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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Morfoanatomía foliar en especímenes de Capparis flexuosa (L.) L. (Capparaceae) creciendo en tres localidades distintas del estado Aragua (Venezuela)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Biotype, leaf morphology and anatomy were studied for individuals of Capparis flexuosa growing in three different environmental conditions. We describe the typical biotype present in the collection sites. We collected 30 full expanded leaves to determine the leaf shape and area. Likewise, five mature leaves for biotype were fixed in 70% FAA for anatomical studies. We found differences between the biotypes in relation to environmental conditions. Biotype 1 is growing in a coastal site, showing features such as small leaf area, high palisade/spongy ratio and high stomata density associated to conditions of high radiation and drought. Biotype 2 have the lowest palisade/spongy ratio likely in response to low sun radiation and for biotype 3 were observed intermediate anatomical features. These results indicate that Capparis flexuosa develops a high phenotypic plasticity as adaptative response to different ecological conditions.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><b> <span style="font-size: 12.0pt; font-family: Verdana; color: #231F20"> Morfoanatomía foliar en especímenes de <i>Capparis flexuosa </i>(L.) L. (Capparaceae)</span></b><span style="font-size: 12.0pt; font-family: Verdana"> <b><span style="color:#231F20">creciendo en tres localidades</span></b> <b> <span style="color:#231F20">distintas del estado Aragua (Venezuela)</span></b></span></p>     <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Pedro Torrecilla, Mercedes Castro y Marlene Lapp </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> Instituto de Botánica Agrícola, Facultad de Agronomía, Universidad Central de </font> <font SIZE="2" COLOR="#231f20"> Venezuela, Maracay, Edo. Aragua, Venezuela. <a href="mailto:torrecillap@agr.ucv.ve">torrecillap@agr.ucv.ve</a>; </font> <font COLOR="#231f20"> <a href="mailto:castrom@agr.ucv.ve">castrom@agr.ucv.ve</a>; <a href="mailto:lappm@agr.ucv.ve">lappm@agr.ucv.ve</a> </font></font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> COMPENDIO </font></p> </b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Se estudió el biotipo, la morfología y la anatomía foliar en especímenes de </font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Capparis flexuosa </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">creciendo en tres localidades distintas del estado Aragua, con la finalidad de determinar posibles diferencias entre los mismos. En cada localidad se procedió a describir el biotipo característico y se colectaron 30 hojas en plena expansión foliar para determinar la forma y el área foliar. Además, se colectaron cinco hojas maduras por biotipo y se fijaron en FAA para su posterior estudio anatómico. Los resultados obtenidos muestran diferencias entre los tres biotipos en relación con las condiciones ambientales. Así, el biotipo 1, que crece en una zona costera, presenta entre otras características un área foliar pequeña, una alta relación parénquima empalizada/ parénquima esponjoso y la mayor densidad estomática de las tres poblaciones estudiadas, lo cual estaría asociado a condiciones de alta radiación solar y marcado déficit hídrico. El biotipo 2 tiene una baja relación parénquima empalizada/ parénquima esponjoso, posiblemente en respuesta a bajos valores de radiación, mientras que el biotipo 3 muestra características morfoanatómicas intermedias. Estos </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">resultados indican que la hoja de </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">exhibe una marcada</font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> plasticidad fenotípica como respuesta adaptativa a las distintas condiciones ecológicas donde se desarrolla.</font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> PALABRAS CLAVE</font></b><font face="Verdana" size="2"><b><font color="#231f20">: </font></b><font COLOR="#231f20">Biotipos, plasticidad foliar, morfoanatomía foliar, <i>Capparis flexuosa</i>,</font> <font COLOR="#231f20">Capparaceae, Venezuela. </font></font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> ABSTRACT </font></p> </b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Biotype, leaf morphology and anatomy were studied for individuals of </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">growing in three different environmental conditions. We describe the typical biotype present in the collection sites. We collected 30 full expanded leaves to determine the leaf shape and area. Likewise, five mature leaves for biotype were fixed in 70% FAA for anatomical studies. We found differences between the biotypes in relation to environmental conditions. Biotype 1 is growing in a coastal site, showing features such as small leaf area, high palisade/spongy ratio and high stomata density associated to conditions of high radiation and drought. Biotype 2 have the lowest palisade/spongy ratio likely in response to low sun radiation and for biotype 3 were observed intermediate anatomical </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> features. These results indicate that </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">develops a high </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">phenotypic plasticity as adaptative response to different ecological conditions. </font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> KEY WORDS: </font></b><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">Biotypes, leaf plasticity, leaf morphoanatomy, </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, Capparaceae,</font> <font COLOR="#231f20">Venezuela. </font></font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> INTRODUCCIÓN </font></p> </b>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> La plasticidad fenotípica es la capacidad que tiene un genotipo para alterar su  fisiología y morfología en respuesta a cambios en las condiciones ambientales.  Bradshaw (1965), Sultán (1995) y Schlichting (2002), señalan a la plasticidad fenotípica como uno de los mecanismos desarrollados por las plantas para sobrevivir  en condiciones ambientales diversas. La plasticidad fenotípica es frecuentemente  representada como una norma de reacción, que puede expresarse  a nivel de individuo o incluso a niveles subindividuales, en este último caso referida a la posibilidad de expresión de distintos fenotipos en un mismo individuo,  siempre y cuando este tenga un desarrollo modular como es el caso de las </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> plantas (De Kroon </font><i><font COLOR="#231f20">et al</font></i><font COLOR="#231f20">. 2005). </font></font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">En los años 70 y 80 del siglo XX, la investigación relacionada con la capacidad de adaptación de las plantas, se centra en el papel del genotipo restando importancia al fenotipo, y es a partir de los 90 cuando se retoma el hecho de que el fenotipo es una expresión de la interrelación entre genotipo y ambiente (Schlichting 2002). En este mismo sentido, Hlwatika y Bhat (2002), señalan que las plantas pueden responder al ambiente por dos vías: en el corto plazo vía cambios morfológicos, fisiológicos y bioquímicos, mientras que en el largo plazo  las poblaciones de plantas responden a través de cambios en su composición  genética.  </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Muchos caracteres morfológicos están claramente relacionados con las condiciones  ambientales; en el caso concreto de las variaciones morfoanatómicas en respuesta al ambiente, se expresan mejor en la hoja, por lo que el espectro de  variación de la anatomía foliar provee una indicación de la plasticidad ecológica </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20"> de la especie (Roth 1984¸ Rôças </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">2001). </font></font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Las selvas deciduas y las formaciones vegetales costeras están entre los hábitats más amenazados y altamente fragmentados en nuestro país, debido principalmente a la intervención antrópica, por lo que es de gran interés evaluar la aclimatación de las especies propias de estas formaciones vegetales a la heterogeneidad ambiental. Comúnmente las iniciativas de conservación se enfocan en las especies endémicas o raras, restando importancia a las especies de amplia distribución; sin embargo, estas últimas pueden presentar variaciones fenotípicas interesantes en sus poblaciones, pudiendo ocurrir extinciones locales de dichas variaciones debido a la vulnerabilidad ante las presiones ambientales </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20">y el impacto antropogénico (Rôças </font><i> <font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">2001). </font></font></p> <i>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Capparis flexuosa </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">(L.) L. es una especie neotropical que conforma un complejo polimórfico pobremente descrito, en el cual se han propuesto seis o siete </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">subespecies, dos de ellas en Venezuela: </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">(L.) L. subesp. </font></font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> flexuosa </font></i><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">y </font><i><font COLOR="#231f20">C. flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">(L.) L. subesp. </font><i> <font COLOR="#231f20">polyantha </font></i><font COLOR="#231f20">(Triana </font><i><font COLOR="#231f20">et </font></i><font COLOR="#231f20">Planch.) H. H. Iltis</font><b><font COLOR="#231f20">, </font></b><font COLOR="#231f20">cuya distribución abarca diversos habitats en el país, entre ellos las selvas deciduas y los herbazales-arbustales costeros.</font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">subesp. </font></font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> flexuosa </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">es descrita como una planta lianoide o apoyada, de hojas muy coriáceas, pequeñas y de ápice retuso, con inflorescencias paucifloras; y distribuida ampliamente, principalmente en zonas costeras, desde Florida y el Oeste de México, pasando por Mesoamérica y el Caribe hasta las costas de Venezuela y </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">el este de Brasil. </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">subesp. </font><i> <font COLOR="#231f20">polyantha</font></i><font COLOR="#231f20">, está conformada por </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">plantas arbustivas hasta arbóreas, más ramificadas que la subespecie tipo, con hojas grandes, papiráceas, de ápice agudo a acuminado, con inflorescencias multifloras; estando ampliamente distribuida en bosques deciduos de tierra adentro en Venezuela, Colombia, Ecuador y posiblemente Brasil (Ruiz-Zapata e Iltis 1998, Ruiz-Zapata 2005). </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Para Capparaceae, Metcalfe y Chalk (1950), estudiaron diversos aspectos de la anatomía foliar, incluyendo el mesofilo, los haces vasculares, los tipos de </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> tricomas, la distribución del esclerénquima, entre otros. Para </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, Valerio </font><i> <font COLOR="#231f20">et al</font></i><font COLOR="#231f20">. (1998) compararon la anatomía foliar de las dos subespecies </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">señaladas para Venezuela, llegando a proponer la separación taxonómica de las mismas como dos especies. De hecho, Cornejo e Iltis (2008) al reconocer el </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">género </font><i> <font COLOR="#231f20">Cynophalla </font></i><font COLOR="#231f20">J. Presl, segregándolo de </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis</font></i><font COLOR="#231f20">, postulan la combinación </font></font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Cynophalla polyantha </font></i><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20">(Triana </font><i><font COLOR="#231f20">et </font></i><font COLOR="#231f20">Planch.) X. Cornejo </font><i><font COLOR="#231f20">et </font></i><font COLOR="#231f20">H.H. Iltis, </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">dándole igualmente el estatus de especie.</font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">En el presente trabajo se plantea el estudio de las variaciones en la morfoanatomía </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">foliar en poblaciones de </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">creciendo en selvas deciduas y </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">matorral denso de restinga de distintas localidades del estado Aragua en Venezuela. </font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> MATERIALES Y MÉTODOS </font></p> </b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> DESCRIPCIÓN DEL ÁREA DE ESTUDIO </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Las colecciones se realizaron en tres localidades distintas del estado Aragua  (Venezuela) correspondientes a diferentes formaciones vegetales: </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Localidad 1 </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Matorral denso de restinga de la playa «Catica» (<a href="#tab1">Tabla I</a>). Se trata de un herbazal-arbustal denso, bajo (60 cm de altura), donde se presentan </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Sporobolus virginicus </font></i><font size="2" face="Verdana"> <font COLOR="#231f20">(L.) Kunth, </font><i><font COLOR="#231f20">Talinum triangulare </font></i><font COLOR="#231f20">(Jacq.) Willd., </font></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Acanthocereus tetragonus </font></i><font size="2" face="Verdana"> <font COLOR="#231f20">(L.) Hummelinck, </font><i><font COLOR="#231f20">Coccoloba uvifera </font></i><font COLOR="#231f20">(L.) Jacq., </font></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Ipomoea prescaprae </font> </i><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> (L.) R.Br., </font><i><font COLOR="#231f20">Lycium nodosum </font></i><font COLOR="#231f20">Miers y </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">(L.) L., </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">entre otras especies. Se caracteriza por ser una zona plana, con suelo arenoso proveniente de la acción erosiva del mar sobre la costa, con cierta acumulación de materia orgánica. Presenta un clima tropical bi-estacional con seis meses secos (finales de diciembre a principios de junio) y seis meses húmedos (finales de junio a principios de diciembre), siendo marzo el mes de menor precipitación y julio el de mayor precipitación (Castro y Magallanes 1993).</font></p>     <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03tab1.gif" width="576" height="353"></a></p>     
<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Localidad 2 </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Selva decidua montano-baja del Jardín Botánico Universitario de Maracay «Baltasar Trujillo» (<a href="#tab1">Tabla I</a>). Se trata de una selva decidua bastante conservada que se desarrolla en estribaciones bajas de la Cordillera de la Costa, en la vertiente del río Güey con orientación suroeste; con la presencia de especies </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20">tales como: </font><i><font COLOR="#231f20">Gyrocarpus americanus </font></i><font COLOR="#231f20">Jacq., </font><i><font COLOR="#231f20">Bulnesia arborea </font></i><font COLOR="#231f20">(Jacq.) Engl., </font></font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Bauhinia cumanensis </font></i><font size="2" face="Verdana"> <font COLOR="#231f20">Kunth, </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">(L.) L., </font></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Coccoloba caracasana </font> </i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Meisn., entre otras. Se caracteriza por presentar pendientes de 6-8%, con sedimentos detríticos (5 a 7 cm), provenientes de la alteración y erosión de la formación geológica «Las Mercedes» de origen mesozoico; con suelo franco a franco-arcilloso. Un clima tropical bi-estacional, siendo de marzo a octubre los</font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> meses lluviosos y de noviembre a abril los meses secos (</font><i><font COLOR="#231f20">Index Seminum </font></i><font COLOR="#231f20">2007). </font></font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Localidad 3 </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Matorral deciduo montano-bajo del Cerro «La Gruta», Municipio San Sebastián (estado Aragua) (<a href="#tab1">Tabla I</a>). Se trata de un matorral deciduo con relictos de </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">selva decidua y áreas de </font><i> <font COLOR="#231f20">graminetum sucesional</font></i><font COLOR="#231f20">, que se desarrolla en </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">estribaciones bajas de la cordillera del interior. Conforma un relicto de selva </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">decidua, con especies tales como: </font><i> <font COLOR="#231f20">Chioccoca alba </font></i><font COLOR="#231f20">(L.) Hitchc., </font></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Erythroxylum havanense </font></i><font size="2" face="Verdana"> <font COLOR="#231f20">Jacq., </font><i><font COLOR="#231f20">Rondeletia venezuelensis </font></i><font COLOR="#231f20">Steyerm.</font><b><font COLOR="#231f20">, </font></b></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Psidium guineense </font> </i><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> Sw., </font><i><font COLOR="#231f20">Haematoxylon brasiletto </font></i><font COLOR="#231f20">Karst., </font><i><font COLOR="#231f20">Aspidosperma cuspa </font></i><font COLOR="#231f20">(H.B.K.) S.F. Blake </font><i><font COLOR="#231f20">ex </font></i><font COLOR="#231f20">Pittier y </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, entre otras. Se caracteriza por presentar </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">sedimentos detríticos provenientes de la alteración y erosión de calizas. Es un área con afloramientos rocosos, suelo franco-arenoso poco profundo, húmedo, con un clima tropical bi-estacional, siendo de mayo a noviembre los meses lluviosos y de diciembre a abril los meses secos (Noguera 2000). </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">MATERIAL VEGETAL </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">Se seleccionaron tres poblaciones naturales de </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">presentes </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">en las tres localidades descritas anteriormente. Se colectaron 30 hojas de diferentes individuos por localidad para las mediciones de área foliar y cinco hojas adicionales se fijaron en FAA para su posterior procesamiento anatómico. Se seleccionaron hojas en plena expansión foliar y en áreas de la planta expuestas a la radiación solar directa. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">CARACTERIZACIÓN MORFOLÓGICA </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Se realizaron observaciones de diferentes individuos en el campo, a fin de realizar una caracterización del biotipo correspondiente, tomando en cuenta fundamentalmente la arquitectura de la planta. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Para la determinación del área foliar se utilizó un medidor automático (Marca CID, Inc. Modelo CI-202). Para cada población se realizaron 30 mediciones, a partir de las cuales se calculó el valor promedio del área foliar. Asimismo, se realizaron dibujos esquemáticos a escala de los distintos tipos de lámina foliar. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> ANATOMÍA FOLIAR </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> El material fijado en FAA fue procesado siguiendo técnicas clásicas de microtecnia para la preparación de secciones transversales a mano alzada del pecíolo y lámina. Para el estudio de la epidermis se realizaron macerados químicos usando una mezcla 1:1 (V:V) de cloro comercial y agua a temperatura ambiente. El material fue teñido con azul de toluidina acuosa (0,5 %) y se montaron en agua-glicerina (V:V), para la obtención de láminas semipermanentes. Las secciones se estudiaron bajo un microscopio de luz marca Olympus modelo CH30 y con la ayuda de un ocular micrométrico acoplado al microscopio se realizaron las siguientes medidas cuantitativas: grosor de la cutícula más pared tangencial externa de la epidermis adaxial y abaxial y grosor del parénquima en empalizada, parénquima esponjoso y de la hoja, además se determinó la densidad de los estomas. Con los valores correspondientes al espesor del parénquima en empalizada y el parénquima esponjoso se calculó la relación parénquima en empalizada/ parénquima esponjoso (P.emp./P.esp.). Se efectuaron un mínimo de 40 medidas en distintas preparaciones escogidas al azar, para calcular posteriormente los valores promedios y la desviación estándar. Se tomaron microfotografías con una cámara Evolution LC acoplada a un microscopio óptico Nikon E200. </font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> RESULTADOS Y DISCUSIÓN </font></p> </b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Se obtuvieron las mediciones de las variables climáticas consideradas </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> (<a href="#tab1">Tabla I</a>). En los tres biotipos de </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">encontramos diferencias </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">a nivel morfológico. El biotipo 1, mostrado por la población de la playa de Catica, presenta un hábito poco común en la especie, no coincidente en todas sus características con lo señalado por autores anteriores (Ruiz-Zapata e Iltis 1998, Ruiz-Zapata 2002), debido a que se trata de una planta con tallos estoloníferos subterráneos, cuyas escasas ramificaciones emergentes son mas o menos decumbentes; en contraposición a los biotipos 2 y 3, el primero de los cuales es un arbusto de ramas decumbentes y el segundo un árbol de aproximadamente 5 m de altura, hábitos ambos característicos de la amplitud de variación de la especie mencionada en la literatura. Las características peculiares del biotipo 1 están en estrecha correlación con las características del ambiente donde se desarrolla, ya que al estar sometido a fuertes vientos marinos y creciendo en un sustrato arenoso, se genera un desarrollo acamado con los tallos principales horizontales que terminan enterrándose y prosiguen su desarrollo de esta forma, produciendo raíces en los nudos. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> En cuanto a las características foliares, en los tres biotipos estudiados se observó  una gradación en el área de la lámina foliar (<a href="#tab2">Tabla II</a>) y en la forma del ápice (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). El biotipo 1 posee la menor área foliar y el biotipo 3 la mayor  área foliar. Roth (1984) señala que la reducción en el tamaño de la hoja se considera una característica xeromórfica; Murphy y Lugo (1986), plantean que el tamaño de la hoja disminuye con el incremento de la aridez.</font></p>     <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03tab2.gif" width="462" height="483"></a></p>     
<p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03fig1.gif" width="463" height="660"></a></p>     
<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Roth (1992) plantea que la salinidad es un factor determinante en la reducción del área foliar en especies costeras venezolanas. García y Lapp (2001), trabajando </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20"> con biotipos de </font><i><font COLOR="#231f20">Pithecellobium unguiscati</font></i><font COLOR="#231f20">, encontraron que el biotipo </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">creciendo en un cerro costanero xerófilo presentó un área foliar muy reducida. </font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Lo señalado por las autoras mencionadas coincide con los resultados obtenidos  para el biotipo 1. Este biotipo crece en condiciones de alta salinidad, alta temperatura  ambiente y alta radiación solar, condiciones éstas que favorecen el  desarrollo de un área foliar reducida. Los biotipos 2 y 3, presentaron un área  foliar mayor, determinada por las condiciones hemiesciófitas en donde crecen, aunado a un sustrato no salino y de mayor fertilidad (<a href="#tab1">Tabla I</a> y <a href="#fig2">Fig. 2</a>).</font></p>     <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="fig2"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03fig2.gif" width="460" height="557"></a></p>     
<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Con relación a la forma de la hoja (<a href="#fig1">Fig. 1</a>), el biotipo 1 muestra una lámina que  va desde medianamente elíptica hasta casi orbicular, mientras que los biotipos  2 y 3 muestran una forma claramente elíptica. Roth (1992) indica que las hojas de plantas creciendo en zonas áridas tienden a ser orbiculares, con un valor de la relación largo/ancho cercano a uno, lo que combinado con un área foliar  pequeña tiende a reducir la superficie transpiratoria. Por otra parte, Parkhurst y Loucks (1972) señalan que las hojas pequeñas son capaces de regular su temperatura mediante un enfriamiento por convección más efectivo que en  hojas con mayor superficie. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Respecto al ápice de la hoja, el biotipo 1 presenta un ápice retuso, mientras que en los biotipos 2 y 3 varía de retuso a agudo hasta acuminado y la base de la lámina es redondeada en el biotipo 1, mientras que en los biotipos 2 y 3 va  desde redondeada hasta cuneada (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). El ápice de la hoja ha sido una de  las características utilizadas para diferenciar a las dos subespecies señaladas </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20"> para Venezuela, asignándole ápice retuso a </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">subespecie </font></font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> flexuosa</font></i><font size="2" face="Verdana"><font COLOR="#231f20">, y ápice agudo a acuminado a </font><i><font COLOR="#231f20">C. flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">subespecie </font></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">polyantha </font> </i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> (Ruiz-Zapata 2002); sin embargo, los biotipos 2 y 3 muestran toda la amplitud  de variación de este carácter en un mismo individuo, coincidiendo esto con lo </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20"> señalado por Valerio </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1998). Desde el punto de vista ecológico, Roth </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">(1992) indica que la lámina de las xerófitas tiende a presentar ápices obtusos a redondeados y bases redondeadas, debido posiblemente a que estructuras de forma aguda son más susceptibles a sufrir daños por deshidratación. Esto coincide con lo observado en el presente trabajo para la población de </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">C. flexuosa </font> </i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> que crece en el clima más árido. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Respecto a la anatomía foliar, la epidermis adaxial de los tres biotipos en vista frontal, presenta células más o menos isodiamétricas, desde tetragonales hasta hexagonales, con paredes rectas y gruesas, siendo ligeramente más gruesas  en el biotipo 1 localizado en la zona costera, coincidiendo estos resultados con  lo señalado por García y Lapp (2001) para un biotipo de </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Pithecellobium unguiscati </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">presente en un cerro costero xerófilo. Roth (1992), indica que la presencia de paredes celulares más gruesas en la epidermis de plantas expuestas a rocíos marinos, puede contribuir a evitar que las pequeñas gotas  salinas que se depositan en la superficie entren al mesofilo. Además, los tres biotipos presentan estriaciones cuticulares marcadas. La epidermis abaxial posee células de igual forma y ligeramente más pequeñas que las de la epidermis  adaxial (<a href="#fig3">Fig. 3</a>). En los biotipos 1 y 3 las hojas son hipostomáticas, mientras que en el biotipo 2 se encontraron estomas escasos en la epidermis adaxial, distribuidos cerca de las nervaduras y una mayor densidad estomática en la </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> epidermis abaxial. En este sentido, León </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1988) y Valerio </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1998), señalan la presencia de estomas en ambas epidermis para </font><i> <font COLOR="#231f20">C. flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, indicando </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">el primer autor que en la epidermis adaxial su densidad es muy baja. La ubicación de los estomas se ha utilizado ampliamente como un carácter de valor diagnóstico (Solereder 1908, Metcalfe y Chalk 1950, Rashid y Beg 1989); sin embargo, diversos autores han encontrado que la distribución de los estomas en una especie puede variar (Standley 1986, Jáuregui y Benítez de Rojas 2002, García y Lapp 2005). Por su parte, Mott y Michaelson (1986) encuentran que </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">las hojas de </font><i> <font COLOR="#231f20">Ambrosia cordifolia</font></i><font COLOR="#231f20">, son anfiestomáticas cuando crecen con una </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">alta incidencia de luz, mientras que son hipostomáticas cuando se desarrollan bajo condiciones de baja luminosidad. Estas evidencias indican que el valor diagnóstico de la ubicación de los estomas debe ser revisado, ya que estos patrones de distribución parecen estar influenciados por el ambiente. En el </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">caso de </font><i> <font COLOR="#231f20">C. flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, la baja frecuencia estomática en la epidermis adaxial </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">hace suponer que la especie se comporta funcionalmente como una hoja hipostomática.</font></p>     <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="fig3"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03fig3.gif" width="462" height="657"></a></p>     
<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Los estomas son anomocíticos (<a href="#fig3">Fig. 3</a>), carácter frecuente en Capparaceae </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">(Metcalfe y Chalk 1950, León </font><i> <font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">1988), hundidos con relación a las células </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">epidérmicas normales y con cuernos cuticulares, características que han sido relacionadas con la reducción de pérdida de agua por transpiración (Pyykkö 1966, Roth 1992). La densidad estomática, mostró diferencias entre los biotipos, mostrando el valor mayor los individuos de la localidad 1, valores intermedios los de la localidad 3 y los de la localidad 2 con el menor número de estomas por área. Se ha señalado que en condiciones de alta luminosidad la densidad estomática aumenta (Brownlee 2001) y que la sensibilidad estomática a la humedad tiende a ser mayor en las superficies foliares con una alta densidad estomática, lo cual puede ser ventajoso en plantas que crecen en ambientes </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">con una baja disponibilidad de agua (Mabrouk </font><i> <font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">1985). Estos planteamientos </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">coinciden con lo encontrado en el presente trabajo. No se observaron tricomas. La lámina en sección transversal presenta la epidermis adaxial unistratificada, con células epidérmicas tabulares en sección transversal y cutícula bastante desarrollada, de grosor semejante entre los biotipos y con estriaciones marcadas. La cutícula engrosada, particularmente en la superficie adaxial, se ha asociado a condiciones de aridez, como una acción mecánica para evitar que los tejidos foliares colapsen cuando el déficit hídrico es marcado (Pyykkö 1966, Roth 1992). Esta característica podría estar asociada a la condición </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20">siempreverde de </font><i><font COLOR="#231f20">C.  flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, por lo que posiblemente una cutícula </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> muy desarrollada le brinde resistencia mecánica durante la época de sequía.  Asimismo, se ha indicado que una cutícula gruesa contribuye a proteger a los  tejidos fotosintéticos de una alta radiación solar por un incremento de la  reflectancia (Roth 1984), lo cual podría explicar el mayor grosor de la cutícula en los biotipos 1 y 3 en relación con el biotipo 2, el cual está sometido a una  menor radiación solar. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Metcalfe y Chalk (1950), indican la presencia de cristales de yeso en las células </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> de la epidermis superior en las hojas de </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis polyantha </font></i><font COLOR="#231f20">(</font></font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">C. flexuosa </font> </i><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> subespecie </font><i><font COLOR="#231f20">polyantha</font></i><font COLOR="#231f20">); por su parte Valerio </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1998), mencionan la existencia </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">de cristales de oxalato de calcio en forma de rombos y estrellas de seis puntas en las células epidérmicas de las dos subespecies señaladas para Venezuela, </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20">mientras que León </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1988) no observan la presencia de cristales en </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">la especie. En el presente estudio, se observaron cristales prismáticos en la epidermis del biotipo 1. En relación a la función de los cristales de oxalato de calcio, Franceschi y Horner (1980) indican que se han atribuido varias funciones a los mismos, tales como mecanismos de inmovilización del calcio (Ca) en la planta a fin de regular las funciones osmóticas, mecanismos de defensa contra la herbivoría o para el almacenamiento de Ca, que la planta es capaz de utilizar cuando hay déficit de este elemento. Se ha comprobado que la cantidad de cristales de oxalato de Ca puede ser proporcional a la cantidad de Ca disponible en el medio y que las células cristalíferas pueden funcionar como sumideros para la acumulación del mismo en algunas plantas (Kostman y Franceschi 2000). La presencia de cristales tanto en los individuos estudiados </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20">por Valerio </font><i><font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1998) y en el biotipo 1 de este estudio, posiblemente este </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">asociada a las condiciones edáficas donde estas plantas se desarrollan, pero es necesario realizar estudios más detallados de los contenidos de Ca en el suelo a fin de determinar la función de dichos cristales. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">El mesofilo posee simetría dorsiventral, con un parénquima en empalizada formado por dos capas de células alargadas y una tercera capa más corta. Parénquima esponjoso formado por 4–5 capas de células, de forma más o menos redondeada, y de arreglo laxo. El mesofilo se presenta más desarrollado en los biotipos 1 y 3 en relación con el biotipo 2, estas diferencias vienen dadas principalmente por un mayor desarrollo del parénquima en empalizada en los dos primeros, particularmente en el biotipo 1. Estos valores se reflejan en una relación P. emp./P. esp. mayor que uno en los biotipos 1 y 3, mientras que en el biotipo 2 esta relación presenta un valor menor a uno, asociado a un mayor desarrollo del parénquima esponjoso con relación al parénquima en empalizada. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">Markesteijn </font><i> <font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(2007) encuentran que la plasticidad de la anatomía foliar en </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">respuesta a la radiación solar está asociada a cambios en el grosor y/o número de capas del parénquima en empalizada, que se expresa en variaciones de la relación P. emp./P. esp. En este sentido, diversos autores (Boardman 1977, Strauss-Debenedetti y Berlyn 1994, García y Lapp 2001) han señalado que un mayor desarrollo del parénquima en empalizada y una alta relación P. emp. /P. esp. están asociados a hojas expuestas a una alta radiación solar, lo cual se considera un mecanismo que permite aumentar la capacidad fotosintética de las mismas (Evans 1999). Los biotipos 1 y 3 se desarrollan en áreas de alta radiación solar, especialmente el biotipo 1 que crece plenamente expuesto en la zona costera; mientras que el biotipo 2 es un arbusto del sotobosque de la selva decidua con una baja incidencia de una radiación solar difusa (<a href="#fig2">Fig. 2</a>).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">La epidermis abaxial muestra células más pequeñas que la adaxial, redondeadas en vista transversal, con paredes gruesas y proyecciones papilosas de la </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">cutícula. Valerio </font><i> <font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1998), señalan la existencia de una hipodermis en las dos subespecies de </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">por ellos estudiadas; así mismo Melcafe </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">y Chalk (1950), también señalan la presencia de una hipodermis en algunas </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">especies de </font><i> <font COLOR="#231f20">Capparis</font></i><font COLOR="#231f20">; en el presente trabajo no se detectó tal tejido. Las </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">capas de células del parénquima esponjoso, ubicadas inmediatamente debajo de la epidermis abaxial, muestran un arreglo relativamente ordenado y compacto, en comparación con el resto del parénquima esponjoso, lo cual puede ser confundido con una hipodermis. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">En todos los biotipos, el sistema vascular de la lámina está formado por haces conductores colaterales, con casquete de fibras hacia ambas epidermis, estando más desarrollado hacia la epidermis abaxial. </font></p>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">En relación a la nervadura central (<a href="#fig4">Fig. 4</a>), en los biotipos estudiados se presenta una capa de células colenquimáticas por debajo de la epidermis adaxial, seguido de una a dos capas de parénquima clorofiliano. Posteriormente se presenta el sistema vascular en posición central, formando un arco con crecimiento secundario evidente, rodeado casi completamente por un casquete de fibras que se muestra más desarrollado en el biotipo 1. Por debajo de éste, se ubican 3–4 capas de células parenquimáticas, con paredes más gruesas en los biotipos 1 y 3 en relación con el biotipo 2, seguidas de 4-5 capas de colénquima, con las paredes fuertemente engrosadas en los biotipos 1 y 3. En cuanto al pecíolo, no se encontraron diferencias anatómicas significativas en los tres biotipos estudiados, a excepción de los tricomas tectores multicelulares presentes solamente en el biotipo 1 (<a href="#fig5">Fig. 5</a>); coincidiendo con la estructura </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">anatómica descrita por Melcafe y Chalk (1950) y Valerio </font><i> <font COLOR="#231f20">et al. </font></i><font COLOR="#231f20">(1998).</font></font></p>     <p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="fig4"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03fig4.gif" width="464" height="568"></a></p>     
<p ALIGN="center" style="line-height: 100%"><a name="fig5"> <img border="0" src="/img/fbpe/ern/v19n1/art03fig5.gif" width="460" height="504"></a></p>     
<p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> En cuanto a la separación de dos subespecies en </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa</font></i><font COLOR="#231f20">, aunque </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">sería necesario profundizar el estudio de otros caracteres, las observaciones nuestras muestran un continuo que no permite sustentar dicha propuesta, y menos aún proponer especies separadas, tal y como lo plantean Valerio </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">et al. </font> </i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> (1998) y Cornejo e Iltis (2008). </font></p> <b>     <p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS </font></p> </b>     <!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 1. Boardman, N.K. 1977. Comparative photosynthesis of sun and shade plants. Annual Rev. Pl. Physiol. 28: 355-377.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877780&pid=S0252-8274200900010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 2. Bradshaw, A.D. 1965. Evolutionary significance of phenotypic plasticity in plants. Advances Genet. 13: 115-155.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877781&pid=S0252-8274200900010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 3. Brownlee, C. 2001. The long and the short of stomatal density signals. Trends Pl. Science 6(10): 441-442.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877782&pid=S0252-8274200900010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 4. Cornejo, X. and H.H. Iltis. 2008. New combinations in South American Capparaceae. Harvard Pap. Bot. 13(1): 117-120.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877783&pid=S0252-8274200900010000300004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 5. Castro, M. y A. Magallanes. 1993. Caracterización florística y algunos aspectos fenológicos de las angiospermas presentes en el cardonal – espinar del sendero Cata – Catica, Parque Nacional Henri Pittier (Edo. Aragua) Venezuela. Tesis de Grado. Facultad de Agronomía, Universidad Central de Venezuela. Maracay, Venezuela. 241 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877784&pid=S0252-8274200900010000300005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 6. De Kroon, H., H. Huber, J.F. Stuefer and J.M. van Groenendael. 2005. A molecular concept of phenotypic plasticity in plants. New Phytol. 166:73-82.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877785&pid=S0252-8274200900010000300006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"> <font COLOR="#231f20" face="Verdana" size="2"> 7. Evans, J. 1999. Leaf anatomy enables more equal access to light and CO<sub>2</sub> between chloroplasts. New Phytol. 143: 93-104. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877786&pid=S0252-8274200900010000300007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 8. Franceschi, V. and H. Horner. 1980. Calcium oxalate crystals in plants. Bot. Rew. 46: 361-427. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877787&pid=S0252-8274200900010000300008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 9. García, M. y M. Lapp. 2001. Morfoanatomía foliar en tres biotipos de </font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Pithecellobium unguis-cati </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">(L.) Bentham creciendo en distintas comunidades vegetales. Öyton 147-158. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877788&pid=S0252-8274200900010000300009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">10. García, M. y M. Lapp. 2005. Anatomía foliar en especímenes de </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Oyedaea verbesinoides </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">DC. (Asteraceae) creciendo en tres ambientes distintos. Ernstia 15(1-4): 129-143. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877789&pid=S0252-8274200900010000300010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">11. Hlwatika, C.N.M. and R.B. Bhat. 2002. An ecological interpretation of the difference in leaf anatomy and its plasticity in contrasting tree species in Orange Klaof, Table Mountain, South Africa. Ann. Bot. 89: 109-114. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877790&pid=S0252-8274200900010000300011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">12. Index Seminum aut sporarum. 2007. Baltasar Trujillo (Ed.). Jardín Botánico Universitario de Maracay (JABUM), Patrocinado por Ernstia. N° 12. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877791&pid=S0252-8274200900010000300012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">13. Jáuregui, D. y C.E. Benítez de Rojas. 2002. Estudio morfológico de la hoja de </font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Solanum imberbe </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Bitter, especie notable por su habitat fluviátil. Pittieria 31: 7–15. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877792&pid=S0252-8274200900010000300013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">14. Kostman, T. and V. Franceschi. 2000. Cell and calcium oxalate crystals growth is coordinate to achieve high-capacity calcium regulation in plants. Protoplasma 214: 166-179. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877793&pid=S0252-8274200900010000300014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">15. León, E., G. Agostini y P. Rodríguez. 1988. Morfología y anatomía foliar de </font><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">especies leñosas venezolanas de </font><i> <font COLOR="#231f20">Belencita</font></i><font COLOR="#231f20">, </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis</font></i><font COLOR="#231f20">, </font><i><font COLOR="#231f20">Morisonia </font></i><font COLOR="#231f20">y </font></font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Steriphoma </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">(Capparaceae). Soc. Cienc. Nat. La Salle 129: 93-115. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877794&pid=S0252-8274200900010000300015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 16. Mabrouk, A., J. El-Sharkawy and A. Hernández. 1985. Stomatal response to air humidity and its relation to stomatal density in a wide range of warm climate species. Photosynthesis Research 7: 137-149. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877795&pid=S0252-8274200900010000300016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 17. Markesteijn, L., L. Poorter and F.J.J.M. Bongers. 2007. Light-dependent leaf trait variation in 43 tropical dry forest tree species. Amer. J. Bot. 94(4): 515-525. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877796&pid=S0252-8274200900010000300017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 18. Metcalfe, C. R. and L. Chalk. 1950. Anatomy of the dicotyledons. Vol. 1. Clarendon Press, Oxford. 724 pp. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877797&pid=S0252-8274200900010000300018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 19. Mott, K. and O. Michaelson. 1986. Amphistomy as an adaptation to high light </font><font face="Verdana" size="2"> <font COLOR="#231f20"> intensity in </font><i><font COLOR="#231f20">Ambrosia cordifolia </font></i><font COLOR="#231f20">(Compositae). Amer. J. Bot. 78: 76-79. </font></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877798&pid=S0252-8274200900010000300019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">20. Murphy, P.G. and A.E. Lugo. 1986. Ecology of tropical dry forest. Ann. Rev. Ecol. Systematic. 17: 67-88. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877799&pid=S0252-8274200900010000300020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">21. Noguera, E. 2000. Flórula del cerro La Gruta, San Sebastián, estado Aragua, Venezuela. Tesis de Grado, Facultad de Agronomía, Universidad Central de Venezuela. 177p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877800&pid=S0252-8274200900010000300021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">22. Parkhurst, D. and O. Loucks. 1972. Optimal leaf size in relation to environment. J. Ecol. 60: 505-537. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877801&pid=S0252-8274200900010000300022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">23. Pyykkö, M. 1966. The leaf anatomy of east Patagonian xeromorphic plants. Ann. Bot. Fenn. 3: 453-662. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877802&pid=S0252-8274200900010000300023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">24. Rashid, A. and R. Beg. 1989. A foliar key to family Solanaceae. Pakistan J. Forestry 39: 107-111. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877803&pid=S0252-8274200900010000300024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">25. Rôças, G., F.R. Scarano and C.F. Barros. 2001. Leaf anatomical variation in </font><i> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Alchornea triplinervia </font></i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">(Spreng.) Mull. Arg. (Euphorbiaceae) under distinct light and soil water regimen. Bot. J. Linn. Soc. 136:231-238. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877804&pid=S0252-8274200900010000300025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">26. Roth, I. 1984. Stratification of tropical forest as seen in leaf structure. W. Junk Publ. The Netherlands, Boston. 522 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877805&pid=S0252-8274200900010000300026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">27. Roth, I. 1992. Leaf structure: coastal vegetation and mangroves of Venezuela. Gebr. Borntraeger, Berlin, Germany. 172 p. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877806&pid=S0252-8274200900010000300027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">28. Ruiz-Zapata, T. 2002. Capparaceae del Parque Nacional Henri Pittier, Venezuela. Ernstia 12(3 y 4): 137-172. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877807&pid=S0252-8274200900010000300028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20">29. Ruiz-Zapata, T and H. H. Iltis. 1998. Capparaceae. </font><i> <font COLOR="#231f20">In</font></i><font COLOR="#231f20">: P.E. Berry, B.K. Holst </font></font><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">and K. Gatskrevych (Eds.). Flora of the Venezuela Guayana. Missouri Botanical Garden Press. St. Louis. 4: 132-157. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877808&pid=S0252-8274200900010000300029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> 30. Ruiz-Zapata, T. 2005. </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis </font></i><font COLOR="#231f20">L. (Capparoideae-Capparaceae) en el estado </font></font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Trujillo, Venezuela. Ernstia 15(1-4): 13-26. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877809&pid=S0252-8274200900010000300030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">31. Schlichting, C. 2002. Phenotypic plasticity in plants. Pl. Spec. Biol. 17: 85-88. </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877810&pid=S0252-8274200900010000300031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">32. Standley, L. 1986. Variation of stomatal distribution in </font><i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20">Carex aquatilis </font> </i><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> (Cyperaceae). Amer. J. Bot. 73: 1393-1399.</font><font face="Verdana" size="2"> </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877811&pid=S0252-8274200900010000300032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 33. Strauss-Debenedetti, S. and G.P. Berlyn. 1994. Leaf anatomical responses to</font><font face="Verdana" size="2"> </font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> light in five tropical Moraceae of differente successional status. Amer. J.</font><font face="Verdana" size="2"> </font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Bot. 81(12): 1582-1591.</font><font face="Verdana" size="2"> </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877812&pid=S0252-8274200900010000300033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 34. Solederer, H. 1908. Systematic anatomy of the dicotyledons. Vol. I y II. Clarendon</font><font face="Verdana" size="2"> </font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> Press. Oxford. 1183 pp.</font><font face="Verdana" size="2"> </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877813&pid=S0252-8274200900010000300034&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 35. Sultan, S. 1995. Phenotypic plasticity and plant adaptation. Acta Botanical Neerl.</font><font face="Verdana" size="2"> </font> <font face="Verdana" size="2" COLOR="#231f20"> 44: 363-383.</font><font face="Verdana" size="2"> </font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877814&pid=S0252-8274200900010000300035&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify" style="line-height: 100%"><font face="Verdana" size="2"><font COLOR="#231f20"> 36. Valerio, R., I.G. de Franco y L.J. Cumana. 1998. Anatomía foliar comparada de</font> <font COLOR="#231f20">dos subespecies de </font><i><font COLOR="#231f20">Capparis flexuosa </font></i><font COLOR="#231f20">L. (Capparidaceae). Saber 10(2):7-13. </font>  </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=2877815&pid=S0252-8274200900010000300036&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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