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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Efecto de extractos acuosos de Pteridium aquilinum L. Kuhn var. Caudatum sobre el crecimiento de plántulas de Solanum lycopersicum L.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In order to evaluate the effects of aqueous extracts of Pteridum aquilinum L. Kuhn var caudatum (bracken fern) on growth of seedlings Solanum lycopersicum L. (tomatoes) plants of bracken fern were collected in infested fields located in the Aldea Mesa of Aura, of Táchira state. To obtain the aqueous extracts, the fronds were place and water boiling and environment temperature water. The experiment was established in a completely randomized design, the plants were obtained from seeds, sown in recipients of 25 ml of capacity, with sandy soil frank texture and applications every other day with aqueous extracts to the concentrations of 5, 10, 20, 30 and 40% m/v, compared with a treatment with distilled water (0%). Were harvested at the 26 days after of sowing, three plants of each treatment were used for determinations of dry matter and radical morphology. The results indicate that the accumulation of dry matter in leaf and roots in plants of S. lycopersicum L., decreased, with respect to treatment with destiled water, with increased the concentration of aqueous extracts. The most phytotoxic extracts were the obtained to temperature environment (26 °C), the concentrations of 20, 30 and 40% m/v totally inhibited the growth of the plants after 26 days of seeded. The root length was strongly affected.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Efecto de extractos acuosos de Pteridium aquilinum L.  Kuhn var. Caudatum  sobre el crecimiento de plántulas de Solanum lycopersicum L.</b></font></p>     <p align="center"><b><font size="2" face="Verdana">  Effect of aqueous extracts of Pteridium aquilinum L. Kuhn var. Caudatum  on the growth of plants of Solanum lycopersicum L.</font></b></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">  Belitza Ch. Bracho<sup>1</sup> y Olga Arnaude<sup>1</sup></font></p>     <p align="center"><font size="2" face="Verdana">  <sup>1</sup>Profesoras. Universidad Nacional Experimental del Táchira (UNET). San Cristóbal  5001, estado Táchira. Venezuela.  Correos electrónicos: <a href="mailto:belitzabracho26@hotmail.com"> belitzabracho26@hotmail.com</a> , <a href="mailto:oarana@unet.edu.v"> oarana@unet.edu.v</a> </font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Con el objetivo de evaluar el efecto de extractos acuosos  de Pteridium aquilinum L. Kuhn var. caudatum (helecho  macho) sobre el crecimiento de plantas de Solanum  lycopersicum L. (tomate), se colectaron plantas de  helecho macho en potreros infestados, ubicados en  la Aldea Mesa de Aura, estado Táchira. Para obtener  los extractos acuosos se colocaron las hojas en agua  hirviendo y a temperatura ambiente. El ensayo se estableció  con un diseño experimental completamente al  azar, las plantas fueron obtenidas a partir de semillas  sembradas en recipientes de 25 ml de capacidad, con  suelos de textura franca y aplicaciones cada 2 días  con extractos acuosos a las concentraciones de 5, 10,  20, 30 y 40% m/v, en comparación con un tratamiento  con agua destilada (0%). Se cosecharon a los 26 días  después de la siembra (DDS), se utilizaron tres  plantas de cada tratamiento para la determinación de  materia seca y la morfología radical. Los resultados  indican que la acumulación de materia seca en hojas  y raíces en plantas de S. lycopersicum L., disminuyó  con respecto al tratamiento con agua destilada, con el  aumento de la concentración de los extractos acuosos.  Los extractos más fitotóxicos se obtuvieron a la  temperatura ambiente (26 °C), las concentraciones  de 20, 30 y 40% m/v inhibe totalmente el crecimiento  de las plantas a los 26 DDS. La longitud de la raíz se  vio fuertemente afectada.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Palabras clave:</b> helecho macho, tomate, fototoxicidad,  materia seca, longitud de las raíces.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">ABSTRACT</font></b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  In order to evaluate the effects of aqueous extracts of  Pteridum aquilinum L. Kuhn var caudatum (bracken  fern) on growth of seedlings Solanum lycopersicum  L. (tomatoes) plants of bracken fern were collected  in infested fields located in the Aldea Mesa of Aura,  of Táchira state. To obtain the aqueous extracts, the  fronds were place and water boiling and environment  temperature water. The experiment was established  in a completely randomized design, the plants  were obtained from seeds, sown in recipients of 25  ml of capacity, with sandy soil frank texture and  applications every other day with aqueous extracts  to the concentrations of 5, 10, 20, 30 and 40% m/v,  compared with a treatment with distilled water (0%).  Were harvested at the 26 days after of sowing, three  plants of each treatment were used for determinations  of dry matter and radical morphology. The results  indicate that the accumulation of dry matter in leaf  and roots in plants of S. lycopersicum L., decreased,  with respect to treatment with destiled water, with  increased the concentration of aqueous extracts.  The most phytotoxic extracts were the obtained to  temperature environment (26 °C), the concentrations  of 20, 30 and 40% m/v totally inhibited the growth of  the plants after 26 days of seeded. The root length  was strongly affected.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Key words:</b> bracken fern, tomatoes, phytotoxic, dry  matter, root length.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">Recibido:</font></b><font size="2">  18/04/2012 <b>Aprobado:</b> 12/04/2013</font></font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  En el estado Táchira la alta incidencia de la  maleza helecho macho, Pteridium aquilinum L.  Kuhn var caudatum, ha generado problemas  para la producción de los cultivos comerciales  y pasturas dedicadas a la alimentación animal,  tanto en aprovechamiento de suelos, como en  el manejo agronómico aplicado a dichos rubros,  ocasionando por consiguiente problemas secundarios  como la degradación y contaminación del  ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Adicionalmente, esta especie es un factor de  riesgo asociado a la alta incidencia de cáncer  gástrico en los estados Táchira y Mérida (Amelot  y Avendaño, 2001; Peraza et al., 2002; Peraza  et al., 2003; Peraza et al., 2006), por lo que se  hace necesario generar investigaciones que  contribuyan a conocer y efecto de extractos  acuosos de esta maleza sobre el aceleramiento  y desarrollo de los cultivos, que permita diseñar  estrategias en su control y poder brindar  una solución al problema socio-económico,  ecológico, cultural y científico que genera a toda  la sociedad.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Muchas especies de malezas anuales y perennes  con potencial alelopático afectan severamente  la sucesión de comunidades de plantas, así  como el crecimiento y productividad de los cultivos  (Duke, 1978; Rice, 1979; Putman y Brown, 1986;  Qasem, 1994; Torres et al., 2003; Blanco, 2006;  Kayode y Ayeni. 2009; Pisula y Meiners, 2010a;  Pisula y Meiners, 2010b; Parvin et al., 2011;  Bauer et al., 2012; Chen y Wang, 2012; Zhang  y Fu, 2012).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El helecho macho se describe como la planta  invasora más exitosa del mundo, la cual imposibilita  labores agrícolas (Ortega, 1990; Pérez y  Pacheco, 1994; Taylor y Thomson, 1998; Amelot,  1999) e incrementa los costos de producción por  la fuerte inversión inicial que amerita mano de  obra para su control y efectos residuales de esta  maleza (Trejo et at., 2007).  En este sentido, se han desarrollado diferentes  estudios indicando que algunos aleloquímicos  solubles en agua provenientes de lavados  foliares por lluvia o rocío de P. aquilinum L. Kuhn  afectan el crecimiento y desarrollo de cultivos,  además originan la formación de un ecosistema  característico.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  En base a ello, Gliessman y Muller (1972);  Dolling et al. (1994); Arnaude y Bracho (2001);  Morales y Arnaude (2005); Loresco (2006);  Matos y Belinato (2010); Wang et al. (2011),  reportan en sus investigaciones como los  extractos provenientes de frondas jóvenes de la  maleza causan un efecto inhibitorio sobre las  características morfofisiológicas de las plantas  de diversas especies cultivables.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  De allí la importancia de conocer realmente la  capacidad inhibitoria de la maleza, evaluando su  efecto sobre plántulas de tomate como cultivo  primordial en la región y rubro establecido en  la zona, el cual según los productores presenta  problemas de producción donde crece el helecho  (P. aquilinum L. Kuhn), adicionalmente, es muy  sensible fisiológicamente a estrés hídrico,  nutricionale, entre otros (García y Ascencio,  1992 y Arnaude y Ascencio, 1996).  El objetivo del presente trabajo fue evaluar el  efecto de extractos acuosos de helecho macho  (P. aquilinum L. Kuhn var caudatum) sobre el  crecimiento de plantas de tomate (Solanum  lycopersicum L.).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  Localización del experimento</font></b></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La investigación se realizó en el Laboratorio de  Fisiología Vegetal de la Universidad Nacional  Experimental del Táchira (UNET) en condiciones  de laboratorio, con una temperatura promedio  de 26 °C y 75% de humedad relativa.  Material vegetal utilizado para las extracciones  Plantas de P. aquilinum L. Kuhn var caudatum  con ausencia de esporas que se encontraban en  proceso normal de crecimiento y desarrollo.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  Preparación de extractos acuosos</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para la elaboración de cada uno de los extractos  se utilizó la parte área de la planta (frondas), que  luego de un proceso de limpieza y selección se  empleó para la preparación de los extractos;  cumpliendo la metodología de Lazo y Montoya  (1994) demostrado en la <a href="#f1">Figura 1</a>.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Se obtuvieron dos extractos acuosos de P. aquilinum  L. Kuhn var caudatum:</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  1. Extracto obtenido por homogenización utilizando  agua destilada a temperatura ambiente  (26 °C), en este extracto los compuestos no  se afectarían por la temperatura.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  2. Extracto obtenido por ebullición durante 10 min  utilizando agua destilada con la finalidad de  extraer compuestos.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Se realizaron ensayos preliminares utilizando  las dosis de 5,0%, 10,0%, 20,0%, 30,0%,  40,0%, 50,0%, 60,0%; 70,0%, 80,0%, 90,0%,  observándose que las dosis mayores a 50,0%  m/v causaban la muerte de las plantas.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  En el ensayo definitivo se evaluaron seis tratamientos  por extracto (<a href="#c1">Cuadro 1</a>), se tomaron tres  repeticiones por tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Es importante mencionar que el tratamiento  (D0) corresponde al testigo, regado con agua  destilada, los tratamientos se aplicaron cada 2 d  luego de la germinación con un volumen de 10 ml  por tratamiento.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.11.jpg" width="487" height="526"></font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">Siembra</font></b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para la siembra de S. lycopersicum L., se empleó  semilla certificada variedad Río Grande en  vasos plásticos de 6 cm de altura y 5 cm de  diámetro, con suelo de textura franca, con un  pH = 5,47 y 3,12% de materia orgánica. La siembra  se realizó de forma manual.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  Diseño experimental</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  El ensayo se estableció en un diseño completamente  al azar con seis niveles y tres repeticiones  por tratamiento, a los datos obtenidos se les  exploraron la homogeneidad y normalidad para  ser analizados mediante ANAVAR. Para las  pruebas de significancia de medias se utilizó  el método de DUNCAN entre los diferentes  tratamientos, mediante la ayuda de programas  estadísticos computarizados.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  Acumulación de biomasa seca</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Las muestras destinadas a la determinación de  biomasa seca (g) se lavaron cuidadosamente y  se dividieron en partes aéreas y raíces, colocadas  en bolsas de papel y secadas a 60 °C durante 72 h  (García y Ascencio, 1992; Arnaude y Ascencio,  1996), para luego conocer su biomasa seca  empleando la balanza analítica.</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  Longitud de las raíces</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Una vez cosechadas las tres plantas por cada  tratamiento se separó la raíz de la parte aérea  y cada sistema radical fue preservado en alcohol  60%, antes de comenzar las mediciones, las raíces  de cada muestra fueron rehidratadas utilizando  una serie decrecientes de alcoholes desde 50%  hasta 10% en cada una de estas soluciones.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="c1"></a></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><font size="2" face="Verdana"> <img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.12.jpg" width="577" height="195"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Las muestras permanecieron alrededor de 10 min  en alcohol, por último, fueron colocadas en una  solución de safranina al 5% para de esa manera  teñirlas y facilitar la visibilidad de las muestras,  el cálculo de la longitud de las raíces se realizó  siguiendo el método de Tennant (1975).</font></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><b><font size="2" face="Verdana">  Características generales del crecimiento</font></b></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  En el <a href="#c2">Cuadro 2</a> se muestra la producción de  materia seca (MS) y aéreas, raíces y longitud de  raíces para los diferentes tratamientos:</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Biomasa seca de la parte aérea: la <a href="#f2">Figura 2</a>  presenta la acumulación de biomasa seca en  plantas de S. lycopersicum L., a los 26 días  después de la siembra (DDS) y sometidas a  diferentes concentraciones de extracto acuoso  de P. aquilinum L. Kuhn var. caudatum obtenido  por ebullición. Al comparar todos los tratamientos  se pueden observar diferencias altamente signifi-  cativas en D1, D2, D3, D4, y D5, con respecto al  testigo (D0); este disminuyó en la medida que la  concentración era mayor.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="c2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.13.jpg" width="580" height="234"></font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f2"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.14.jpg" width="435" height="329"></font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Para los tratamientos 5, 10 y 20% m/v (D1, D2  y D3) se observó una disminución con respecto  al testigo (D0) de la biomasa seca de la parte  aérea en 40,6, 42,41 y 46,6%, y este efecto  inhibitorio se incrementó un 54,54 y 59,4% para  las concentraciones de 30 y 40% m/v (D4 y D5).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La <a href="#f3">Figura 3</a> muestra el efecto producido por el  extracto acuoso obtenido a temperatura ambiente  sobre la acumulación de biomasa seca de la  parte aérea de plántulas de S. lycopersicum L.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  En el <a href="#c3">Cuadro 3</a> se muestra la producción de  MS aérea y raíces, longitud de raíces para los  diferentes tratamientos con extracto obtenido  con agua a temperatura ambiente. Se detectaron  diferencias significativas entre la biomasa seca  obtenida de las plantas testigos y las tratadas, los  resultados indican que en la medida en que se  incrementó la concentración del extracto, disminuyó  la biomasa seca de la variable analizada en  un 41,81 y 47,27% para las concentraciones de  5 y 10% m/v (D1 y D2) y las concentraciones de  20, 30 y 40% m/v (D3, D4 y D5, respectivamente)  redujeron el crecimiento en un 100%, respecto al  testigo (D0).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  <b>Biomasa seca de las raíces: </b>el extracto acuoso  de P. aquilinum L. Kuhn var. caudatum obtenido por  ebullición a las concentraciones de 5, 10 y 20% m/v  redujeron con respecto al testigo (D0) la biomasa  seca de las raíces en plántulas de S. lycopersicum  L. (<a href="#f4">Figura 4</a>) hasta un 38,13; 44,06 y 49,99%,  respectivamente, y las concentraciones de 30 y  40% m/v inhibieron el crecimiento de plántulas de  tomate y disminuyó la MS de las raíces en un 56 a  59,32%, comparados con el testigo (D0).</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La <a href="#f5">Figura 5</a> muestra el efecto del extracto acuoso  obtenido a temperatura ambiente sobre la  acumulación de biomasa seca en raíces de plantas  de S. lycopersicum L., lo que permite detectar diferencias  significativas entre las plantas testigos y  las tratadas en la medida que se incrementó la  concentración del extracto, siendo notorio para  las concentraciones de 30 y 40% m/v, las cuales  indicaron una alta inhibición de la biomasa seca  de las raíces, logrando alcanzar una disminución  de hasta 100% a los 26 DDS.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Asimismo, las concentraciones de 5, 10 y 20%  m/v (D1, D2 y D3) redujeron un 63,56, 68,48 y  100% la acumulación de biomasa de las raíces.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.15.jpg" width="413" height="294"></font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="c3"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.16.jpg" width="588" height="234"></font></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  De acuerdo a los resultados obtenidos, la  acumulación de biomasa seca en plantas de  S. lycopersicum L., disminuyó con respecto al  testigo (D0) en la medida que se incrementó  la concentración de cada uno de los extractos  obtenidos de frondas de P. aquilinum L. Kuhn  var. caudatum, lo cual confirma lo señalado  por Morales y Arnaude (2005); Loresco (2006);  Matos y Belinato (2010); Wang et al. (2011),  quienes plantean que las sustancias aleloquímicas  contenidas en frondas de plantas de P. aquilinun  actúan sobre procesos fisiológicos, afectando el  crecimiento de las especies receptoras.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Al comparar en conjunto todos los tratamientos,  el efecto inhibitorio varió respecto al testigo  dependiendo del tipo de extracto. El extracto  acuoso obtenido a temperatura ambiente fue más fitotóxico para las  concentraciones de 20,  30 y 40% m/v, ya que a los 26 DDS causaron  una inhibición del 100% en el crecimiento de  plantas de tomate.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f4"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"> <img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.17.jpg" width="404" height="288"></font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f5"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.18.jpg" width="397" height="295"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  &nbsp;</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  A diferencia del obtenido a ebullición, las  concentraciones de 20, 30 y 40% m/v redujeron  la MS de la parte aérea en un 46, 54 y 60% en  comparación con el testigo, esto se debe a que  durante el proceso de ebullición posiblemente  ocurrió una pérdida por volatilización de algunos  compuestos tóxicos presentes en frondas del  helecho macho (P. aquilinum L. Khun var caudatum);  el resultado concuerda con Putman y Duke (1978)  señalando que las plantas son capaces de producir  aleloquímicos solubles en agua.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Por otro lado, Dolling (1994) se refiere a la  inhibición sobre el crecimiento de plantas Populus  tremula L. (álamo) y Pinus silvestris L. al utilizar  extractos de frondas de P. aquilinum L. Kuhn  var caudatum, estos resultados concuerdan con  Dolling (1996) al indicar que los extractos acuosos  provenientes de frondas (P. aquilinum L. Kuhn)  causan un efecto inhibitorio sobre el crecimiento  de pino silvestre (P. sylvestris L) y abeto rojo u  árbol de navidad (Picea abies L.), que coinciden  con lo publicado por Dolling (1994) y Wang et al.  (2011) quienes señalan que en bioensayos  realizados con extractos acuosos de frondas de  Pteridium sobre diversas especies, entre ellas  el rábano (Raphanus sativus L.), mostró efecto  alelopático persistente sobre la germinación  de la semilla, la elongación del hipocótilo y  elongación radicular, corroborado por Morales  y Arnaude (2005); Loresco (2006); Matos y  Belinato (2010), reportaron el efecto inhibitorio de  extractos acuosos de Pteridium sobre diversas  especies, tales como: Guazuma ulmifolia Lam  (guácimo), Trifolium repens L. (trébol blanco) y  Brachiaria decumbens Stapf, respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Longitud de las raíces: en cuanto al efecto de los  extractos acuosos y orgánico de P. aquilinum  L. Kuhn var. caudatum sobre la longitud de  las raíces en plántulas de S. lycopersicum L.  se observó diferencias altamente significativas  respecto al testigo (D0), el extracto acuoso  obtenido a ebullición en sus concentraciones de  5, 10 y 20% m/v (<a href="#f6">Figura 6</a>), disminuyó la longitud  de las raíces en plantas de tomate en un 41,3,  60,65 y 72,92% respecto al testigo, y en un  89,70 y 93.34% para las concentraciones de 30  y 40%, respectivamente.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La <a href="#f7">Figura 7</a> muestra el efecto del extracto acuoso  obtenido a temperatura ambiente sobre la longitud  de las raíces de plantas de S. lycopersicum L. que  permitió detectar diferencias significativas entre  las plantas testigos y las tratadas en la medida  que se incrementó la concentración del extracto,  siendo notorio para las concentraciones de 30 y  40% m/v, logrando alcanzar una disminución de  hasta 100% a los 26 DDS.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f6"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.19.jpg" width="403" height="263"></font></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><a name="f7"></a></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2"><img border="0" src="/img/fbpe/at/v62n1-4/art04.20.jpg" width="414" height="275"></font></p>     
<p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Las concentraciones de 5, 10 y 20% m/v (D1,  D2 y D3) redujeron un 38,10; 82,22 y 100% la  longitud de las raíces respecto al testigo.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  De acuerdo a los resultados obtenidos, la longitud  de las raíces en plantas de S. lycopersicum L.  disminuyó con respecto al testigo (D0), señalado  por Arnaude y Bracho (2001); Morales y Arnaude  (2005); Loresco (2006); Matos y Belinato  (2010), quienes señalan que las sustancias  aleloquímicas contenidas en extractos foliares  de plantas de Pteridium actúan sobre procesos  fisiológicos, afectando el crecimiento de las  especies receptoras.</font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  Al respecto, Wang et at. (2011) publican que el  mecanismo de acción de extractos acuosos de  helecho macho ocasiona interrupción en el ciclo  celular de plantas, afectan significativamente la  mitosis en las células del ápice de la radícula. A  bajas dosis (6% m/v) se observa alta proporción  de células en división en profase y a dosis de 25%  m/v la división celular se mantuvo totalmente en  profase.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">CONCLUSIONES</font></b></font></p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La acumulación de biomasa foliar y de raíces  (g) disminuye significativamente en las plántulas  de S. lycopersicum L., que fueron tratadas  con extractos acuosos de P. aquilinum L.  var caudatum. Esta respuesta fue variable  para cada uno de los extractos evaluados,  así como también para cada una de las dosis  evaluadas, en la medida que se incrementó  la concentración del extracto acuoso obtenido a  ebullición y a temperatura ambiente, se logró  una diferencia altamente significativa respecto  al testigo a los 26 DDS.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify">&nbsp;</p>     <p align="justify"><font size="2" face="Verdana">  La variable de plantas de S. lycopersicum L.  más afectada por aplicación de los extractos  acuosos de P. aquilinum L. var caudatum, fue  la longitud de raíces. El extracto acuoso obtenido  a ebullición en sus concentraciones de 5,  10 y 20% m/v disminuyó la longitud radical en  plántulas de tomate en un 41,3, 60,65 y 72,92%  respecto al testigo, y en un 89,70 y 93,34% para  las concentraciones de 30 y 40%, y las tratadas  con extracto acuoso obtenido a temperatura  ambiente a las concentraciones de 5, 10 y 20%  m/v, redujeron en un 38,10; 82,22 y 100% la  longitud de raíces respecto al testigo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana"><b><font size="2">LITERATURA CITADA</font></b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Amelot, A. 1999. Helecho  Macho, salud animal y salud humana. Revista de la Facultad de Agronomía (LUZ).  16:528-541.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284123&pid=S0002-192X201200010000400001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Amelot, A. and M. Avendaño.  2001. Possible association between gastric cancer and bracken fern in Venezuela:  an epidemologica study. Int. I. Cancer. 91:252-259.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Arnaude, O., B. Bracho y S.  Peraza. 2001. Potencial Alelopático de extractos acuosos y orgánicos de  Pteridium aquilinum L. Kuhn sobre semillas de Lactuca sativa L. XV Congreso de  la Asociación Latinoamericana de Malezas y X Jornadas Venezolanas Científico-  Técnicas en Biología y Combate de Malezas. (Resumen). Maracaibo. Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Arnaude, O. y J. Ascencio.  1996. Comparación de crecimiento entre tres especies cultivadas –Phaseolus  vulgaris L. var. Manaure, Vigna unguiculata (L) Walp var. Tuy y Lycopersicum  esculentum L. Mill var caribe y dos especies silvestres Euphorbia heterophylla  L. y Amaranthus dudius Mart, bajo condiciones de deficiencia de fósforo. Anales  de Botánica Agrícola. 3:50-60.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Bauer, J., S. Shannon, R.  Sloops and H. Reynolds. 2012. Context dependency of the allelopathic effects of  Lonicera maachii L. on seed germination. Plant Ecology. 213(12):1.907-1.916.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Blanco, Y. 2006. La  utilización de la alelopatía y sus efectos en diferentes cultivos agrícolas.  Cultivos tropicales. 27(3):5-16.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284129&pid=S0002-192X201200010000400006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Bracho, B. y O. Arnaude.  2001. Efecto de extractos acuosos de Pteridium aquilinum L Kuhn sobre el  crecimiento de plántulas de Lycopersicum esculentum Mill, XV Congreso de la  Asociación Latinoamericana de Malezas y X Jornadas Venezolanas  Científico-Técnicas en Biología y Combate de Malezas. (Resumen). Maracaibo.  Venezuela.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Brown, R. 1986. Bracken in  the North York Moors: It’s ecological and amenity implications in national parks.  In: Ecology, land use control Technology. Ed. By R.T. Smith, J.A Taylor. Car  forth, Parthenon. pp. 77-86.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284132&pid=S0002-192X201200010000400008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Chen, L. and L. Wang. 2012.  Allelopathic behaviour of Chinese fir from plantations of different ages.  Forestry. Journal of forest Research. 86(2):225-230.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Dolling, A. 1996.  Interference of bracken (Pteridium aquilinum L Kuhn) with Scots Pine (Pinus  silvestris L.) and Norway spruce (Picea abies L Kerst) seedling establishment.  Forest ecology and management. 88:227-235.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284135&pid=S0002-192X201200010000400010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Dolling, A., O. Zackrisson  and M. Charlotte. 1994. Seasonal variation in phytotoxicity of bracken (Pteridium  aquilinum L. Kuhn). Journal of chemical ecology. 20:3.163-3.172.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. García, M. and J. Ascencio.  1992. Root morphology and acid phosphatase activity in tomato plants during  development of and recovery from phosphorus stress. J. Plant Nutr.  15(11):2.491-2.503.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. González, A. y O. Arnaude.  2004. Efecto de residuos de Pteridium aquilinum L. Kuhn. incorporados al suelo  sobre la acumulación de materia seca de Lactuca sativa L. In: V Seminario  Científico Internacional de Sanidad Vegetal. (Resumen). La Habana. Cuba.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Gliessman, S. and C. Muller.  1972. The phytotoxicity potential of bracken Pteridium aquilinum L. Kuhn.  Madromo. 21:229-304.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Kayode, J. and J. Ayeni.  2009. Allelopathic effects of some crop residues on the germination and growth  of cowpea (Vigna unguiculata L. Walp.). Ethnoleafl ests Leafl ests. 13:343-350.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Lazo, J. y C. Montoya.  1994. Evaluación de la capacidad alelopática de las malezas Euphorbia  heterophylla L. y Rottboellia exaltata L. 1:1-13</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Loresco, M. 2006.  Allelopathic effects of herbicidetreated bracken (Pteridium esculentum Forst. f.  Cockayne) fronds on white clover and perennial rye grass. Philippine  Agricultural Scientist. 89(1):91-96</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284143&pid=S0002-192X201200010000400017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Morales, W. y O. Arnaude.  2005. Potencial alelopático de extractos acuosos de Pteridium aquilinum L. Kuhn  sobre el crecimiento de Brachiaria decumbens Stapf. XVII Congreso de la  Asociación Latinoamericana de Malezas (ALAM) I Congreso Iberoamericano de  Ciencia de las Malezas. IV Congreso Nacional de Ciencia de Malezas. (Resumen).  Maracaibo. Venezuela.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Ortega, J. 1990. El género  Pteridium en Venezuela: Taxonomía y distribución geográfica. Brollania 7:45-54.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284145&pid=S0002-192X201200010000400019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. Parvin, R., T. Shapla and  M. Amin. 2011. Allelopathic effects of Albizzia lebbeck Durazz. on agricultural  crops. Int. J. Sustain. Crop Prod. 6(1):50-57.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Peraza, S., O. Aarnaude, R.  Márquez, M. Santos, D. Cardozo, C. Morreno, D. Barroeta and A. Ocariz. 2003.  Enzooctic Bovine Hematuria, Bracken Fern (Pteridium aquilinum L. Kuhn) and human  gastric cancer in a high incidence area of human gastric cancer in Venezuela. V  Congreso Mundial de Cáncer Gástrico. (Resumen). Roma. Italia.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. Peraza, S., O. Arnaude, R.  Márquez, J. Becker, J. Vivas, D. Castro y M. Santos. 2002. Enfoque integral  sobre la carcinogénesis gástrica y el Pteridium aquilinum L. Kuhn (helecho  macho). GEN. 56(3):50-60.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284149&pid=S0002-192X201200010000400022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Peraza, S., O. Arnaude, M.  Santos, M. Márquez y D. Cardozo. 2006. Estudio anatomopatológico, epidemiológico  y agronómico sobre la hematuria enzoótica del bovino, el Pteridium aquilinum L.  Kuhn (helecho macho) y su asociación con cáncer gástrico en humanos. Revista de  la universidad de Pamplona. 4(1):1-92.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Pérez, L. y J. Pacheco.  1994. Comportamiento agroecológico de Pteridium aquilinum L. Kuhn en el estado  Táchira- Venezuela. Revista Científica UNET (Táchira-Ven.). 8(1):5-18.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Pisula, N. and S. Meiners.  2010a. Allelopathic effects of goldenrod species on turnover in successional  communities. Am. Midl. Nat. 163(1):161-172.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">26. Pisula, N. and S. Meiners.  2010b. Relative allelopathic potential of invasive plant species in a Young  disturbed Woodland. The Journal of the Torrey Botanical Society. 137(1):81-87.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">27. Qasem, J. 1994. Allelopathy  effect of white top (Lapidium draba L.) on wheat and barley. Allelopathy Journal.  27(1):29-40.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284155&pid=S0002-192X201200010000400027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">28. Ramírez-Trejo, M., B.  Pérez-García y A. Orozco- Segovia. 2007. Helechos invasores y sucesión  secundaria post fuego. Ciencias. 85:18-25. Rice, E. 1979. Allelopathy: An update.  Bot. Rev. 45:17-109.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">29. Silva, M. and T. Belinato.  2010. Interference of Pteridium arachnoideum (Kaulf.) Maxon. (Dennstaedtiaceae)  on the establishment of rainforest trees Braz. J. Biol. 70(2):311-316.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">30. Taylor, J. E. and J. A.  Thomson. 1998. Bracken litter as mulch: glasshouse evaluation of phytotoxicity.  Australian Journal of Experimental Agriculture. 38(2):161-169.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">31. Tennant, D. 1975. A test of  a modified line intersect method of estimating root length. Journal of Ecology.  63(3):995-1.001.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=284160&pid=S0002-192X201200010000400031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">32. Torres, S., M. Puente, F.  de Cupere, M. Puerto y M. Rodríguez. 2003. Efecto alelopático del Boniato (Ipomea  batata L. (Lam), sobre la germinación y crecimiento de cultivos y malezas.  Centro Agrícola. 30(1):59-63.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">33. Wang, H., B. Chen, L. Hsu,  Y. Cheng, Y. Liou and C. Wang. 2011. Allelopathic effects of bracken fern (Pteridium  aquilinum L. Kuhn) in Taiwan. Allelopathy Journal. 27(1):97-110.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">34. Zhang, C. and S. Fu. 2010.  Allelopathic effects of leaf litter and live roots exudates of Eucalyptus  species on crops. Allelopathy Journal. 26:91-100.</font></p>       ]]></body>
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