + Th1 (IFN-</font><font SIZE="2"><font face="Verdana">&#947;)  cells in the activation of leishmanicida mechanisms. </font></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><b>     <p align="justify">Key words: </b>leishmaniasis, polymorphonuclear cells,  cytokines, nasal secretion.</font></p>     <p align="justify"><font SIZE="2"><font face="Verdana">Recibido el 09/09/2014  Aceptado el 27/11/2014</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b>INTRODUCCIÓN</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">La Leishmaniasis cutánea Americana (LCA)  es una enfermedad causada por la infección con protozoarios del género </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Leishmania</i>. Dependiendo de la  especie del parásito involucrado y de la respuesta inmunológica de los  individuos infectados (WHO, 2000; Murray <i>et al.</i>, 2005), esta enfermedad  se puede manifestar en diferentes formas clínicas que </font> <font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">afectan la piel o las superficies  mucosas, estas son: </font><font SIZE="2" face="Verdana">leishmaniasis cutánea  localizada (LCL), mucocutánea (LCM) y leishmaniasis cutáneo difusa (LCD) (Convit <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,1993). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">En la forma localizada y mucocutánea de  la </font></font><font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">leishmaniasis, se  establece una respuesta inflamatoria </font><font SIZE="2" face="Verdana">cuyos  mediadores (células y citocinas) han sido implicados en la resolución y  severidad de esta enfermedad (Cabrera <i>et al.</i>,2003; Tapia <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,  2009; Kaye &amp; Scott, 2011). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">En la primera línea de defensa contra  esta </font></font><font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">parasitosis están  involucrados los neutrófilos junto </font><font SIZE="2" face="Verdana">con los  macrófagos (Kolaczkowska &amp; Kubes, 2013) y el establecimiento de la infección, el  desarrollo de la enfermedad clínica o la resolución de la misma dependerá de la  capacidad activación de esta célula fagocítica, (Tapia <i>et al.</i>,2009). Por  otra parte, la fagocitosis de patógenos como <i>Leishmania </i>spp. por </font> <font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">parte de los neutrófilos y los  macrófagos, genera un </font><font SIZE="2" face="Verdana">microambiente de  citocinas y quimiocinas, tales como la Interleucina(IL)-1, IL-6, Interferón(IFN)-&#947;,  Factor </font><font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">de Necrosis Tumoral (TNF)-&#945;  y CXCL8 (IL-8) que </font><font SIZE="2" face="Verdana">contribuyen con el  reclutamiento y activación de las mismas así como de otras células, como  monocitos y células dendríticas (DCs) (Scapini <i>et al.</i>, 2000; Bennouna <i> et al.</i>,2003; Nathan <i>et al.</i>, 2006), además de </font> <font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">influir en la polarizació de la  respuesta dependiente </font><font SIZE="2" face="Verdana">de los linfocitos T  cooperadores (Th, por sus siglas en inglés) (Bennouna <i>et al.</i>, 2003;  Antonelli <i>et al.</i>, 2005; Nathan <i>et al.</i>, 2006; MacFarlane <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,  2008). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Un patrón de respuesta de linfocitos  CD4+ Th de tipo 1 (Th1) se ha descrito en modelos múrinos resistentes a </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Leishmania </i>spp. (Scott <i>et al.</i>,1988;  Heinzel <i>et al.</i>, 1989) y en pacientes que presentan LCL (Caceres-Dittmar <i>et al.</i>, 1993; Castes <i>et al.</i>,1996), produciéndose concentraciones  adecuadas de IFN-&#947;</font><font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">, TNF-&#945; e IL-2,  que conlleva a la eliminació </font><font face="Verdana" SIZE="2">de los  parásitos por parte de los macrófagos mediante producción de óxido nítrico (Caceres-Dittmar </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al.</i>, 1993; Castes <i>et al.</i>,  1996; De Trez <i>et al.</i>,2009). Mientras que, los pacientes con LCM secretan  citocinas del patrón Th1 y Th2 (Cáceres-Dittmar <i>et al.</i>, 1993),  observándose una elevada producción de IFN-&#947;, TNF-&#945; y óxido nítrico, en ausencia  de una adecuada regulación por parte de IL-10 y TGF-&#946; y baja carga parasitaria (Castes <i>et al.</i>, 1996; Ribeiro de Jesús <i>et al.</i>,1998; Cabrera <i>et al.</i>,  2003; Díaz <i>et al.</i>, 2005). Recientemente, se ha descrito la presencia de  células IL-17+ en lesiones tisulares de estos pacientes (LCM) (Boaventura <i>et  al.</i>, 2010). Todos estos hallazgos sugieren que el daño tisular que presentan  los pacientes con LCM en sus mucosas, es debido a una exacerbada respuesta  inflamatoria (Cabrera <i>et al.</i>, 2003; Faria <i>et al.</i>, 2005;  Kolaczkowska <i>et al.</i>, 2013; Oliveira <i>et al.</i>, 2014). Por lo que nos  propusimos evaluar a través de métodos no invasivos los tipos celulares  predominantes, en la secreción nasal de los pacientes con las formas cutánea  localizada y mucocutánea de la leishmaniasis y relacionarlos con citocinas  séricas proinflamatorias y reguladoras con el fin de evidenciar en el proceso  inflamatorio que </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">se establece en esta  secreción; lo cual sería de valor diagnóstico y pronóstico.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana">MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>     <p align="justify">Población de estudio </p> </i></font><font SIZE="2">     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana">El estudio comprendió un total de 34  pacientes con LCA (LCL, n=20; LCM, n=14), con rango de edades comprendidos entre  18 y 60 años, los cuales fueron evaluados en la Sección clínica de leishmaniasis  del Instituto de Biomedicina &quot;Dr. Jacinto Convit&quot; y en los diferentes Servicios  de Dermatología Sanitaria Regionales de Venezuela. Los pacientes fueron  diagnosticados siguiendo los criterios clínicos, epidemiológicos e  histopatológicos establecidos por Convit (1974). Ninguno de los pacientes se  encontraba bajo algún tipo de tratamiento al momento de realizar el estudio. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Como controles se incluyeron un total de  20 individuos voluntarios sanos, con un rango de edades comprendidos entre 18 y  60 años. Todos provenientes de diferentes zonas endémicas de Venezuela y fueron  negativos a la prueba cutánea de hipersensibilidad retardada (Prueba de  Montenegro o Leishmanina).</font></p> <i>     <p align="justify"><font face="Verdana">Determinación de los grupos celulares  presentes en sangre periférica, secreción nasal y lesión </font></p> </i></font><font FACE="Verdana" SIZE="2">     <p align="justify">Se tomaron muestras de 5 mL de sangre periférica por  venopunción a cada uno de los pacientes y controles, posteriormente se extendió  una gota de esta muestra sobre una lámina portaobjeto. Para el conteo celular en  la secreción nasal se introdujo un hisopo impregnado con solución salina en las  fosas nasales de los pacientes con LCL, LCM y voluntarios sanos y se realizó un  frotis sobre una lámina porta objeto. A los pacientes con LCL se les realizó  también un frotis por aposición de la lesión en piel sobre una lámina porta  objeto. Todas las muestras se dejaron secar a temperatura ambiente y se fijaron  con metanol. Posteriormente, mediante una tinción de Giemsa, se cuantificó el  porcentaje de neutrófilos, linfocitos, monocitos y eosinófilos presentes en cada  muestra, por contaje directo empleando un microscopio óptico (Olympus CH30) a  400X.</p> <i>     <p align="justify">Determinación de citocinas </p> </i>     <p align="justify">Las concentraciones de IL-4, IL-8 e IL-10 en el suero de los  pacientes e individuos sanos fueron determinadas por citometría de flujo (FACSCanto  (BD Biosciences), mediante un kit comercial (&quot;CBA: Cytometric bead array&quot; BD  Bioscience, USA), siguiendo el procedimiento del fabricante con una curva patrón  para cada citocina (0 a 5000 pg/mL). Los datos obtenidos se analizaron con el  software BD™ Cytometric Bead Array (CBA) para obtener la concentraciones en &#961;g/mL. </p>     <p align="justify">Las concentraciones de TNF-&#945;, IFN-</font><font SIZE="2" face="Symbol">g</font><font FACE="Verdana" SIZE="2">  e IL-17 se determinaron mediante ELISA de captura comerciales siguiendo las  instrucciones del fabricante (R&amp;D Systems, MN, USA). Las concentraciones de cada  citocina se obtuvieron a partir de una curva patrón construida con recombinante  de cada citocina suministradas por los kits (Human TNF-&#945; DuoSet®, sensibilidad:  15,6 - 1000 &#961;g/mL; Human IFN-&#947; DuoSet®, sensibilidad: 15,6 - 1000 &#961;g/mL; Human  IL-17A/F Heterodimer, sensibilidad: 156 - 10000 &#961;g/mL, (R&amp;D Systems, MN, USA).  Los resultados fueron expresados en pg/mL.</p> <i>     <p align="justify">Análisis estadístico </p> </i>     <p align="justify">Las diferencias entre los grupos de pacientes para cada  parámetro evaluado fueron establecidas </p>     <p align="justify">mediante el test de Mann-Whitney U debido a que los datos no  tenían una distribución normal. Las comparaciones fueron consideradas  significativas cuando <i>P&lt; </i>0,05. Para los análisis se usó el programa Prism  5 para Windows, versión 5.01 (GraphPad Software, Inc. 2007).</p> <i>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Consideraciones éticas </p> </i>     <p align="justify">El estudio fue aprobado por el Comité de Bioética del  Instituto de Biomedicina, Ministerio del Popular para la Salud y Universidad  Central de Venezuela. Los individuos incluidos en el estudio, fueron debidamente  informados e invitados a participar en el mismo. Ellos firmaron un </font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">consentimiento informado.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana">RESULTADOS</font></b></p> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>     <p align="justify">Frotis de la secreción nasal y sangre periférica </p> </i>     <p align="justify">En los frotis de la secreción nasal de los pacientes con  lesiones mucocutáneas se observaron un 80,7 % de neutrófilos y muy escasos  eosinófilos (0,6 % ± 1,4), mientras que las células mononucleares (linfocitos y  monocitos) estuvieron ausentes. En contraste, no se observó ningún grupo celular  en la secreción nasal de los individuos sanos y los pacientes con LCL (<a href="#tab1">Tabla  I</a>).</font></p>     <p align="center"><font SIZE="2"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v54n2/art03tab1.gif" width="337" height="195"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana">En las lesiones de los pacientes con LCL, </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2">predominaron los neutrófilos (45,3%  ± 12,0) seguido por los linfocitos (43,0% ± 12,2), mientras que los monocitos  (9,3% ± 5,3) y los eosinófilos (2,5% ± 1,5) fueron los grupos minoritarios. </p>     <p align="justify">En sangre periférica (<a href="#tab2">Tabla II</a>) los  neutrófilos </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">y los linfocitos  constituyeron los grupos celulares predominantes en los pacientes LCL, LCM e  individuos sanos, sin mostrar diferencias significativas entre </font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">ellos. Adicionalmente, se evidenció una mayor (<i>P&lt;</i>0,05)  proporción de monocitos en la sangre periférica de los pacientes LCL (6,3% ±  3,5) y LCM (5,3% ± 2,0) comparado con los individuos sanos (3,5% ± 1,6); más  aún, el mayor porcentaje (<i>P&lt;</i></font><font face="Verdana">0,05) de  eosinófilos fue evidenciado en los </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"> pacientes con LCM (8,2 % ± 5,0) aunque en los pacientes con LCL, evidenciamos un  incremento (5,2% ± 4,3) en estas células (<i>P&lt;</i>0,015) respecto a los  controles (3,8% ± 5,4).</font></font></p>     <p align="center"><font SIZE="2"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v54n2/art03tab2.gif" width="499" height="146"></a></p> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>     
<p align="justify">Citocinas séricas </p> </i>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">Las concentraciones de citocinas proinflamatorias (IL-8, TNF-&#945;),  citocinas del patrón Th1 (IFN-<font SIZE="2" face="Symbol">g</font>), Th2  (IL-4), Th17 (IL-17) y reguladoras (IL-10) en los sueros de los pacientes  evaluados se presentan en la <a href="#fig1">Fig. 1</a>, evidenciamos mayor  concentración de IL-8 en los pacientes LCL (18,5 ± 8,7 &#961;g/mL) y LCM (18,2 ± 12,3  &#961;g/mL) en comparación con los controles (10,1 ± 3,9 &#961;g/mL, <i>P&lt;</i>0,05).  Asimismo se observó un leve aumento de TNF-&#945; en los pacientes LCM (64,4 ± 67,0  &#961;g/mL), mientras que en los pacientes LCL (68,2 ± 15,8 &#961;g/mL) los valores de IFN-&#947;  fueron significativamente mayores en comparación con los evidenciados en LCM  (45,6 ± 7,2 &#961;g/mL) e individuos sanos (48,4 ± 9,5 &#961;g/mL). No encontramos  diferencias significativas entre los grupos de pacientes y controles cuando  comparamos las concentraciones de IL-4 e IL-10, sin embargo, se aprecia que los  valores de IL-4 tienden a ser menores en los pacientes mucocutáneos (7,5 ± 2,0  &#961;g/mL). Por otro lado, observamos un leve aumento de IL-17 en los individuos con  LCL (272,4 ± 90,6 &#961;g/mL) respecto a lo detectado en los pacientes LCM (223,7 ±  47,7 &#961;g/mL) e individuos sanos (181,9 ± 50,6 &#961;g/mL).</p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/bmsa/v54n2/art03fig1.gif" width="512" height="594"></a></p> </font>     
<p align="justify"><font face="Verdana"><b>DISCUSIÓN</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Diversas investigaciones han indicado  que el daño tisular que se observa en los pacientes con LCA, particularmente en  los LCM, se debe a la respuesta </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"> inflamatoria que se suscita en las lesiones, las cuales en la mayoría de los  casos (90%) se presentan en la mucosa nasal (Castes <i>et al.</i>, 1996;  Bacellar <i>et al.</i>, 2002; Cabrera <i>et al.</i>, 2003; Miranda <i>et al.</i>,  2007). En el presente trabajo pudimos evidenciar en muestras de secreción nasal  de pacientes con LCM la respuesta inflamatoria que se establece en las lesiones,  aspecto </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">muy importante ya que esto  podría permitir la detección temprana de este proceso y prevenir daños  irreversibles en el tabique nasal y zonas adyacentes. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Esta respuesta evidenciada en los  pacientes con LCM estuvo constituida principalmente por un </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">alto porcentaje de neutrófilos seguido de un  número de eosinófilos bajo, comparado con los LCL y controles, en los que no se  observó ningún grupo celular en su fluido nasal. Lo cual pudiese indicar una  migración de neutrófilos desde el torrente sanguíneo hacia las mucosas, en las  cuales estas células podrían desempeñar un papel importante en la  inmunopatogénesis de esta forma de la enfermedad. Los neutrófilos además de su  capacidad para fagocitar y destruir a los microorganismos incluyendo a <i> Leishmania </i>spp., son fundamentales en el inicio del proceso inflamatorio, se  ha descrito que ejecutan importantes funciones inmunoreguladoras en diferentes  infecciones (Scapini <i>et al.</i>, 2000; Tacchini-Cottier <i>et al.</i>, 2000).  Por lo cual, una inapropiada o excesiva activación de este grupo celular puede  generar como resultado daño tisular (Kalaczkowska <i>et al.</i>, 2013).</font></p> <font SIZE="2">     <p align="justify"><font face="Verdana">Por otra parte, se conoce que los  monocitos juegan un papel muy importante en el proceso de activación,  diferenciación y supervivencia de los linfocitos T y B. Esto se debe a que los  mismos son los precursores inmediatos de los macrófagos y las </font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">células dendríticas inflamatorias, ambas células </font><font face="Verdana">presentadoras de antígenos profesionales, que en  conjunto con la expresión de moléculas HLA-DR/péptidos y moléculas  co-estimuladoras proporcionan las primeras señales de activación a los  linfocitos T (Geissmann, 2007; Maroof </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et  al.</i></font><font face="Verdana">, 2009; Jain </font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al.</i></font><font face="Verdana">, 2011;  Kaye &amp; Scott, 2011). En este estudio se evidenció un aumento en el porcentaje de  monocitos en la sangre periférica en los paciente con ambas formas de  leishmaniasis evaluadas, también se observó un mayor porcentaje de monocitos y  linfocitos en las lesiones de los pacientes LCL comparados con los encontrados  en sangre periférica, evidenciándose el </font></font> <font SIZE="2" face="Verdana">proceso inflamatorio que se produce en la lesión. </p>     <p align="justify">Los eosinófilos han sido asociados con la respuesta inmune  frente a infecciones con helmintos (Blanchard &amp; Rothenberg, 2009). Por el  contario, éstos no han sido involucrados en la respuesta inmune en infecciones  con protozoarios. Sin embargo, existen evidencias experimentales que involucran  a estas células durante la infección con <i>Leishmania</i>. En ese sentido, se  ha observado la quimiotaxis <i>in vitro </i>de eosinófilos hacia promastigotes  de <i>L. amazonensis </i>(de Oliveira <i>et al.</i>, 2010). Otros estudios in  vivo han mostrado el reclutamiento de estas células hacia los sitios de  infección con <i>L. amazonensis </i>y <i>L. major </i>(Saito <i>et al.</i>,1996).  También, se ha evidenciado que los eosinófilos tienen actividad microbicida  contra <i>L. mexicana </i>y <i>L. donovani</i>, mediante la ingestión y  digestión de los mismos en el interior de la vacuola fagocítica. Por otra parte,  se ha descrito que la fijación de los parásitos a la superficie de los  eosinófilos induce la liberación de sus gránulos a la superficie de la <i> Leishmania </i>y causando su destrucción. (Pearson <i>et al.</i>,1987; Pimenta <i>et al.</i>, 1987). Más aún, en pacientes infectados con <i>L. braziliensis </i>se ha observado una alta proporción de neutrófilos y eosinófilos en el  infiltrado celular de linfoadenopatías en fase temprana, comparado con los  pacientes que presentan úlceras en piel y en la fase tardía de las  linfoadenopatías (Bomfim <i>et al.</i>, 2007). En nuestro estudio, encontramos  en los pacientes con LCM un mayor porcentaje de eosinófilos en sangre periférica  comparado con lo observado en los pacientes LCL y controles. En contraste, estas  células estaban presentes muy escasamente en la secreción nasal de los pacientes  LCM y en las lesiones cutáneas de los LCL, lo que nos hace suponer que estas  células quizás no están participando en el proceso inmunopatológico presente en  las lesiones de estos individuos. Queda para futuros estudios evaluar la  participación de estas células en la infección por <i>Leishmania </i></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">spp. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Por otra parte, la IL-8, quimiocina  producida por una variedad de células, incluyendo las células </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">epiteliales nasales, fibroblastos nasales,  queratinocitos entre otras (Jacobi <i>et al.</i>, 1998; Charmoy <i>et al.</i>,  2010) es importante en el reclutamiento de los neutrófilos (Van Zandbergen <i>et  al.</i>, 2002), no así para los eosinófilos en las vías respiratorias superiores  (Bochenska-Marciniak <i>et al.</i>, 2003). Más aún, se ha demostrado que es  producida por monocitos humanos infectados con <i>Leishmania major </i>y tiene  actividad quimiotáctica para neutrófilos y monocitos (Badolato <i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,  1996). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">En este trabajo se detectaron </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2">concentraciones significativas de IL-8 en  el suero de los pacientes con leishmaniasis, lo que podría explicar la presencia  de neutrófilos en la mucosa de los sujetos con LCM y en la lesión de los  pacientes LCL. Esta quimiocina, podría estar actuando en conjunto con citocinas  como IL-17 y TNF-&#945;, las cuales también han sido asociadas con la quimiotaxis de  los neutrófilos (Charmoy <i>et al.</i>, 2010), aunque nuestro estudio no reflejó  diferencias significativas en las concentraciones de estas dos </font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">últimas citocinas, se observó un leve  aumento de ambas en los sueros de los pacientes con lesiones cutáneas o  mucocutáneas. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Por otro lado, con relación a la IL-4 e  IL-</font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2">10, tampoco se observaron cambios  significativos en las concentraciones séricas de ambas citocinas, las cuales  promueven el desarrollo de un patrón de respuesta inmunitaria de tipo Th2 (Garside <i>et al.</i>, 1995; Oliveira <i>et al.</i>, 2014), que actúan como factor de  crecimiento/diferenciación de los linfocitos B, eosinófilos e inhiben las  funciones de los macrófagos </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">(Mossmann  &amp; Coffman, 1989). </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana">Múltiples estudios han demostrado que  una respuesta de tipo Th1, con una alta producción </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">de citocinas proinflamatorias como TNF-&#945;, una  deficiente regulación de IFN-&#947; y una alteración en la producción de la IL-10 o  su receptor (rIL-10) generan una respuesta inflamatoria exacerbada que es  responsable de la progresión y cronicidad de la lesión en mucosa (Bacellar <i>et  al.</i>, 2002; Faria <i>et al.</i>, 2005), otros estudios también han demostrado  que pacientes mucocutáneos producen más TNF-&#945; y menos IL-10 en comparación con  los LCL (Castes <i>et al.</i>, 1993; Tacchini-Cottier <i>et al.</i>, 2000),  indicando que el problema de la regulación de TNF-&#945; y otras citocinas  proinflamatorias es debido a la baja expresión de receptores para IL-10 en la  células de las lesiones de la mucosa (Faria <i>et al.</i>, 2005), además, como  ya hemos señalado, nuestros resultados sugieren que el daño tisular presente en  los pacientes con LCM pudiese estar promovido en parte por la permanente  presencia de los neutrófilos atraídos hacia la mucosa </font><font SIZE="2"> <font face="Verdana">por la alta concentración de IL-8.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Adicionalmente, evidenciamos un  incremento en la concentración de IFN-&#947; en los pacientes LCL, junto con un leve  aumento de IL-17. Otros autores afirman que la acción conjunta de las citocinas  IFN-&#947; </font></font><font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">y TNF-&#945; estáasociada </font><font SIZE="2" face="Verdana">con el proceso de inflamación que se  desarrolla en las lesiones (Castes <i>et al.</i>, 1996; Bacellar <i>et al.</i>,  2002), mientras que la IL 17 también se ha implicado en la defensa contra varios  agentes intracelulares (Weaver <i>et al.</i>, 2007; Korn <i>et al.</i>, 2009),  ya que contribuye en la producción de diversos mediadores inflamatorios como IL-</font><font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">1,  IL-6, TNF-&#945; (Korn </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al.</i></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">,  2009) junto con el reclutamiento de los neutrófilos por parte de la IL-8,  probablemente hacia las lesiones cutáneas, contribuyendo junto con los  linfocitos T CD4+ del patrón Th1, en la activación de mecanismos leishmanicidas  dando como resultado la resolución de la lesión. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">El estudio de factores asociados a esta  respuesta en la mucosa nasal, a través de métodos no invasivos, como el estudio  con muestras de fluidos y secreción nasal puede aportar importante información  de los mecanismos inmunopatológicos asociados, al igual que estudios realizados  con biopsias y/o citologías, que pudiese tener valor diagnóstico y pronóstico.  En conclusión, los pacientes con LCM mostraron la presencia de células  inflamatorias (neutrófilos y eosinófilos) en su secreción nasal a diferencia de  los pacientes con LCL e individuos sanos en lo que no se evidenció ningún grupo  celular, que en conjunto con una alta producción de IL-8, </font></font> <font FACE="Verdana" LANG="JA" SIZE="2">TNF-&#945; e IL-17 séico, pudiesen estar  influyendo </font><font SIZE="2" face="Verdana">en la inmunopatogénesis de esta  enfermedad.</p> <i>     <p align="justify"><b>Conflicto de intereses </b></p> </i></font><font SIZE="2">     <p align="justify"><font face="Verdana">Los autores del trabajo declaramos que  para y durante la realización de este trabajo no se presentó ningún conflicto de  intereses.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b>AGRADECIMIENTOS</b> </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana">Agradecemos a los pacientes, voluntarios  sanos, personal médico y técnico pertenecientes a los Servicios de Dermatología  Sanitaria Regionales por la cooperación en el desarrollo de este trabajo. Este  trabajo fue financiado por la Universidad Central de Venezuela a través del CDCH  NºPG-09-8736-2013/1. </font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana">REFERENCIAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">1. Antonelli L. R. V., Dutra W. O.,  Almeida R. P., Bacellar O., Carvalho E. M. &amp; Gollob K. J. (2005). </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">Activated inflammatory T cells correlate with  lesion size in human cutaneous leishmaniasis. <i>Immunol. Lett. </i><b>101: </b> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">226-230.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853429&pid=S1690-4648201400020000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">2. Badolato R., Sacks D. L., Savoia D. &amp;  Musso T. (1996). </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Leishmania major: </i>infection of human monocytes induces expression of IL-8 and MCAF. <i>Exp.  Parasitol. </i><b>82: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">21-26.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853430&pid=S1690-4648201400020000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">3. Bacellar O., Lessa H., Schriefer A.,  Machado P., Jesus A. R. de, Dutra W. O., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2002). Up-Regulation of Th1-Type  Responses in Mucosal Leishmaniasis Patients. <i>Infect. Immun. </i><b>70: </b> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">6734-6740. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853431&pid=S1690-4648201400020000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">4. Bennouna S., Bliss S. K., Curiel T.  J. &amp; Denkers E. Y. (2003). Cross-talk in the innate immune system: Neutrophils  instruct recruitment and activation of dendritic cells during microbial  Infection. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>J. Immunol. </i><b> 171: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">6052-6058.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853432&pid=S1690-4648201400020000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">5. Boaventura V. S., Santos C. S.,  Cardoso C. R., de Andrade J., Dos Santos W. L. C., Clarêncio J., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2010). Human mucosal leishmaniasis:  neutrophils infiltrate areas of tissue damage that express high levels of Th17-related  cytokines. <i>Eur. J. Immunol. </i><b>40: </b>2830-2836. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853433&pid=S1690-4648201400020000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">6. Boche&#324;ska-Marciniak M., Kupczyk M., Górski P. &amp; Kuna P.  (2003). The effect of recombinant interleukin-8 on eosinophils’ and neutrophils’  migration in vivo and <i>in vitro</i>. <i>Allergy. </i><b>58: </b>795-801. &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853434&pid=S1690-4648201400020000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">7. Bomfim G., Andrade B. B., Santos S., Clarencio J., Barral-Netto  M. &amp; Barral A. (2007). Cellular analysis of cutaneous leishmaniasis  lymphadenopathy: insights into the early phases of human disease. <i>Am. J. Trop.  Med. Hyg. </i><b>77: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">854-859. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853435&pid=S1690-4648201400020000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">8. Blanchard C. &amp; Rothenberg M. E.  (2009). Biology of the eosinophils. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"> <i>Adv. Immunol. </i><b>101: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana"> 81-121.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853436&pid=S1690-4648201400020000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">9. Convit J. (1974). Leishmaniasis.  Similar clinical-immunological-pathological models. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Ethiop. Med. J. </i><b>12: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">187-195.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853437&pid=S1690-4648201400020000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">10. Convit J., Ulrich M., Fernández C.  T., Tapia F. J., Cáceres-Dittmar G., Castés M., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(1993). The clinical and  immunological spectrum of American cutaneous leishmaniasis. <i>Trans. R. Soc.  Trop. Med. Hyg. </i><b>87: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana"> 444-448. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853438&pid=S1690-4648201400020000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">11. Cabrera M., Rodríguez O., Monsalve  I., Tovar R. &amp; Hagel I. (2003). Variations in the serum levels of soluble CD23,  nitric oxide and IgE across the spectrum of American cutaneous leishmaniasis. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Acta Trop. </i><b>88: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">145-151. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853439&pid=S1690-4648201400020000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">12. Caceres-Dittmar G., Tapia F. J.,  Sánchez M. A., Yamamura M., Uyemura K., Modlin R. L., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(1993). Determination of the  cytokine profile in American cutaneous leishmaniasis using the polymerase chain  reaction. <i>Clin. Exp. Immunol. </i><b>91: </b></font><font SIZE="2"> <font face="Verdana">500-505.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853440&pid=S1690-4648201400020000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">13. Castés M., Cabrera M., Trujillo D.,  Rodas A., Scott </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2">D. &amp; Blackwell J.  (1996). Cytokine profile in human American cutaneous leishmaniasis. New  dimensions in Parasitology. <i>Acta Parasitol. Turçica. </i><b>20: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">45-57. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853441&pid=S1690-4648201400020000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">14. Castés M., Trujillo D., Rojas M. E.,  Fernandez C. T., Araya L., Cabrera M., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(1993). Serum levels of tumor  necrosis factor in patients with American cutaneous leishmaniasis. <i>Biol. Res. </i><b>26: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">233-238.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853442&pid=S1690-4648201400020000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">15. Charmoy M., Auderset F., Allenbach  C. &amp; Tacchini-Cottier F. (2010). The prominent role of neutrophils during the  initial phase of infection by </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i> Leishmania </i>parasites. <i>J. Biomed Biotechnol. </i><b>2010: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">719361.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853443&pid=S1690-4648201400020000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana">16. De Trez C., Magez S., Akira S.,  Ryffel B., Carlier Y. &amp; Muraille E. (2009). iNOS-Producing </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">Inflammatory Dendritic Cells Constitute the Major  Infected Cell Type during the Chronic <i>Leishmania major </i>Infection Phase of  C57BL/6 Resistant Mice. <i>PLoS. Pathog</i>. <b>5:</b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">e1000494.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">17. de Oliveira C. F., de Souza C. da  S., Mendes V. G., Abreu-Silva A. L., Goncalves S. C. &amp; Calabrese K. S. (2010).  Immunopathological studies of </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i> Leishmania amazonensis </i>infection in resistant and in susceptible mice. <i>J.  Infect. Dis. </i><b>201: </b>1933-1940.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853445&pid=S1690-4648201400020000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify">18. Diaz N. L., Arvelaez F. A., Zerpa O. &amp; Tapia F. J.  (2005). Inducible nitric oxide synthase and cytokine pattern in lesions of  patients with American cutaneous leishmaniasis. <i>Clin. Exp. Dermatol. </i><b> 31: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">114-117. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853446&pid=S1690-4648201400020000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">19. Faria D. R., Gollob K. J., Barbosa  J., Schriefer A., Machado P. R. L., Lessa H., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2005). Decreased In Situ Expression  of Interleukin-10 Receptor Is Correlated with the Exacerbated Inflammatory and  Cytotoxic Responses Observed in Mucosal Leishmaniasis. <i>Infect Immun. </i><b> 73: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">7853-7859. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853447&pid=S1690-4648201400020000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">20. Garside P. &amp; Mowat A. M. (1995).  Polarization of Th-cell responses: a phylogenetic consequence </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">of nonspecific immune defence? <i>Immunol. Today. </i><b>16: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">220-223.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853448&pid=S1690-4648201400020000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">21. Geissmann F. (2007). The origin of  the dendritic cells. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Nat. Immunol. </i><b>8: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">558-560.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853449&pid=S1690-4648201400020000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">22. Grimaldi G. Jr., Soares M. J. &amp;  Moriearty P. L. (1984). Tissue eosinophilia and </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Leishmania mexicana mexicana </i>eosinophil  interactions in murine cutaneous leishmaniasis. <i>Parasite Immunol. </i><b>6: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">397-408.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853450&pid=S1690-4648201400020000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">23. Heinzel F. P., Sadick M. D., Holaday  B. J., Coffman R. L. &amp; Locksley R. M. (1989). Reciprocal expression of  interferon-gamma or interleukin-4 during the resolution or progression of murine  leishmaniasis. Evidence for the expansion of distinct helper T cell subsets. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>J. Exp. Med. </i><b>169: </b> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">59-72.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853451&pid=S1690-4648201400020000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">24. Jacobi H. H., Poulsen L. K., Reimert  C. M., Skov P. S., Ulfgren A.-K., Jones I., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(1998). IL-8 and the Activation of  Eosinophils and Neutrophils following Nasal Allergen Challenge. <i>Int. Arch.  Allergy Immunol. </i><b>116: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana"> 53-59. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853452&pid=S1690-4648201400020000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">25. Jain S., Chodisetti S. B. &amp; Agrewala  J. N. (2011). CD40 Signaling Synergizes with TLR-2 in the BCR Independent  Activation of Resting B Cells. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i> PLoS. ONE. </i><b>6:</b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">e20651. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853453&pid=S1690-4648201400020000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">26. Kaye P. &amp; Scott P. (2011).  Leishmaniasis: complexity at the host–pathogen interface. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Nat. Rev. Microbiol. </i><b>9: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">604-615. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853454&pid=S1690-4648201400020000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">27. Kolaczkowska E. &amp; Kubes P. (2013).  Neutrophil recruitment and function in health and </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">inflammation. <i>Nat. Rev. Immunol. </i><b>13: </b> </font><font SIZE="2"><font face="Verdana">159-175.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853455&pid=S1690-4648201400020000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">28. Korn T., Bettelli E., Oukka M. &amp;  Kuchroo V. K. (2009). IL-17 and Th17 Cells. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Annu. Rev. Immunol. </i><b>27: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">485-517. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853456&pid=S1690-4648201400020000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">29. Maroof A., Beattie L., Kirby A.,  Coles M. &amp; Kaye P. M. (2009). Dendritic Cells Matured by </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2">Inflammation Induce CD86-Dependent Priming of  Naive CD8+ T Cells in the Absence of Their Cognate Peptide Antigen. <i>J.  Immunol. </i><b>183: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">7095-103.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853457&pid=S1690-4648201400020000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">30. McFarlane E., Perez C., Charmoy M.,  Allenbach C., Carter K. C., Alexander J., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2008). Neutrophils Contribute to  Development of a Protective Immune Response during onset of Infection with <i> Leishmania donovani</i>. <i>Infect. Immun. </i><b>76: </b></font><font SIZE="2"> <font face="Verdana">532-541.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853458&pid=S1690-4648201400020000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">31. Miranda M., Andrade H., Castro T.,  Oliveira A., Scherifer A., Machado P., </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>et al. </i>(2007). Mucosal leishmaniasis:  epidemiological and clinical aspects. <i>Rev. Bras. Otorrinolaringol. </i><b>73: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">843-847.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853459&pid=S1690-4648201400020000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">32. Mosmann T. R. &amp; Coffman R. L.  (1989). TH1 and TH2 cells: Different patterns of lymphokine secretion lead to  different functional properties. </font></font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i> Annu. Rev. Immunol. </i><b>7: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana"> 145-173. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853460&pid=S1690-4648201400020000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">33. Murray H. W., Berman J. D., Davies  C. R. &amp; Saravia N. G. (2005). Advances in leishmaniasis. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>The Lancet. </i><b>366: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">1561-1577. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853461&pid=S1690-4648201400020000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">34. Nathan C. (2006). Neutrophils and  immunity: challenges and opportunities. </font></font> <font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Nat. Ver. Immunol. </i><b>6: </b></font> <font SIZE="2"><font face="Verdana">173-182. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853462&pid=S1690-4648201400020000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">35. Oliveira W. N., Ribeiro L. E.,  Schrieffer A., Machado P., Carvalho E. M. &amp; Bacellar O. (2014). The role </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2">of inflammatory and anti-inflammatory  cytokines in the pathogenesis of human tegumentary leishmaniasis. <i>Cytokine. </i><b>66: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana">127-132.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853463&pid=S1690-4648201400020000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">36. Pearson R. D., Uydess I. L., Chapman  S.W., Steigbigel R. T. (1987). Interaction of human eosinophils with </font> </font><font FACE="Verdana" SIZE="2"><i>Leishmania donovani</i>. <i>Ann. Trop.  Med. Parasitol. </i><b>81: </b></font><font SIZE="2"><font face="Verdana"> 735-739.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2853464&pid=S1690-4648201400020000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana">37. Pimenta P. F., Dos Santos M. A. &amp; De  Souza W. (1987). 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