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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Natural sources of phytosterols and production factors that modify them. Currently phytosterols are added to processed foods, which increase their cost and therefore limits its use. This manuscript aims to identify foods that are a natural source of phytosterols, as well as analyze how the environment and production management modify its content, linking these aspects with health. Phytosterols are compounds found in plants with hypocholesterolemic properties, which may help prevent cardiovascular diseases. The estimated daily intake of phytosterols varies between 160 and 500 mg/day, but its beneficial effect is achieved with 1,500 to 2,400 mg daily consumption. Oil and cereal seeds are the largest natural sources of phytosterols. Amaranth is considered a pseudocereal and among the cereals has the highest concentration of phytosterols with 178 mg/100 g, value 5 times higher than wheat flour. Environment modifies phytosterol content in food, drought and high temperatures can double their content in seeds; nitrogen fertilization and planting date can cause changes, but more studies are needed. The selection of genotypes with higher phytosterol content and studying the genotype x environment interaction, allow the identification of those genotypes with local adaptation for this character. The production management will increase the supply of natural foods rich in phytosterols, contributing to a greater supply of health protective foods.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Fuentes naturales de fitoesteroles y  factores de producción que lo modifican</b></font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Paola Silva, Ana C. Pinheiro, Lorena Rodríguez, Victoria Figueroa, Cecilia  Baginsky.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  Departamento de Producción Agrícola, Facultad de Ciencias Agronómicas,  Universidad de Chile, Santiago,  Chile. Departamento de Nutrición, Facultad de Medicina, Universidad de Chile,  Santiago, Chile. Departamento  de Nutrición y Alimentos, División de Políticas y Saludables, Ministerio de  Salud.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESUMEN: </b>Actualmente los fitoesteroles son adicionados  a los alimentos industrializados, lo que aumenta su costo y  por lo tanto limita su consumo. Este manuscrito tiene como  objetivo identificar alimentos que son una fuente natural de  fitoesteroles, así como también analizar cómo el ambiente y  el manejo productivo modifican su contenido, relacionando  estos aspectos con la salud. Los fitoesteroles son compuestos  presentes en las plantas con propiedades hipocolesterolémicas,  que pueden contribuir a prevenir las enfermedades  cardiovasculares. La ingesta diaria estimada de fitoesteroles  varía entre 160 y 500 mg/día, sin embargo su acción beneficiosa  se logra con consumos de 1500 mg a 2400 mg  diarios. Las semillas de oleaginosas y de cereales son las  mayores fuentes naturales de fitoesteroles. El amaranto es  considerado un pseudocereal y entre los cereales tiene la  mayor concentración de fitoesteroles con 178 mg/100 g,  valor 5 veces superior al de la harina de trigo. El ambiente  modifica el contenido de fitoesteroles de los alimentos,  la sequía y temperaturas altas duplican su contenido en las  semillas; la fertilización nitrogenada y la fecha de siembra  pueden provocar cambios, pero se requieren más estudios  al respecto. La selección de genotipos con mayor contenido  de fitoesteroles y el estudio de la interacción genotipo ambiente,  permitirá la identificación de aquellos genotipos con  adaptación local para este carácter. El manejo productivo  podrá aumentar la oferta de alimentos naturales ricos en fitoesteroles,  contribuyendo a una mayor oferta de alimentos  protectores de la salud.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave: </b>Fitoesteroles, salud, amaranto, interacción  GxA, ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>SUMMARY. </b>Natural sources of phytosterols and  production factors that modify them. Currently  phytosterols are added to processed foods, which increase  their cost and therefore limits its use. This manuscript aims  to identify foods that are a natural source of phytosterols,  as well as analyze how the environment and production  management modify its content, linking these aspects with  health. Phytosterols are compounds found in plants with  hypocholesterolemic properties, which may help prevent  cardiovascular diseases. The estimated daily intake of  phytosterols varies between 160 and 500 mg/day, but  its beneficial effect is achieved with 1,500 to 2,400 mg  daily consumption. Oil and cereal seeds are the largest  natural sources of phytosterols. Amaranth is considered  a pseudocereal and among the cereals has the highest  concentration of phytosterols with 178 mg/100 g, value  5 times higher than wheat flour. Environment modifies  phytosterol content in food, drought and high temperatures  can double their content in seeds; nitrogen fertilization  and planting date can cause changes, but more studies are  needed. The selection of genotypes with higher phytosterol  content and studying the genotype x environment  interaction, allow the identification of those genotypes  with local adaptation for this character. The production  management will increase the supply of natural foods rich  in phytosterols, contributing to a greater supply of health  protective foods.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Key words: </b>Phytosterols, health, amaranth, interaction  GxE, environmental.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>INTRODUCCION</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El problema de salud pública más importante  actualmente en el mundo y en América Latina,  incluyendo Chile, son las enfermedades no  transmisibles vinculadas a la dieta, como las  cardiovasculares. Enfrentar este problema requiere  un cambio en los entornos alimentarios de tal modo  que se aumente la oferta de alimentos saludables y se  promueva su consumo. Existen compuestos bioactivos  de reconocido valor nutricional y preventivo como  los fitoesteroles, que pueden contribuir a reducir la  absorción de colesterol y por lo tanto disminuyen  un importante factor de riesgo cardiovascular.  Actualmente, la tendencia ha sido aislar estos  compuestos bioactivos y adicionarlos a los alimentos  industrializados, lo que aumenta su costo y por lo  tanto limita su consumo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Una de las estrategias para impulsar el mayor  consumo de compuestos bioactivos protectores de  la salud como es el caso de los fitoesteroles podría  ser a través del aumento de sus concentraciones en  alimentos que naturalmente los contienen utilizando  para tal el manejo agronómico. Para ello se debe  conocer las especies de mayor aporte, como también  identificar los factores de producción que lo potencian  como el ambiente y el manejo productivo.  Este manuscrito tiene como objetivo identificar  alimentos que son fuente natural de fitoesteroles,  analizar cómo el ambiente y el manejo productivo  modifican su contenido, relacionando estos aspectos  con la salud.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Función y estructura de los fitoesteroles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los fitoesteroles y sus productos de reducción  química los fitoestanoles, son esteroles de origen  vegetal que tienen amplia distribución en la naturaleza.  Corresponden a metabolitos secundarios de las plantas,  que son sintetizados y utilizados por las células, y  aunque no son esenciales tienen un papel fundamental  en la sobrevivencia de las plantas. Son compuestos  claves en la formación de microdominios (agregados  de lípidos que compartimentan procesos celulares) en  la membrana plasmática (1). Además, desempeñan  un papel esencial en la regulación de la fluidez y  una cadena carbonada con 9 a 10 carbonos (8). Su  estructura química es parecida a la del colesterol;  sin embargo, difieren estructuralmente. El colesterol  posee 27 átomos de carbono (C27) y los fitoesteroles  28 o 29, debido a la presencia de sustituyentes de  tipo metilo (C1) o etilo (C2) en la cadena lateral de la  molécula (Figura 1).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Según Brufau et al, 2008 (2), se han identificado  250 estructuras diferentes de fitoesteroles, siendo los  más comunes el &#946;-sitoesterol, el campesterol y el  stigmasterol (9,10) (Figura 1).  Los fitoesteroles se producen a través de la  biosíntesis de los isopropenoides, que ocurre  exclusivamente en el citoplasma y que consta de más  de 25 reacciones catalizadas por diferentes enzimas  (11). Se generan a partir de moléculas de acetil-CoA  y por la actividad enzimática de la enzima acetil-  CoAcarboxilasa (ACC), convirtiendo la Acetil-CoA  en 3-hidroxi-3-metilglutaril CoA, el cual a su vez se  reduce a melovato. El melovato mediante procesos  sucesivos de fosforilaciones y una descarboxilación  es transformado en isoprenoide, el que finalmente da  origen a los fitoesteroles (12).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Alimentación y salud: fitoesteroles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Actualmente hay una gran preocupación por  las enfermedades crónicas no transmisibles como  permeabilidad de la membrana  (2). Son precursores hormonales,  involucrados en el proceso de  embriogénesis de la planta, tienen un  papel fundamental en el crecimiento  y en los procesos de desarrollo a  través de la división celular, como  también en la morfogénesis (3).  Participan en la defensa de la planta  frente a diferentes estreses bióticos  (4-5) o abióticos (6), actuando como  señales moleculares dentro de la  planta o entre la planta y su entorno  (condiciones ambientales o presencia  de microorganismos).</font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art02.9.jpg" width="502" height="422"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los fitoesteroles pertenecen al  grupo de los compuestos isoprenoides  (7), tienen un núcleo de 17 carbonos  dispuestos en 4 anillos con un grupo  3-&#946; hidroxilo, a menudo con un  doble enlace en la posición 5,6 y </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">las cardiovasculares, las  dislipidemias, la diabetes,  la hipertensión y el cáncer. Ello debido a su alta  prevalencia, constituyéndose en la principal causa  de mortalidad, morbilidad y discapacidad precoz en  muchos países miembros de la Organización para la  Cooperación y el Desarrollo Económico (OCDE) (13).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las enfermedades crónicas no transmisibles están  asociadas a entornos y estilos de vida poco saludables,  mala alimentación, sedentarismo y tabaquismo,  entre otros. La Encuesta Nacional de Salud (ENS  2009-2010) muestra que en Chile más del 60% de la  población sufre mal nutrición por exceso (sobrepeso  u obesidad), más de un 30% padece hipertensión  arterial, casi un 40% dislipidemias y cerca de un 10%  tiene diabetes (14). Además, la misma encuesta indica  que el 89% de la población es sedentaria, el consumo  de sal (9,8 g/día) duplica las recomendaciones  (5,0 g/día) y solamente el 15% consume las 5  porciones diarias de frutas y verduras recomendadas  por el Ministerio de Salud (15).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En las últimas décadas se ha dado un creciente  cambio en la oferta y la demanda de alimentos y  en los patrones de alimentación. Ha aumentado el  consumo de alimentos ultraprocesados (16,17) que  se relacionan a una mayor carga de enfermedades  crónicas no transmisibles, y ha disminuido el consumo  de preparaciones culinarias tradicionales (18). En  Chile, las Guías Alimentarias para la Población  (19) recogen gran parte de las recomendaciones  internacionales respecto del consumo de alimentos  saludables. Sin embargo, tanto en la población como  en la industria chilena crece también el interés por  alimentos más saludables, en especial aquellos que  contienen nutrientes bioactivos que puedan contribuir  a prevenir enfermedades cardiovasculares y cánceres  (20), tales como ácidos grasos poliinsaturados omega  3, fibra y fitoesteroles.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los fitoesteroles no son sintetizadas por los seres  humanos, se absorben mal y se excretan más rápido  desde el hígado que el colesterol, lo que explica su  bajo contenido en el tejido humano. Se estima que la  ingesta diaria de fitoesteroles se encuentra en un rango  entre 160 mg/día y 500 mg/día (21), lo que equivale  a menos de la mitad de las recomendaciones para  obtener efectos beneficiosos (22).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Entre los principales beneficios asociados al  consumo de fitoesteroles está la regulación que ejercen  sobre el colesterol total, a través de su solubilización  y de la competencia por espacio en las micelas (23).  Una alimentación rica en fitoesteroles puede  llegar a producir una disminución de hasta un 15%  del colesterol plasmático y de un 20% del colesterol  LDL. Para ejercer su acción los fitoesteroles deben ser  consumidos en cantidades entre 1500 mg – 2400 mg  diarios (24).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Fitoesteroles en alimentos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Estos compuestos están en forma natural en  plantas, encontrándose las mayores concentraciones  en semillas, tallos, hojas y frutos (10). A nivel  industrial los fitoesteroles han sido utilizados para  enriquecer ciertos alimentos como el pan, los cereales,  las pastas, productos lácteos (leche, yogurt), jugos de  fruta y margarinas (25). Sin embargo su producción y  consumo son muy limitados dado su alto costo.  Entre las especies vegetales existe una gran  variabilidad en el contenido de fitoesteroles (5). En  frutas y verduras su contenido es bajo, encontrándose  valores de 2 mg/100g en sandías hasta 24 mg/100g  en naranjas, mientras que en las verduras los valores  fluctúan entre 3 mg/100g en berenjenas hasta  54 mg/100g en arvejas (10).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Las semillas de oleaginosas y de cereales son las  mayores fuentes naturales de fitoesteroles. En este  sentido, semillas de oleaginosas como canola tienen  399 mg/100g (12), soya 353 mg/100g (26), girasol  225 mg/100g (27) y maní 127 mg/100g (28).  En semillas de cereales, señalan valores para  centeno, trigo, cebada y avena de 110 mg, 76 mg,  83 mg y 52 mg/100g, respectivamente (29). Otro  trabajo en centeno, cebada y maíz han demostrado  que los valores más altos se encuentran en centeno  con 76 mg/100g, y los más bajos en maíz con  44 mg/100g (Tabla 1) (30). En arroz se han encontrado  valores cercanos a 80 mg/100g (31), y en sorgo se  señalan valores de 48 mg/100g (32).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los pseudocereales son especies ricas en  carbohidratos y en la dieta de seres humanos  reemplazan a los cereales, sin embargo no pertenecen  a la familia Graminaceae (donde se encuentran los  cereales). En este grupo destacan especies como  la quinoa (Chenopodium quinoa), el amaranto  (Amaranthus spp.) y el alforfón (Fagopyrum  esculentum). En la quinoa el contenido de fitoesteroles  es de 83 mg/100g y 107 mg/100g en alforfón, valores  más altos que los encontrados en cereales (30). En el  caso de amaranto, se señalan valores de 178 mg/100g,</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  destacándose como el pseudocereal con el mayor  contenido de fitoesteroles (30) incluso superior al de  los cereales. En el caso del trigo, el mayor consumo se  hace como harina refinada, la cual corresponde sólo a  la sección del endosperma de la semilla, que contiene  36 mg de fitoesteroles/100g, valor muy inferior al  encontrado en la harina de trigo integral (Tabla 1).</font></p>     <p align="justify"><a name="t1"></a></p>     <p align="justify"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art02.10.jpg" width="670" height="280"></p>     
]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="t2"></a></p>     <p align="justify"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art02.11.jpg" width="664" height="330"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se estima que hay 61 especies de amaranto  (Amaranthus spp.) en el mundo, con una gran  diversidad genética (33). El contenido de lípidos en  la semilla de amaranto varía entre 5,7 y 10,9%, con  un promedio de 8,8%, variabilidad que también se  refleja en su contenido de fitoesteroles (34). Los  primeros estudios fueron hechos en cinco especies  de amaranto (A. tricolor, A. retroflexus, A. hybridus,  A. dubius, A. cruentus), encontrándose los valores  más altos de contenido de fitoesteroles dentro de la  especie considerada como malezas (A. tricolor) con  36 mg/100g y dentro de las especies cultivables, en  A. cruentus con 34 mg/100g (Tabla 2) (35). Estudios  recientes en semillas de A. cruentus señalan valores  de 178 mg/100g, muy superiores a lo informado  (35), atribuyendo esta gran diferencia a los distintos  métodos de extracción para su cuantificación (36).  Los principales fitoesteroles encontrados en  el aceite y semillas de amaranto son, en orden de  importancia, el &#946;-sitoesterol, el campesterol y el  stigmasterol; sus cantidades varían entre especies y  variedades (37,38), observándose que más del 50%  del total de fitoesteroles corresponde a &#946;-sitoesterol  (36, 37, 38).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El contenido de fitoesteroles tiene una gran  variabilidad genética dentro de una misma especie  (39). Este carácter tiene una alta heredabilidad  (0,84-0,91) y podría ser utilizada en programas de  fitomejoramiento (12). En semillas de oleaginosas  como el girasol (Helianthus annuus L.) se han llevado  estudios para determinar la variabilidad intraespecífica  (dentro de la especie) en su contenido de fitoesteroles,  observándose que en 464 ecotipos provenientes de  47 genotipos, el contenido fluctuó entre 143 hasta  471 mg/100g de semilla. También varió el tipo de  fitoesterol presente; así, el sitoesterol fluctuó entre  45,1 - 65,0%, el stigmasterol entre 5,2 - 14,2% y el  campesterol entre 3,8 - 16,7% del contenido total  de fitoesteroles (35). Resultados similares fueron  encontrados en 9 líneas de girasol (40), mientras que  en 27 variedades modernas de canola (Brassica napus  L.) se cuantificaron fluctuaciones entre 357 y 480  mg/100g de semilla. Se encontró también variabilidad  genética en la cantidad de sitoesterol, campesterol,  brassicasterol y avenasterol, con valores entre 180 -  246 mg/100g, 116 - 174 mg/100g, 27 - 50 mg/100g y  7 - 13 mg/100g, respectivamente (12).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Otros estudios en leguminosas proteaginosas  (especies que producen en sus semillas altos  contenidos de proteínas y grasas) como el maní, han  demostrado también la existencia de esta variabilidad;  en tres variedades comerciales de maní los valores  fluctuaron entre 117 y 138 mg/100g (28). En otra  especie proteaginosa como la soya, la evaluación de  11 líneas determinó valores que fluctuaron entre 235 y  405 mg/100g (40).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cereales como el trigo, el contenido de  fitoesteroles de 23 variedades comerciales varió entre  49 y 80 mg/100g de semillas (39). Por su parte en  siete variedades de avena, se han señalado rangos de  variación entre 37 - 46 mg/100g (41); mientras que en     seis variedades de arroz se han señalado valores entre  76 - 95 mg/100g (31).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Efecto del ambiente en el contenido de  fitoesteroles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El ambiente es capaz de provocar los mayores  cambios en el contenido de fitoesteroles (42, 43),  llegando a representar hasta el 90% de la variación  total observada para este carácter (44). Factores como  el tipo de suelo y características climáticas pueden  variar el contenido de fitoesteroles (45, 46, 47), al  igual que prácticas agronómicas, estreses abióticos y  bióticos (46, 48).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Diversos autores sugieren que los fitoesteroles  están implicados en la respuesta de las plantas a  estreses por baja y alta temperatura, sequía, alta  concentración de sal y ataques de patógenos (49).  Este hecho estaría relacionado principalmente  a su papel como precursor en la biosíntesis de  brasinoesteroides (hormonas vegetales que influyen  en diferentes procesos fisiológicos de las plantas  como la elongación, el desarrollo vascular y la  división celular) (3, 50), y su capacidad de resistir la  oxidación dentro de la membrana celular (29). En este  sentido, los estudios han indicado que los fitoesteroles  y ácidos grasos insaturados pueden estar implicados  en los mecanismos de adaptación de las plantas a  temperaturas bajas extremas entre -4,5 a -2,5 °C (31).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En estudios llevados a cabo bajo condiciones  controladas de aumento de la temperatura en un  cultivo de soya, se observó que las semillas duplicaron  la concentración de fitoesteroles a altas temperaturas  (Tabla 3), determinándose un aumento de campesterol  a expensas de estigmasterol y &#946;-sitosterol (40).  En condiciones de campo, se determinó que  el contenido de fitoesteroles en semillas de trigo  cultivado en climas más cálidos y secos, presentaron  mayor contenido de fitoesteroles en comparación de  aquellos que fueron sembrados en un clima más frío  y lluvioso (51). Una respuesta similar fue encontrada  en variedades de arroz, obteniendo los mayores  valores de fitoesteroles cuando fueron cultivadas  en una estación seca y con altas temperaturas, en  comparación a aquellos cultivados en condiciones  más frías y húmedas (52). Resultados semejantes  fueron observados en genotipos de sorgo (53) y trigo  (42). Sin embargo, otros estudios han determinado  un menor contenido de fitoesteroles en años con alta  temperatura y baja precipitación durante el llenado de  grano (31).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En términos generales existen muy pocos estudios  sobre el efecto de prácticas agronómicas como riego,  fertilización, densidad y fecha de siembra, sobre  el contenido de fitoesteroles y también de otros  nutrientes y no nutrientes. Ensayos llevados a cabo en  canola, determinaron una disminución en el contenido  de fitoesteroles en semillas cuando se aplicó nitrógeno  al cultivo, con variaciones entre 370 mg/100g, cuando  las plantas no fueron fertilizadas con nitrógeno, a  352 mg/100g con aplicaciones de 130 kg N/ha. Esto  podría deberse a que la fertilización nitrogenada  provoca un aumento en el rendimiento en semilla de  canola y en la cantidad total de aceite, sin embargo,  la concentración de aceite disminuye y por lo tanto   es esperable que la concentración de fitoesteroles por  gramo de semilla también disminuya (54).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cereales de invierno, las fechas de siembra  tardías someten el cultivo a mayores temperaturas  de crecimiento, especialmente durante el llenado de  grano, por lo que sería probable observar aumentos  del contenido de fitoesteroles con este manejo. Sin  embargo, estudios realizados en 20 genotipos de trigo,  señalan no haber encontrado una variación relevante  en el contenido de fitoesteroles en dos fechas diferentes  de siembra (con temperatura media durante el llenado  de grano de 18 y 22 °C, respectivamente) (39).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Interacción genotipo x ambiente en el contenido  de fitoesteroles</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Como se ha mencionado anteriormente, el  genotipo o variedad puede cambiar su contenido de  fitoesteroles con el ambiente. Sin embargo, también el  genotipo que tiene el mayor contenido de fitoesteroles  en un ambiente determinado puede no lograrlo en otro  ambiente y este cambio de orden de los genotipos en  los distintos ambientes se conoce como interacción  genotipo ambiente (GxA) (55).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Una evaluación del efecto del genotipo y el  ambiente sobre el contenido de fitoesteroles en cuatro  variedades de trigo candeal, cultivados en tres años  consecutivos bajo manejo tradicional y orgánico  (6 ambientes) indica que la interacción GxA fue  significativa y explicó una proporción de la variación  total similar a la del genotipo (44). De esta manera, en  una localidad con menor precipitación y día más corto,  la variedad Daepoong presentó el mayor valor con  3,2 mg/100g, mientras que en la localidad con mayor  precipitación y día más largo, esta misma variedad  fue una de las que tuvo el menor contenido con 0,2  mg/100g. Una situación similar ha sido señalada en  otras variedades de trigo (42), sorgo (53) y centeno  (31).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Dada la importancia de la interacción GxA, esta  debe ser considerada para las recomendaciones de  introducción de genotipos por zonas de cultivo. De  esta manera, se podría potenciar el contenido de  fitoesteroles, identificando genotipos con adaptación  local o estable en la producción de estos compuestos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Fitoesteroles y salud: regulación de mensajes  en los alimentos</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En Chile, la Resolución Exenta N°764/09 regula  los mensajes saludables que pueden ser asociados a  nutrientes u otros factores alimentarios presentes en  los alimentos. Esta resolución contempla un listado  de 18 declaraciones de propiedades saludables  autorizadas, las que deben cumplir con requisitos de  contenido, matriz alimentaria y marco del mensaje  autorizado (15).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Respecto de fitoesteroles, fitoestanoles y  enfermedad cardiovascular, el mensaje autorizado  en la Resolución 764 es: “Entre muchos factores que  afectan las enfermedades cardiovasculares, las dietas  que contengan ésteres de fitoesteroles y/o ésteres de  fitoestanoles y que sean bajas en grasas saturadas y  colesterol y sin ácidos grasos trans, pueden contribuir  a reducir los niveles de colesterol y el riesgo de  estas enfermedades”. Para su uso se exige que la  matriz alimentaria, objeto de la adición, sea baja  en grasa saturada (se eximen de esta condición los  aceites, aderezos de ensaladas y margarinas que sean  exclusivamente de origen vegetal), baja en colesterol y  libre de ácidos grasos trans, y si el contenido de grasa  total supera los 13 g por cada 50 g de producto deberá  decir en el panel principal “ver contenido de grasas  en la información nutricional”. Se exige además que  el alimento tenga un mínimo de 0,65 g de ésteres  de fitoesteroles y/o un mínimo de 1,7 g de ésteres  de fitoestanoles y establece una recomendación  de consumo de al menos 1,3 g/día de ésteres de  fitoesteroles y/o 3,4 g/día de ésteres de fitoestanoles.</font></p>     <p align="justify"><a name="t3"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/alan/v66n1/art02.12.jpg" width="374" height="370"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En Estados Unidos (EEUU), la Food and Drug  Administration (FDA) revisó en el año 2011 el mensaje  saludable relacionado a los fitoesteroles y su relación  con las enfermedades cardiovaculares. La propuesta  fue de una ingesta diaria de al menos 2000 mg de  fitoesteroles como parte de una dieta baja en grasas  saturadas y colesterol para la obtención de los efectos  benéficos a la salud, y estableció que los alimentos  deben contener al menos 500 mg de fitoesteroles por  porción de consumo en este país para tener el mensaje  saludable (56).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  La agencia European Food Safety Authority  (EFSA), de la Unión Europea, indica una  recomendación de ingesta de entre 1500 mg a 3000  mg diarios, la que se concentra principalmente en  productos industrializados como yogurt, margarinas  o aceites (57). En Brasil, la Agencia Nacional de  Vigilância Sanitaria (ANVISA) aprobó un mensaje  saludable para alimentos ricos en fitoesteroles en los  cuales su contenido debe ser de al menos 800 mg  por porción. El marco del mensaje indica que “los  fitoesteroles ayudan en la reducción de la absorción  del colesterol. Su consumo debe estar asociado a una  alimentación equilibrada y hábitos de vida saludables”  (58).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>CONCLUSIONES</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los fitoesteroles son factores alimentarios que  reducen la absorción de colesterol en el intestino por  competencia, ya que poseen una estructura química  similar al colesterol. Una dieta rica en fitoesteroles  puede reducir el colesterol total y el colesterol LDL  (dañino para la salud). La ingesta diaria estimada  de fitoesteroles varía entre 160 y 500 mg/día, sin  embargo su acción beneficiosa se logra con consumos  de 1500 mg a 2400 mg diarios. Esto ha implicado que  se promueva su consumo y que se regule el uso de  un mensaje saludable que comunica su presencia en  los alimentos y su efecto positivo sobre los niveles  de colesterol y como factor protector de enfermedades  cardiovasculares.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los fitoesteroles se encuentran también en forma  natural en los alimentos. Las semillas de oleaginosas  y de cereales son las mayores fuentes naturales de  fitoesteroles y estas concentraciones pueden ser  aumentadas a través del manejo agronómico. El  pseudocereal amaranto puede alcanzar 178 mg de  fitoesteroles por 100 g, valor cinco veces superior  a la harina refinada de trigo. Es muy probable que  el contenido de fitoesteroles pueda aumentarse al  sembrar los cultivos en zonas más cálidas y secas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Estrategias agronómicas como riego deficitario,  fertilización y fecha de siembra pueden afectar las  concentraciones de este bioactivo, pero se requiere  de más estudios para su correcta implementación. La  selección intraespecífica de genotipos con mayor  contenido de fitoesteroles y el estudio de la interacción  GxA, permitirá la identificación de genotipos con  adaptación local para este carácter y el manejo de  estos factores productivos podrá aumentar la oferta y  el contenido de fitoesteroles en alimentos naturales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Aplicando estas estrategias se puede mejorar la  oferta de alimentos naturales ricos en fitoesteroles  lo que puede contribuir a mejorar la dieta y a  reducir la prevalencia de las enfermedades crónicas  no transmisibles, integrando el conocimiento en  nutrición, salud, agricultura y ambiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>AGRADECIMIENTOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Este trabajo fue financiado por CORFO Innova  Línea 1. Código 2013-25477.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>REFERENCIAS</b></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  1. Roche Y, Gerbeau P, Buhot B, Thomas D, Bonneau  L, Gresti J, Mongrand S, Perrier J. Depletion of  phytosterols from the plant plasma membrane  provides evidence for disruption of lipid rafts. FASEB  J 2008, 22: 980-991.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532156&pid=S0004-0622201600010000200001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  2. Brufau G, Canela M, Rafecas, M. Phytosterols:  physiologic and metabolic aspects related to  cholesterol-lowering properties. Nutr Res 2008, 28:  217–225.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532158&pid=S0004-0622201600010000200002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  3. Schaller H. The role of sterols in plant growth and  development. Prog Lipid Res 2003, 42: 163–175.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532160&pid=S0004-0622201600010000200003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  4. Kessler A, Baldwin I. Plant responses to insect  herbivory: the emerging molecular analysis. Annu  Rev Plant Biol 2002, 53:299–328.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532162&pid=S0004-0622201600010000200004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  5. Lattanzio V, Lattanzio V, Cardinali A. Role of  phenolics in the resistance mechanisms of plants  against fungal pathogens and insects. Phytochemistry:  Advances in Research 2006, 23-67.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532164&pid=S0004-0622201600010000200005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  6. Ramakrishna A, Ravishankar G. Influence of abiotic  stress signals on secondary metabolites in plants.  Plant Signal Behav 2011, 6: 1720-1731.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532166&pid=S0004-0622201600010000200006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  7. Ramadan M. Tocol and phytosterol composition of  edible oils in the egyptian market. J Food Process Pres  2012, 36: 531-538.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532168&pid=S0004-0622201600010000200007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  8. Fernandes P, Cabral J. Phytosterols: applications and  recovery methods. Bioresource Technol 2007, 98:  2335-2350.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532170&pid=S0004-0622201600010000200008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  9. Gajewski M, Przybyl J, Kosawskaand O, Szymczak P.  Some factors influencing free sterols content in broccoli  (Brassica oleracea L. var. Botrytis ItalicalicaPlenck). J  Food Biochem 2009, 33: 881-894.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532172&pid=S0004-0622201600010000200009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  10. Han J, Yang Y, Yuang M. Contents of phytosterols in  vegetables and fruits commonly consumed in china.  Biomed Environ Sci 2008, 21: 449- 453.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532174&pid=S0004-0622201600010000200010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  11. Benveniste, P. Sterol metabolism. Meyerowitz EM,  Somerville C (eds) The Arabidopsis book. American  Society of Plant Biologists 2002; 1–31.</font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  12. Amar S, Becker H, Moellers C. Genetic variation in  phytosterol content of winter rapeseed (Brassica napus  L.) and development of NIRS calibration equations.  Plant Breed 2009, 128: 78-83.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532177&pid=S0004-0622201600010000200012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  13. OECD. Estadísticas de la OCDE sobre la salud 2014  Chile en comparación. En http://www.oecd.org/  els/health-systems/Briefing-Note-CHILE-2014-in-  Spanish.pdf [Citado el 9 de Diciembre de 2015].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  14. MINSAL. Ministerio de Salud. Encuesta Nacional de  Salud ENS 2009-2010. En http://web.minsal.cl/portal/  url/item/bcb03d7bc28b64dfe040010165012d23.pdf  [Citado el 17 de Junio de 2015].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  15. MINSAL. Ministerio de Salud. Ministerio de Salud.  Normas técnicas sobre directrices nutricionales que  indican, para la declaración propiedades saludables de  los alimentos. Resolución Exenta N° 764/09. En http://  web.minsal.cl/reglamento_san_alimentos [Citado el  17 de Junio de 2015].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  16. Crovetto M, Uauy R. Changes in processed food  expenditure in the population of Metropolitan  Santiago in the last twenty years. Rev Méd Chile  2012, 140:305-312.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  17. Crovetto M, Uauy R, Martins A, Moubarac J, Monteiro  C. Household availability of ready-to-consume food  and drink products in Chile: impact on nutritional  quality of the diet. Rev Méd Chile 2014, 142:850-858.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  18. Louzada M, Martins A, Canella D, Baraldi L, Levy R,  Claro R, Moubarac J. Cannon G, Monteiro C. Ultraprocessed  foods and the nutritional dietary profile in  Brazil. Rev Sáude Pública 2015, 49:1-11.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  19. MINSAL. Ministerio de Salud. Guías de Alimentación  Sana. En http://web.minsal.cl/alimentos_nutricion  [Citado el 29 de Julio de 2015].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  20. Araya H, Lutz R. Alimentos funcionales y saludables.  Rev Chil Nutr 2003, 30: 8-4.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  21. Pollak OJ, Kritchevsky D. Sitosterol. In: Clarkson,  T.B., Kritchvsky D, Pollak OJ (Eds.). Monographs  on Atherosclerosis. Karger, Basel, Switzerland. 1981;  219p.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  22. Valenzuela A, Ronco A. Fitoesteroles y fitoestanoles:  aliados naturales para la protección de la salud  cardiovascular. Rev Chil Nutr 2004, 31: 161-169.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  23. Cusack L, Fernandez M, Volek J. The food matrix  and sterol characteristics affect the plasma cholesterol  lowering of phytosterol/phytostanol. Adv Nutr 2013,  4: 633–643.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  24. Laitinen K, Gylling H. Dose-dependent LDLcholesterol  lowering effect by plant stanol ester  consumption: clinical evidence. Lipids Heal Dis 2012;  11:140.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  25. Clifton P, Noakes M D S, Al, E. Cholesterol-lowering  effects of plant sterol esters differ in milk, yoghurt,  bread and cereal. Eur J Clin Nutr 2004, 58: 503–509.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  26. Costa J, Amaral J, Mafra I, Oliveira B. Refining of  Roundup Readysoya bean oil: Effect on the fatty acid,  phytosterol and tocopherol profiles. Eur J Lipid Sci  Tech 2011, 113: 528-535.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  27. Fernandez A, Velasco L, Fernandez J. Phytosterols in  the seeds of wild sunflowers species. HELIA 2011, 34:  31-38.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  28. Shin E, Pegg R, Phillips D, Eitenmiller R. Commercial  peanut (Arachis hypogaea L.) cultivars in the United  States: phytosterol composition. J Agric Food Chem  2010, 58: 9137-9146.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  29. Piironen V, Lindsay D, Miettinen T, Toivo J, Lampi,  A. Review. Plant sterols: Biosynthesis, biological  function and their importance to human nutrition. J  Sci Food Agric 2000, 80: 939–966.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  30. Ryan, E., K. Galvin, T. O’Connor, A. Maguire and N.  O’Brien. Phytosterol, squalene, tocopherol content  and fatty acid profile of selected seeds, grains and  legumes. Plant Foods Hum Nutr 2007, 62: 85-91.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  31. Zangerberg M, Boskov H, JØrgensen J, Hellgren  L. Cultivar and year to year variation of phytosterol  content in rye (Secale cereal L.). J Agric Food Chem  2004, 52: 2593-2597.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  32. Singh V, Moreau R, Hicks K. Yield and phytosterol  composition of oil extracted from grain sorghum and  its wet-milled fractions. Cereal Chem 2003, 80:126-  129.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  33. Achigan E, Sogbohossou O, Maundu P. Current  knowledge on Amaranthus spp.: research avenues  for improved nutritional value and yield in leafy  amaranths in sub-Saharan Africa. Euphytica 2014,  197: 303-317.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  34. Valcárcel-Yamani B, Caetano da Silva S. Applications  of quinoa (Chenopodium quinoa Willd.) and amaranth  (Amaranthus spp.) and their influence in the nutritional  value of cereal based foods. Food Public Health 2012,  2: 265-275.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  35. Fernando T, Bean G. A comparison of the fatty acids  and sterols of seeds of weedy and vegetable species of  Amaranthus spp. J Am Oil Chem Soc 1985, 62: 89-91.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  36. Ogrodowska D, Zadernowski R, Czaplicki S,  Derewiaka D, Wronowska B. Amaranth seeds and  products – The source of bioactive compounds. Polish  J Food Nutr Sci 2014, 64: 1-6.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  37. Marcone M, Kakuda Y, Yada R. Amaranth as a rich  dietary source of sitosterol and other phytosterols.  Plant Food Hum Nutr 2004, 58: 207–211.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  38. Andrade de Castro L, Manólio R, Saldiva P, Ferrari  R, Miguel A, Almeida C, Gomes J. Amaranth oil  increased fecal excretion of bile acid but had no effect  in reducing plasma cholesterol in hamsters. Lipids  2013, 48:609–618.</font></p>     ]]></body>
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<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  54. Gül M, Egesel C, Tayyar S, Kahriman, F. Changes in  phytosterols in rapeseed (Brassica napus L.) and their  interaction with nitrogen fertilization. Int J Agric Biol  2007, 9: 250-253.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532225&pid=S0004-0622201600010000200018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  55. Via S, Lande R. Genotype-environment interaction  and the evolution of phenotypic plasticity. Evolution  1985, 39: 505-522.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=532227&pid=S0004-0622201600010000200019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  56. FDA. Health claims: plant sterol/stanol esters and risk  of coronary heart disease (CHD). En http://www.ecfr.gov/cgi-bin/textidx?c=ecfr;sid=502078d8634923ed  c695b394a357d189;rgn=div8;view=text;node=21%  3A2.0.1.1.2.5.1.14;idno=21;cc=ecfr [Citado el 16 de  Junio de 2015].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  57. EFSA. Blood cholesterol reduction health claims on  phytosterols can now be judged against EFSA new  scientific advice. En  <a href="http://www.efsa.europa.eu/en/press/news/nda090731.htm">http://www.efsa.europa.eu/en/press/news/nda090731.htm</a>&nbsp; [Citado el 16 de Junio de  2015].</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  58. ANVISA. Alimentos com Alegações de Propriedades  Funcionais e ou de Saúde, Novos Alimentos/  Ingredientes, Substâncias Bioativas e Probióticos.  En <a href="http://www.anvisa.gov.br/alimentos/comissoes/tecno_lista_alega.htm">http://www.anvisa.gov.br/alimentos/comissoes/tecno_lista_alega.htm</a>&nbsp; [citado el 16 de junio 2015].  Recibido: 28-09-2015  Aceptado: 11-12-2015</font></p>       ]]></body>
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