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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación toxicológica de suelos contaminados con petróleos nuevo e intemperizado mediante ensayos con leguminosas]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Toxicological studies enable to identify those plants with the highest sensibility to low concentrations of soil pollutants. Leguminous plants have extremely sensible organs and physiological responses to low concentrations of oil in the soil. The object of this study was to assess and explain the response in terms of growth, total biomass, number of nodules and presence/absence of leghaemoglobin in the nodules of four different leguminous plants at four different concentrations of oil under two conditions: new oil, recently extracted, or weathered oil, exposed to the environment for >20 years. Two phytotoxicity assays were carried out under greenhouse conditions. The first involved «wild chipilín» plants (Crotalaria sp) for 120 days with a 1×5 factorial arrangement and a random design with four replicates per treatment, testing oil concentrations (in mg·kg-1 of total petroleum hydrocarbons (TPH), dry weight) of 150 (control soil), 7500, 25000, 50000 (new oil) and 79457 (weathered oil). The second assay lasted 150 days, testing plants of "dormilona» (Mimosa sp), «guaje» (Leucaena sp) and «zarza» (Mimosa pigra), in a 3×5 factorial arrangement, at random with four replicates. The concentrations tested were 150, 50000, 79457, 100000 and 150000 mg·kg-1 TPH, dry weight. Statistically significant differences were found in all variables, being negatively associated to the presence of oil in soil. Wild chipilín was the most sensitive species to oil exposure, better showing its phytotoxicity, so that it could be used as a phytoindicative species of oil-polluted soil. The number of nodules containing leghaemoglobin was the most sensitive indicator of oil’s phytotoxic effect.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Os estudos toxicológicos permitem identificar as espécies vegetais mais sensíveis a concentrações baixas de contaminantes no solo. As leguminosas são plantas com órgãos e resposta fisiológica; sensíveis a concentrações baixas de petróleo no solo. O objetivo do presente estudo foi avaliar e explicar a resposta em crescimento, biomassa total, número de nódulos e na ausência/ presença de leghemoglobina nos nódulos de quatro leguminosas a diferentes concentrações de petróleo novo (recém extraído) ou intemperizado (exposto ao ambiente por mais de 20 anos). Realizaram-se dois ensaios de fitotoxicidade em invernadeiro. O primeiro com plantas de "guizo-de-cascavel" ou "xiquexique" (Crotalaria sp) durante 120 dias com arranjo fatorial 1×5 e desenho ao acaso com quatro repetições por tratamento, com concentrações de petróleo de 150 (só testemunha), 7.500, 25.000, 50.000 (novo) e 79.457 (intemperizado) mg·kg-1 de hidrocarbonetos totais do petróleo (HTP), base seca. O segundo ensaio foi durante 150 dias, com Jurema de Imbira (Mimosa sp), leucena (Leucaena sp) e "malícia-de-boi" ou "Jiquiri Grande" (Mimosa pigra) num arranjo fatorial 3×5 em um desenho ao acaso com quatro repetições, e concentrações de 150, 50.000, 79.457, 100.000 e 150.000 mg·kg-1 de HTP, base seca. Houve diferenças estatísticas significativas em todas as variáveis avaliadas, que se associaram negativamente com a presença de petróleo no solo. «Guizo-de-cascavel» ou «xiquexique» foi a planta mais sensível à exposição ao petróleo e evidenciou melhor sua fitotoxicidade, pelo que poderia ser utilizada como espécie fitoindicadora de solos contaminados com petróleo. O número de nódulos com leghemoglobina foi o indicador mais sensível para medir o efeito fitotóxico do petróleo.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B><FONT SIZE=4>    <P align="center"><font face="Times New Roman" size="4"><span style="text-transform: capitalize">&nbsp;EVALUACI&Oacute;N TOXICOL&Oacute;GICA DE SUELOS CONTAMINADOS CON PETR&Oacute;LEOS NUEVO E INTEMPERIZADO MEDIANTE ENSAYOS CON LEGUMINOSAS</span></font></P>     <P align="justify">&nbsp;</P> </FONT>     <P align="center"><font size="3">Mar&iacute;a del Carmen Rivera-Cruz, Antonio Trujillo-Narc&iacute;a, Martha Aurora Miranda de la Cruz y Eduardo Maldonado Ch&aacute;vez</font></P> <FONT SIZE=4>     <P align="justify">&nbsp;</P> </FONT> </B>     <P align="justify">Mar&iacute;a del Carmen Rivera-Cruz. <B>Ingeniero Agr&oacute;nomo, Colegio Superior de Agricultura Tropical (CSAT), C&aacute;rdenas, Tabasco, M&eacute;xico. Maestr&iacute;a y Doctorado en Ciencias en Edafolog&iacute;a, Colegio de Postgraduados, Montecillo, M&eacute;xico. Profesor Investigador, Colegio de Postgraduados, Campus Tabasco, M&eacute;xico. Direcci&oacute;n: Perif&eacute;rico Carlos A. Molina s/n km. 3.5, H. C&aacute;rdenas, Tabasco, M&eacute;xico. e-mail: mariari@colpos.mx</P> </B>    <P align="justify">Antonio Trujillo-Narc&iacute;a. <B>Ingeniero Agr&oacute;nomo, CSAT, M&eacute;xico. Maestr&iacute;a en Ciencias en Edafolog&iacute;a, Colegio de Postgraduados, Montecillo, M&eacute;xico. Estudiante de Doctorado en Ecolog&iacute;a y Desarrollo Sustentable, El Colegio de la Frontera Sur, Unidad Villahermosa, Tabasco, M&eacute;xico.</P> </B>    <P align="justify">Martha Aurora Miranda de la Cruz. <B>Estudiante de Ingenier&iacute;a Qu&iacute;mica Petrolera. Universidad Popular de la Chontalpa. H. C&aacute;rdenas, Tabasco, M&eacute;xico.</P> </B>    <P align="justify">Eduardo Maldonado Ch&aacute;vez. <B>Bi&oacute;logo, Universidad Aut&oacute;noma de Colima, M&eacute;xico. Estudiante de Maestr&iacute;a en Producci&oacute;n Agroalimentaria en el Tr&oacute;pico, Colegio de Postgraduados, Campus Tabasco, M&eacute;xico.</P>      <P align="justify">Resumen</P>  </B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify">Los estudios toxicol&oacute;gicos permiten identificar las especies vegetales m&aacute;s sensibles a concentraciones bajas de contaminantes en el suelo. Las leguminosas son plantas con &oacute;rganos y respuesta fisiol&oacute;gica sensibles a concentraciones bajas de petr&oacute;leo en el suelo. El objetivo del presente estudio fue evaluar y explicar la respuesta en crecimiento, biomasa total, n&uacute;mero de n&oacute;dulos y en ausencia/ presencia de leghemoglobina en los n&oacute;dulos de cuatro leguminosas a diferentes concentraciones de petr&oacute;leos nuevo (reci&eacute;n extra&iacute;do) o intemperizado (expuesto al ambiente por m&aacute;s de 20 a&ntilde;os). Se realizaron dos ensayos de fitotoxicidad en invernadero. El primero con plantas de chipil&iacute;n silvestre (Crotalaria sp) durante 120d con arreglo factorial 1×5 y dise&ntilde;o al azar con cuatro repeticiones por tratamiento, con concentraciones de petr&oacute;leo de 150 (suelo testigo), 7500, 25000, 50000 (nuevo) y 79457 (intemperizado) mg·kg<sup>-1</sup> de hidrocarburos totales del petr&oacute;leo (HTP), base seca. El segundo ensayo fue durante 150d, con dormilona (Mimosa sp), guaje (Leucaena sp) y zarza (Mimosa pigra) en un arreglo factorial 3×5 en un dise&ntilde;o al azar con cuatro repeticiones, y concentraciones de 150, 50000, 79457, 100000 y 150000 mg·kg<sup>-1</sup> de HTP, base seca. Hubo diferencias estad&iacute;sticas significativas en todas las variables evaluadas, que se asociaron negativamente con la presencia de petr&oacute;leo en el suelo. Chipil&iacute;n silvestre fue la planta m&aacute;s sensible a la exposici&oacute;n al petr&oacute;leo y evidenci&oacute; mejor su fitotoxicidad, por lo que podr&iacute;a ser utilizada como especie fitoindicadora de suelos contaminados con petr&oacute;leo. El n&uacute;mero de n&oacute;dulos con leghemoglobina fue el indicador m&aacute;s sensible para medir el efecto fitot&oacute;xico del petr&oacute;leo.</P> <B>     <P align="justify">Summary</P>  </B>    <P align="justify">Toxicological studies enable to identify those plants with the highest sensibility to low concentrations of soil pollutants. Leguminous plants have extremely sensible organs and physiological responses to low concentrations of oil in the soil. The object of this study was to assess and explain the response in terms of growth, total biomass, number of nodules and presence/absence of leghaemoglobin in the nodules of four different leguminous plants<B> </B>at four different concentrations of oil under two conditions: new oil, recently extracted, or weathered oil, exposed to the environment for &gt;20 years. Two<B> </B>phytotoxicity assays were carried out under greenhouse conditions. The first involved «wild chipil&iacute;n» plants (Crotalaria sp) for 120 days with a 1×5 factorial arrangement and a random design with four replicates per treatment, testing oil concentrations (in mg·kg<sup>-1</sup> of total petroleum hydrocarbons (TPH), dry weight) of 150 (control soil), 7500, 25000, 50000 (new oil) and 79457 (weathered oil). The second assay lasted 150 days, testing plants of &quot;dormilona» (Mimosa sp), «guaje» (Leucaena sp) and «zarza» (Mimosa pigra), in a 3×5 factorial arrangement, at random with four replicates. The concentrations tested were 150, 50000, 79457, 100000 and 150000 mg·kg<sup>-1</sup> TPH, dry weight. Statistically significant differences were found in all variables, being negatively associated to the presence of oil in soil. Wild chipil&iacute;n was the most sensitive species to oil exposure, better showing its phytotoxicity, so that it could be used as a phytoindicative species of oil-polluted soil. The number of nodules containing leghaemoglobin was the most sensitive indicator of oil’s phytotoxic effect. </P> <B>     <P align="justify">Resumo</P>  </B>    <P align="justify">Os estudos toxicol&oacute;gicos permitem identificar as esp&eacute;cies vegetais mais sens&iacute;veis a concentra&ccedil;&otilde;es baixas de contaminantes no solo. As leguminosas s&atilde;o plantas com &oacute;rg&atilde;os e resposta fisiol&oacute;gica; sens&iacute;veis a concentra&ccedil;&otilde;es baixas de petr&oacute;leo no solo. O objetivo do presente estudo foi avaliar e explicar a resposta em crescimento, biomassa total, n&uacute;mero de n&oacute;dulos e na aus&ecirc;ncia/ presen&ccedil;a de leghemoglobina nos n&oacute;dulos de quatro leguminosas a diferentes concentra&ccedil;&otilde;es de petr&oacute;leo novo (rec&eacute;m extra&iacute;do) ou intemperizado (exposto ao ambiente por mais de 20 anos). Realizaram-se dois ensaios de fitotoxicidade em invernadeiro. O primeiro com plantas de &quot;guizo-de-cascavel&quot; ou &quot;xiquexique&quot; (Crotalaria sp) durante 120 dias com arranjo fatorial 1×5 e desenho ao acaso com quatro repeti&ccedil;&otilde;es por tratamento, com concentra&ccedil;&otilde;es de petr&oacute;leo de 150 (s&oacute; testemunha), 7.500, 25.000, 50.000 (novo) e 79.457 (intemperizado) mg·kg<sup>-1</sup> de hidrocarbonetos totais do petr&oacute;leo (HTP), base seca. O segundo ensaio foi durante 150 dias, com Jurema de Imbira (Mimosa sp), leucena (Leucaena sp) e &quot;mal&iacute;cia-de-boi&quot; ou &quot;Jiquiri Grande&quot; (Mimosa pigra) num arranjo fatorial 3×5 em um desenho ao acaso com quatro repeti&ccedil;&otilde;es, e concentra&ccedil;&otilde;es de 150, 50.000, 79.457, 100.000 e 150.000 mg·kg<sup>-1</sup> de HTP, base seca. Houve diferen&ccedil;as estat&iacute;sticas significativas em todas as vari&aacute;veis avaliadas, que se associaram negativamente com a presen&ccedil;a de petr&oacute;leo no solo. «Guizo-de-cascavel» ou «xiquexique» foi a planta mais sens&iacute;vel &agrave; exposi&ccedil;&atilde;o ao petr&oacute;leo e evidenciou melhor sua fitotoxicidade, pelo que poderia ser utilizada como esp&eacute;cie fitoindicadora de solos contaminados com petr&oacute;leo. O n&uacute;mero de n&oacute;dulos com leghemoglobina foi o indicador mais sens&iacute;vel para medir o efeito fitot&oacute;xico do petr&oacute;leo.</P>  <B>    <P align="justify">PALABRAS CLAVE / <I>Crotalaria</I> / Hidrocarburos/ Leghemoglobina / <I>Leucaena</I> / <I>Mimosa / </I>Nodulaci&oacute;n /</P> </B>    <P align="justify"><font size="3">Recibido: 10/11/2004. Modificado: 27/04/2005. Aceptado: 29/04/2005.</font></P> <I>     <P align="justify">&nbsp;</P> </I>    <P align="justify">Los derrames de petr&oacute;leo originan la acumulaci&oacute;n de hidrocarburos en el suelo. Los derrames pueden ocurrir por rompimiento de oleoductos, accidentes de veh&iacute;culos que transportan petr&oacute;leo en tanques en las carreteras, por derrames de petr&oacute;leo de los tanques de almacenamiento o por da&ntilde;os a los oleoductos durante el uso de maquinaria en &aacute;reas agr&iacute;colas (Cha&icirc;neau <I>et al</I>., 2003; Rivera-Esparza y Dendooven, 2004). En las regiones tropicales del sureste de M&eacute;xico la contaminaci&oacute;n del suelo es originada por derrames de desechos de hidrocarburos del petr&oacute;leo de las presas o fosas de los pozos petroleros, por filtraci&oacute;n de agua aceitosa a trav&eacute;s de los bordos y fondos de las presas, por desbordamiento de las presas de los pozos petroleros y por rotura de los oleoductos, todo lo cual aumenta debido a la corrosi&oacute;n de los oleoductos y a la dispersi&oacute;n a trav&eacute;s de los escurrimientos superficiales del agua de la lluvia (Trujillo <I>et al</I>., 1995; Rivera-Cruz, 2004). El petr&oacute;leo produce da&ntilde;os en las plantas por el potencial t&oacute;xico de los hidrocarburos (Pothuluri y Cerniglia, 1994), adem&aacute;s el contacto directo con las plantas origina quemaduras y la reducci&oacute;n de la fotos&iacute;ntesis debido al recubrimiento de las hojas y tallos con petr&oacute;leo (Freedman, 1995). Proporciones bajas de petr&oacute;leo en el suelo estimulan el crecimiento de plantas de algod&oacute;n (Plice, 1948) porque aumenta el contenido de carbono. La exposici&oacute;n a concentraciones altas de petr&oacute;leo (Ortiz, 2001; Rivera-Cruz y Trujillo-Narc&iacute;a, 2004) inhibe el crecimiento vegetativo y reduce la biomasa vegetal de pastos (<I>Echinochloa polystachya</I> y <I>Brachiaria mutica</I>) y de ciper&aacute;ceas (<I>Cyperus</I> spp). El petr&oacute;leo en el suelo puede eliminar la vegetaci&oacute;n debido a sus propiedades fitot&oacute;xicas (Wetzel y Werner, 1995; Cha&icirc;neau <I>et al</I>., 1997, 2000), aunque la intensidad del da&ntilde;o depende del tipo de petr&oacute;leo.</P>     <P align="justify">El petr&oacute;leo ligero es m&aacute;s t&oacute;xico que los petr&oacute;leos mediano y pesado, debido a que tiene grandes cantidades de hidrocarburos saturados y contenidos bajos de compuestos polares (Dorn <I>et al</I>., 1998). Estudios previos con la prueba LC50 identificaron que las leguminosas son m&aacute;s sensibles que las gram&iacute;neas y ciper&aacute;ceas a la exposici&oacute;n al petr&oacute;leo y tienen los &iacute;ndices m&aacute;s altos de fitotoxicidad por efecto de la toxicidad aguda (Rivera-Cruz y Trujillo-Narc&iacute;a, 2004). En el presente estudio se propone que las leguminosas pueden ser utilizadas como bioindicadoras de la contaminaci&oacute;n del suelo causada por derrames de petr&oacute;leos nuevo, aquel reci&eacute;n extra&iacute;do de un yacimiento a trav&eacute;s de un pozo petrolero, o por petr&oacute;leo intemperizado, aquel expuesto a las condiciones ambientales en la superficie del suelo al menos durante 20 a&ntilde;os, y que tambi&eacute;n pueden utilizarse para la evaluaci&oacute;n de la eficiencia de la descontaminaci&oacute;n final de suelos de acuerdo con la normativa ambiental mexicana (Diario Oficial, 2004). Los objetivos fueron: a) evaluar y explicar el efecto de diferentes concentraciones de petr&oacute;leos nuevo e intemperizado en el crecimiento, en la biomasa total, en el n&uacute;mero de n&oacute;dulos y en la presencia/ausencia de leghemoglobina del n&oacute;dulo; b) encontrar especies fitoindicadoras de la toxicidad del petr&oacute;leo en el suelo; y c) identificar las variables m&aacute;s sensibles de la planta a la toxicidad del petr&oacute;leo en el suelo.</P>  <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify">Materiales y M&eacute;todos</P> </B>     <P align="justify">Se efectuaron tres actividades secuenciales: i) Trabajo de campo en dos &aacute;reas, una con suelo con concentraci&oacute;n baja de petr&oacute;leo (150mg·kg<sup>-1</sup> de HTP) y posiblemente biog&eacute;nico (&Aacute;rea 1), y la otra con suelo severamente contaminado con petr&oacute;leo mediano por derrame cr&oacute;nico de petr&oacute;leo por roturas de oleoductos al menos durante los &uacute;ltimos 20 a&ntilde;os (&Aacute;rea 2). Se utiliz&oacute; muestreo al azar para la colecta de muestras simples de suelo de acuerdo con la normativa oficial mexicana (Diario Oficial, 2004). Se colectaron cinco muestras simples del horizonte superficial (0,0-0,30m de profundidad) del suelo en las dos &aacute;reas. Se efectu&oacute; la colecta de semillas de leguminosas herb&aacute;ceas y arbustivas localizadas en el &Aacute;rea 2 y en sitios aleda&ntilde;os a &eacute;sta. ii) An&aacute;lisis de las propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas de los suelos, y cuantificaci&oacute;n de los hidrocarburos totales del petr&oacute;leo (HTP) de los suelos. iii) Ensayos de fitotoxicidad de los petr&oacute;leos nuevo e intemperizado en plantas de cuatro leguminosas (<a href="#fig1">Figura 1</a>).</P>      <P align="center"><a name="fig1"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v30n6/art05fig1.jpg" width=293 height=631></a></P>  <I>    
<P align="justify">Trabajo de campo</P> </I>     <P align="justify">El estudio se realiz&oacute; en un terreno de 6,25ha de un Gleysol antr&aacute;quico (ISSS-ISRIC-FAO, 1998) localizado en las coordenadas 18º04'54"N y 94º02'31"O, en el ejido Jos&eacute; N. Rovirosa, municipio de Huimanguillo, estado de Tabasco, M&eacute;xico. El clima es c&aacute;lido h&uacute;medo con abundantes lluvias en Verano, con 2240mm de precipitaci&oacute;n anual y 25,8ºC de temperatura media anual (INEGI, 2001). El uso del suelo en el &Aacute;rea 1 es cultivo de pasto para la ganader&iacute;a bovina, la especie dominante es el pasto alem&aacute;n (<I>Echinochloa polystachya</I>) con 95% de cobertura, y no se encontraron leguminosas. El &Aacute;rea 2 tiene mayor diversidad vegetal, las especies tulillo (<I>Cyperus articulatus</I>), espada&ntilde;o (<I>Typha</I> sp.) y ceboll&iacute;n (<I>Cyperus</I> sp.) son dominantes con 20, 30 y 40% de cobertura, respectivamente. La leguminosa zarza (<I>Mimosa pigra</I>) tiene una cobertura de 2%. Se realiz&oacute; la colecta de suelo superficial (0,0-0,30m de profundidad) en las dos &aacute;reas. El suelo para el an&aacute;lisis de los HTP se colect&oacute; con barrena tipo auger de acero inoxidable, se colectaron muestras simples y se introdujeron las muestras en frascos nuevos de vidrio de 0,25 litros de capacidad. Las muestras se preservaron a 4ºC, de acuerdo con la normativa oficial mexicana (Diario Oficial, 2002a). El suelo empleado para los ensayos de fitotoxicidad se colect&oacute; con pala recta en cada sitio y se introdujo en recipientes met&aacute;licos. La colecta de semillas maduras de la zarza (<I>Mimosa</I> <I>pigra</I>) se realiz&oacute; de arbustos localizados en el &aacute;rea 2, tambi&eacute;n se colectaron en &aacute;reas aleda&ntilde;as con suelos no contaminados semillas maduras de las leguminosas chipil&iacute;n silvestre (<I>Crotalaria</I> sp.), dormilona (<I>Mimosa</I> sp.) y guaje (<I>Leucaena </I>sp.).</P>  <I>    <P align="justify">An&aacute;lisis f&iacute;sico y qu&iacute;mico</P> </I>     <P align="justify">Se determinaron 12 propiedades f&iacute;sicas y qu&iacute;micas del suelo (<a href="#tab1">Tabla I</a>). Los m&eacute;todos anal&iacute;ticos que se reportan en la tabla son los indicados en la norma oficial mexicana NOM-021-RECNAT-2000 (Diario Oficial, 2002b). La concentraci&oacute;n del petr&oacute;leo (cuantificado como HTP) se determin&oacute; con el m&eacute;todo anal&iacute;tico EPA 418.1 (EPA, 1986), encontr&aacute;ndose que el suelo del &Aacute;rea 1 tiene 150mg·kg<sup>-1</sup> y el suelo del &Aacute;rea 2 tiene 79457mg·kg<sup>-1</sup> en base seca. El suelo del &Aacute;rea 2 est&aacute; contaminado con HTP, rebasa las concentraciones m&aacute;ximas permisibles para los suelos con usos agr&iacute;cola (1000mg·kg<sup>-1</sup> HTP), de conservaci&oacute;n (1000mg·kg<sup>-1</sup> HTP) y para uso industrial (3000mg·kg<sup>-1</sup> HTP) seg&uacute;n la normativa ambiental mexicana vigente (Diario Oficial, 2002a). </P>      <P align="center"><a name="tab1"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v30n6/art05fig2.jpg" width=580 height=377></a></P>  <I>    
<P align="justify">Ensayos de fitotoxicidad del petr&oacute;leo</P> </I>     <P align="justify">De junio a diciembre del 2003 se realizaron en invernadero dos ensayos de fitotoxicidad en instalaciones del Campus Tabasco del Colegio de Postgraduados, localizado en H. C&aacute;rdenas, Tabasco, M&eacute;xico. Los ensayos se llevaron a cabo con las semillas recolectadas de las cuatro leguminosas, las cuales se establecieron en suelo secado bajo sombra, molido y tamizado en malla de 0,5cm de abertura. Las semillas de <I>Leucaena</I> fueron escarificadas con agua caliente, durante 15min a 50ºC, mientras que las semillas de las otras tres especies no requirieron escarificaci&oacute;n para inducir la germinaci&oacute;n. Las semillas se sembraron a 1,0cm de profundidad en el suelo testigo y la humedad se mantuvo a capacidad de campo (30%). Los ensayos se realizaron con pl&aacute;ntulas de un mes de edad. El ensayo 1 se realiz&oacute; durante 120d con plantas de la leguminosa chipil&iacute;n silvestre, utilizando un arreglo factorial 1×5 en un dise&ntilde;o al azar con cuatro repeticiones por tratamiento; se evaluaron las concentraciones 150 (suelo testigo), 7500, 25000 y 50000mg·kg<sup>-1</sup> HTP de petr&oacute;leo nuevo y 79457mg·kg<sup>-1 </sup> HTP de petr&oacute;leo intemperizado, en base seca. Se utiliz&oacute; solamente esta concentraci&oacute;n de petr&oacute;leo intemperizado porque existen extensas &aacute;reas afectadas por derrames cr&oacute;nicos con esta concentraci&oacute;n promedio. El ensayo 2 se realiz&oacute; durante 150d con plantas de las leguminosas dormilona (<I>Mimosa </I>sp.), guaje (<I>Leucaena </I>sp.) y zarza (<I>Mimosa pigra</I>). Se aplic&oacute; un arreglo factorial 3×5 y un dise&ntilde;o completamente al azar con cuatro repeticiones por tratamiento. Se ensayaron las concentraciones de 150 (suelo testigo), 50000, 100000 y 150000mg·kg<sup>-1</sup> HTP de petr&oacute;leo nuevo y 79457mg·kg<sup>-1</sup> HTP de petr&oacute;leo intemperizado, en base seca. Las concentraciones de petr&oacute;leo nuevo en los dos ensayos se prepararon con suelo testigo (150mg·kg<sup>-1</sup> HTP) y las concentraciones se calcularon en base seca relaci&oacute;n peso-peso. El petr&oacute;leo nuevo se diluy&oacute; en diclorometano (Merck) que se adicion&oacute; en el suelo en relaci&oacute;n de volumen 1:1 y se mezcl&oacute; hasta lograr homogeneidad, dejando pasar posteriormente 24 horas para permitir la volatilizaci&oacute;n del diclorometano.</P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify">El procedimiento de diluci&oacute;n utilizado se realiz&oacute; de acuerdo con el protocolo Nº 208 de la Organizaci&oacute;n para la Cooperaci&oacute;n y Desarrollo Econ&oacute;mico (OECD, 1984), que se refiere a pruebas de toxicidad aguda en plantas. Se utilizaron recipientes de vidrio &aacute;mbar con capacidad de 1,8 litros y cada recipiente fue una unidad experimental. Se trasplantaron en cada recipiente dos pl&aacute;ntulas de 8cm de altura, 15d despu&eacute;s se elimin&oacute; una y qued&oacute; una pl&aacute;ntula en cada unidad experimental. Se aplic&oacute; riego cada 24h y la humedad se mantuvo a capacidad de campo (30%). Las variables evaluadas fueron crecimiento vegetativo (altura) medida cada 30d; biomasa seca total (secada en estufa a 70ºC durante 48h), n&uacute;mero de n&oacute;dulos y la presencia/ausencia de leghemoglobina en los n&oacute;dulos. Estas tres variables se midieron a los 120d en chipil&iacute;n silvestre, que tiene un ciclo vegetativo m&aacute;s corto, y a los 150d en dormilona, guaje y zarza. La cosecha de la biomasa y el estudio de los n&oacute;dulos se realiz&oacute; el 9 de diciembre del 2003. La presencia de n&oacute;dulos viables (con leghemoglobina) se determin&oacute; de manera visual (presencia de color marr&oacute;n-rojizo) seg&uacute;n Weaver y Frederick (1982).</P>  <I>    <P align="justify">An&aacute;lisis estad&iacute;stico</P> </I>     <P align="justify">Se aplic&oacute; el procedimiento GLM para el an&aacute;lisis estad&iacute;stico y se utiliz&oacute; la prueba de Tukey para determinar diferencias estad&iacute;sticas de las medias de los tratamientos (p&lt;0,05). Asimismo se aplic&oacute; an&aacute;lisis de correlaci&oacute;n (SAS, 1989). </P>  <I>    <P align="justify">&Iacute;ndices de fitotoxicidad</P> </I>     <P align="justify">El &iacute;ndice de fitotoxicidad representa la respuesta de la planta a la exposici&oacute;n al petr&oacute;leo presente en el suelo. El m&eacute;todo para el c&aacute;lculo de los &iacute;ndices relativo de fitotoxicidad (IRF) y absoluto de fitotoxicidad (IAF) ha sido reportado por Rivera-Cruz y Trujillo-Narc&iacute;a (2004). Los IRF y los IAF m&aacute;s grandes representan mayor efecto fitot&oacute;xico, los m&aacute;s peque&ntilde;os significan menor efecto fitot&oacute;xico. </P>  <B>    <P align="justify">Resultados y Discusi&oacute;n</P> </B> <I>    <P align="justify">Crecimiento vegetativo</P> </I>     <P align="justify">El crecimiento vegetativo de las cuatro leguminosas mostr&oacute; diferencias estad&iacute;sticas significativas (p&lt;0,05) entre las medias de los tratamientos (<a href="#tab2">Tabla II</a>). La altura de la planta fue severamente afectada por las tres concentraciones m&aacute;s altas de los petr&oacute;leos intemperizado (79457mg·kg<sup>-1</sup> HTP) y nuevo (100000 y 150000mg·kg<sup>-1</sup> de HTP). La mayor reducci&oacute;n en la altura se present&oacute; en las leguminosas dormilona y zarza, donde las plantas no lograron sobrevivir al efecto de la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de petr&oacute;leo (150000mg·kg<sup>-1</sup> HTP; <a href="#tab2"> Tabla II</a>); en cambio la planta de guaje (<I>Leucaena</I> sp.) fue menos sensible a la exposici&oacute;n de la concentraci&oacute;n m&aacute;s alta de petr&oacute;leo nuevo, ya que sobrevivi&oacute; a su efecto y creci&oacute; un poco al pasar de 8cm de altura al momento inicial a 13cm despu&eacute;s de 120d de exposici&oacute;n. </P>      <P align="center"><a name="tab2"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v30n6/art05fig3.jpg" width=580 height=551></a></P>      
<P align="justify">El chipil&iacute;n silvestre fue expuesto por menos tiempo (120d) que las otras tres especies (150d) porque tiene un ciclo vegetativo m&aacute;s corto. Tambi&eacute;n presenta la misma respuesta a&uacute;n bajo la menor concentraci&oacute;n de petr&oacute;leo y fue la especie m&aacute;s sensible al petr&oacute;leo en el suelo. El patr&oacute;n de crecimiento de las cuatro leguminosas en suelo testigo fue de tipo sigmoidal (Salisbury y Ross, 2000) con pendiente acentuada (<a href="#fig2">Figura 2</a>). Aunque con menor pendiente, igual respuesta evidenci&oacute; el tratamiento con 50000mg·kg<sup>-1</sup> HTP en guaje y zarza, lo que sugiere que poseen mecanismos de adaptaci&oacute;n para condiciones de suelos contaminados con petr&oacute;leo. La planta de chipil&iacute;n silvestre (<a href="#fig2">Figura 2d</a>) redujo su crecimiento seis veces por efecto de 7500mg·kg<sup>-1</sup> HTP, el da&ntilde;o fue absoluto por el efecto de la concentraci&oacute;n 50000mg·kg<sup>-1</sup> HTP, que elimin&oacute; la planta. Hern&aacute;ndez (1997) encontr&oacute; que las plantas de frijol negro (<I>Phaseolus vulgaris</I>) son susceptibles al queroseno y su desarrollo fue afectado a medida que aument&oacute; la concentraci&oacute;n de queroseno. Esta respuesta fitot&oacute;xica fue similar a la obtenida en los ensayos con pastos (<I>Brachiaria mutica</I> y <I>Echinochloa polystachya</I>) y con dos ciper&aacute;ceas (<I>Cyperus</I> spp.) realizados por Rivera-Cruz y Trujillo-Narc&iacute;a (2004) hasta con 150000mg·kg<sup>-1</sup> HTP. </P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><a name="fig2"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v30n6/art05fig4.jpg" WIDTH=294 HEIGHT=1128></a></P>  <I>    
<P align="justify">Producci&oacute;n de biomasa total </P> </I>     <P align="justify">La mayor producci&oacute;n de biomasa seca total en las cuatro leguminosas se encontr&oacute; en el suelo testigo (<a href="#tab2">Tabla II</a>). Las medias de los tratamientos tuvieron diferencias estad&iacute;sticas significativas (p&lt;0,05). La especie m&aacute;s sensible fue el chipil&iacute;n silvestre que disminuy&oacute; 6 veces la producci&oacute;n de biomasa por el efecto de 7500mg·kg<sup>-1</sup> HTP. Las dos especies m&aacute;s tolerantes fueron las leguminosas guaje y zarza donde la concentraci&oacute;n 50000mg·kg<sup>-1</sup> HTP redujo la biomasa total en 31 y 25%, respectivamente. El efecto fue directamente proporcional con el aumento de la concentraci&oacute;n de petr&oacute;leo. Debido a la mayor sensibilidad de la planta de chipil&iacute;n silvestre, cuya biomasa disminuy&oacute; en concentraciones de 7500mg·kg<sup>-1</sup> HTP de petr&oacute;leo crudo, &eacute;sta puede ser utilizada como especie indicadora de concentraciones bajas de hidrocarburos en el suelo. La producci&oacute;n de biomasa de plantas de frijol negro (<I>Phaseolus vulgaris</I>) tambi&eacute;n disminuy&oacute; significativamente con el incremento de un complejo de hidrocarburos (Hern&aacute;ndez, 1997).</P>  <I>    <P align="justify">Nodulaci&oacute;n</P> </I>     <P align="justify">El n&uacute;mero de n&oacute;dulos tuvo diferencias estad&iacute;sticas (p&lt;0,05) por el efecto del petr&oacute;leo. La nodulaci&oacute;n fue inhibida en las cuatro leguminosas, la disminuci&oacute;n del n&uacute;mero de los n&oacute;dulos aument&oacute; con la mayor concentraci&oacute;n de petr&oacute;leo (<a href="#tab2">Tabla II</a>). La especie m&aacute;s sensible fue el chipil&iacute;n silvestre, que no form&oacute; n&oacute;dulos cuando fue expuesta a 500000mg·kg<sup>-1</sup> HTP. El guaje fue la especie m&aacute;s tolerante a la exposici&oacute;n del petr&oacute;leo, ya que form&oacute; n&oacute;dulos en concentraciones altas de petr&oacute;leo nuevo (100000mg·kg<sup>-1</sup> HTP) e intemperizado (79457mg·kg<sup>-1</sup> HTP). La zarza, aunque tuvo menor infecci&oacute;n de rizobios, tambi&eacute;n fue tolerante al petr&oacute;leo y la reducci&oacute;n de los n&oacute;dulos fue menos acentuada que en las otras tres leguminosas. Se ha reportado (Alexander, 1994; Atlas y Bartha, 2002) que bajo condiciones favorables en el suelo la bacteria <I>Rhizobium</I> puede invadir los pelos radicales, que sufren una deformaci&oacute;n o enroscamiento bajo la influencia de algunos productos bacterianos. De esta manera puede iniciar la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos y desarrolla la actividad fijadora de nitr&oacute;geno a trav&eacute;s de los bacteroides de <I>Rhizobium</I> (Conn <I>et al</I>., 2002). Las c&eacute;lulas de los n&oacute;dulos donde residen los bacteroides contienen un pigmento llamado leghemoglobina, que se une reversiblemente al ox&iacute;geno. La leghemoglobina oxigenada transporta el ox&iacute;geno en condiciones de baja tensi&oacute;n de ox&iacute;geno libre a los sitios de fosforilaci&oacute;n oxidativa en el bacteroide, donde se utiliza durante la producci&oacute;n de ATP (Conn <I>et al</I>., 2002).</P>     <P align="justify">Las condiciones del suelo tienen un efecto marcado sobre los rizobios, pudiendo afectar tanto la supervivencia como la capacidad de infecci&oacute;n de los pelos radicales (Alexander, 1994). Algunos rizobios son sensibles a pH bajo y no pueden establecer infecciones en suelos &aacute;cidos. Esta restricci&oacute;n no influy&oacute; en la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos de las cuatro leguminosas en el suelo sin petr&oacute;leo a pesar de que el pH es fuertemente &aacute;cido y que el contenido de nitrato es bajo (<a href="#tab1">Tabla I</a>). Suominen <I>et al.</I> (2000) tambi&eacute;n identificaron la misma respuesta en suelos contaminados con benceno, tolueno y xileno, y encontraron que concentraciones mayores de 500ppm de m-toluato en el suelo bloquean la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos en la leguminosa <I>Galega orientalis</I>. Experimentos efectuados por Wetzel y Werner (1995) con plantas de alfalfa (<I>Medicago sativa</I>), revelan que los hidrocarburos arom&aacute;ticos polic&iacute;clicos reducen la nodulaci&oacute;n antes de que ocurran da&ntilde;os visibles en la planta, y afectan la vitalidad del macrosimbionte y del microsimbionte. Adam y Duncan (2003) realizaron estudios de fitorremediaci&oacute;n con plantas de <I>Vicia sativa</I> en suelo contaminado con diesel; el n&uacute;mero de n&oacute;dulos por planta fue significativamente reducido en suelo contaminado con diesel, pero los n&oacute;dulos fueron m&aacute;s grandes y desarrollados que los correspondientes a las plantas en suelos sin diesel. Hern&aacute;ndez (1997) encontr&oacute; que el queroseno reduce el n&uacute;mero de n&oacute;dulos de plantas de frijol negro (<I>Phaseolus vulgaris</I>), e identific&oacute; que a los 55 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra la concentraci&oacute;n de 2500mg·kg<sup>-1 </sup> de queroseno origin&oacute; una reducci&oacute;n de 10 veces en el n&uacute;mero de n&oacute;dulos respecto a las plantas establecidas en suelo testigo. Las plantas presentaron un estado similar al estr&eacute;s h&iacute;drico que origin&oacute; la formaci&oacute;n de pocos n&oacute;dulos, la toxicidad y la inducci&oacute;n de un estado de hidrofobia en las ra&iacute;ces origina efectos similares a los del estr&eacute;s h&iacute;drico. A los 91 d&iacute;as despu&eacute;s de la siembra no hubo nodulaci&oacute;n en los diferentes tratamientos porque las plantas se encontraban en la fase de senescencia. Los resultados de Hern&aacute;ndez (1997) difieren con los de las cuatro leguminosas ya que todos los tratamientos sin petr&oacute;leo formaron numerosos n&oacute;dulos (<a href="#tab2">Tabla II</a>) a pesar que hab&iacute;an fructificado. Este resultado es positivo porque aumenta el periodo de fijaci&oacute;n biol&oacute;gica de nitr&oacute;geno.</P>  <I>    <P align="justify">Leghemoglobina</P> </I>     <P align="justify">Las c&eacute;lulas de los n&oacute;dulos donde residen los bacteroides contienen un pigmento llamado leghemoglobina, que se une reversiblemente al ox&iacute;geno. La leghemoglobina oxigenada transporta el ox&iacute;geno en condiciones de baja tensi&oacute;n de ox&iacute;geno libre a los sitios de fosforilaci&oacute;n oxidativa en el bacteroide, donde se utiliza durante la producci&oacute;n de ATP (Conn <I>et al</I>., 2002). Los n&oacute;dulos sanos en las leguminosas tienen color marr&oacute;n-rojizo debido a la presencia de iones de hierro y molibdeno en la leghemoglobina, que es una mol&eacute;cula presente en gran abundancia en el tejido central de todos los n&oacute;dulos fijadores de nitr&oacute;geno (Madigan <I>et al</I>., 1999; Atlas y Bartha, 2002). La exposici&oacute;n de la planta al suelo con petr&oacute;leo produjo da&ntilde;os cualitativos y cuantitativos en los n&oacute;dulos de las cuatro leguminosas, con diferencias estad&iacute;sticas significativas (p&lt;0,05). Con excepci&oacute;n del suelo no contaminado (testigo), el petr&oacute;leo en el suelo redujo el tama&ntilde;o de los n&oacute;dulos y tambi&eacute;n la presencia de la leghemoglobina en el n&oacute;dulo (<a href="#tab2">Tabla II</a>). Todos los n&oacute;dulos de las leguminosas chipil&iacute;n silvestre, dormilona y zarza establecidos en suelo no contaminado tuvieron leghemoglobina, fueron sanos y con capacidad para realizar el proceso de nitrificaci&oacute;n; en cambio en el guaje (<I>Leucaena</I> sp.) el n&uacute;mero de n&oacute;dulos sanos con leghemoglobina disminuy&oacute; en 34% (116 a 77 n&oacute;dulos). El efecto del petr&oacute;leo en el n&oacute;dulo fue dr&aacute;stico por el aumento de la concentraci&oacute;n. Los n&oacute;dulos localizados en los pelos radicales de la leguminosa zarza establecida en suelo con 50000mg·kg<sup>-1</sup> HTP (<a href="#tab2">Tabla II</a>) fueron afectados por el petr&oacute;leo, ninguno tuvo el color rojo-marr&oacute;n t&iacute;pico de un n&oacute;dulo sano; el interior del n&oacute;dulo fue color blanco, lo que indica la ausencia de iones de hierro. Las concentraciones mayores de petr&oacute;leo nuevo (100000 y 150000mg·kg<sup>-1</sup>) y de petr&oacute;leo intemperizado (79457mg·kg<sup>-1 </sup> HTP) originaron da&ntilde;os m&aacute;s severos en el n&oacute;dulo. Tampoco se encontr&oacute; el color rojo-marr&oacute;n en el interior del n&oacute;dulo, ocurri&oacute; disminuci&oacute;n del tama&ntilde;o del n&oacute;dulo hasta cinco veces respecto al tama&ntilde;o del n&oacute;dulo en suelo sin petr&oacute;leo; la diferenciaci&oacute;n morfol&oacute;gica del n&oacute;dulo fue inhibida y todos los n&oacute;dulos evidenciaron fuertes da&ntilde;os necr&oacute;ticos.</P>  <I>    <P align="justify">&Iacute;ndices relativos y absolutos de fitotoxicidad</P> </I>     <P align="justify">La nodulaci&oacute;n fue la variable m&aacute;s afectada por el petr&oacute;leo en las cuatro leguminosas tras la exposici&oacute;n durante 120 y 150 d&iacute;as (<a href="#tab2">Tabla II</a>). Los &iacute;ndices relativos de fitotoxicidad de chipil&iacute;n silvestre (<a href="#fig3">Figura 3a</a>) y de dormilona y zarza (<a href="#fig3">Figura 3c</a>) fueron mayores en los tres suelos m&aacute;s contaminados con petr&oacute;leo nuevo (50000, 100000 y 150000mg·kg<sup>-1</sup> HTP), mientras que en el suelo con petr&oacute;leo intemperizado (79457mg·kg<sup>-1</sup> HTP), la nodulaci&oacute;n fue completamente inhibida. Estos resultados confirman que la formaci&oacute;n de n&oacute;dulos puede ser un indicador confiable utilizado en la evaluaci&oacute;n ecotoxicol&oacute;gica de suelos contaminados (Wetzel y Werner, 1995). Los &iacute;ndices absolutos de fitotoxicidad de las cuatro leguminosas (<a href="#fig3">Figuras 3b y d</a>) muestran que el efecto del petr&oacute;leo en el crecimiento y en la formaci&oacute;n de la biomasa vegetal es directamente proporcional con el incremento de la concentraci&oacute;n de petr&oacute;leo. El chipil&iacute;n silvestre fue la especie m&aacute;s sensible, ya que las concentraciones de 50000mg·kg<sup>-1</sup> de petr&oacute;leo nuevo y 79457mg·kg<sup>-1</sup> de petr&oacute;leo intemperizado inhibieron el crecimiento vegetativo y consecuentemente la formaci&oacute;n de biomasa (<a href="#fig3">Figura 3b</a>). Las leguminosas dormilona, guaje y zarza fueron m&aacute;s tolerantes al petr&oacute;leo; la inhibici&oacute;n del crecimiento y de la acumulaci&oacute;n de biomasa fue mayor por el efecto de la exposici&oacute;n de 150000mg·kg<sup>-1</sup> de petr&oacute;leo nuevo. La inhibici&oacute;n absoluta del crecimiento, de la formaci&oacute;n de tejido y de la nodulaci&oacute;n ocurri&oacute; en las cuatro leguminosas, dado que no sobrevivieron las plantas al efecto del petr&oacute;leo. La muerte de la planta no permiti&oacute; el c&aacute;lculo de ambos &iacute;ndices y el valor calculado se reporta en la <a href="#fig3"> Figura 3</a> con el s&iacute;mbolo <FONT FACE=Symbol>a</FONT>.</P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify">&nbsp;</P>      <P align="center"><a name="fig3"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v30n6/art05fig5.jpg" WIDTH=454 HEIGHT=600 align="center"></a></P>      
<P align="left">&nbsp;  <B> Conclusiones</P>  </B>     <P align="justify">1. El crecimiento vegetal, la biomasa, el n&uacute;mero de n&oacute;dulos y la formaci&oacute;n de leghemoglobina dentro del n&oacute;dulo fueron inhibidos por el efecto de los petr&oacute;leos nuevo e intemperizado en el suelo. Las mayores concentraciones de petr&oacute;leo produjeron mayores efectos fitot&oacute;xicos.</P>      <P align="justify">2. La falta de nodulaci&oacute;n, la m&iacute;nima diferenciaci&oacute;n morfol&oacute;gica de los n&oacute;dulos, la necrosis severa de los n&oacute;dulos y la ausencia de leghemoglobina fueron promovidas por concentraciones <FONT FACE=Symbol>³</FONT>50000mg·kg<sup>-1</sup> de hidrocarburos totales del petr&oacute;leo (HTP). Esto no ocurri&oacute; en la leguminosa guaje (<I>Leucaena </I>sp.), la cual, aunque disminuy&oacute; severamente, fue tolerante a 100000mg·kg<sup>-1</sup> HTP.</P>      <P align="justify">3. La leguminosa chipil&iacute;n silvestre (<I>Crotalaria </I>sp.) fue la especie m&aacute;s sensible a la exposici&oacute;n a concentraciones <FONT FACE=Symbol>³</FONT>7500mg·kg<sup>-1</sup> HTP y evidenci&oacute; mejor la fitotoxicidad originada por el petr&oacute;leo en el suelo, por lo que podr&iacute;a ser utilizada como especie fitoindicadora de suelos contaminados con petr&oacute;leo.</P>      <P align="justify">4. Los indicadores m&aacute;s sensibles para medir el impacto toxicol&oacute;gico del petr&oacute;leo en el suelo son el n&uacute;mero de n&oacute;dulos y la presencia o ausencia de la leghemoglobina dentro del n&oacute;dulo.</P>  <B>    <P align="justify">REFERENCIAS</P> </B>     <!-- ref --><P align="justify">1.Adam G, Duncan H (2003) The effect of diesel fuel on common vetch (<I>Vicia faba</I> L.) plants. <I>Envir. Geochem. Health 25</I>: 123-130.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002718&pid=S0378-1844200500060000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">2.Alexander M (1994) <I>Introducci&oacute;n a la Microbiolog&iacute;a del Suelo</I>. 2a reimp. AGT. M&eacute;xico. 491 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002719&pid=S0378-1844200500060000500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">3.Atlas RM, Bartha R (2002) <I>Ecolog&iacute;a Microbiana y Microbiolog&iacute;a Ambiental</I>. 4ª ed. Pearson. Madrid, Espa&ntilde;a. 677 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002720&pid=S0378-1844200500060000500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">4.Conn EE, Stumpf PK, Bruening G, Doi RH (2002) <I>Bioqu&iacute;mica Fundamental</I>. 4ª ed. Limusa Wiley. M&eacute;xico. 736 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002721&pid=S0378-1844200500060000500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">5.Cha&icirc;neau HC, Morel LJ, Oudot J (1997) Phytotoxicity and plant uptake of fuel oil hydrocarbons. <I>J. Envir. Qual. 26</I>: 1478-1483.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002722&pid=S0378-1844200500060000500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">6.Cha&icirc;neau HC, Morel LJ, Oudot J (2000) Biodegradation of fuel oil hydrocarbons in the rhizosphere of maize (<I>Zea mayz</I> L.). <I>J. Envir. Qual. 29</I>: 569-578.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002723&pid=S0378-1844200500060000500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">7.Cha&icirc;neau HC, Yepremian C, Vidalie JF, Ducreux J, Ballerini D (2003) Bioremediation of crude oil-polluted soil: Biodegradation, leaching and toxicity assessments. <I>Water Air Soil Pollut. 144</I>: 419-440.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002724&pid=S0378-1844200500060000500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">8.Diario Oficial (2002a) <I>Norma Oficial Mexicana Emergente NOM-EM-138-ECOL-2002</I>. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 20/08/2002. 2ª Sec. M&eacute;xico. pp. 44-53.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002725&pid=S0378-1844200500060000500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">9.Diario Oficial (2002b) <I>Norma Oficial Mexicana NOM-021-RECNAT-2000</I>. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 31/12/2002. 2ª Sec. M&eacute;xico. pp. 1-75.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002726&pid=S0378-1844200500060000500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">10.Diario Oficial (2004) <I>Proyecto de Norma Oficial Mexicana PROY-NOM-138-SEMARNAT-2003</I>. Diario Oficial de la Federaci&oacute;n. 19/03/2004. 2ª Sec. M&eacute;xico. pp. 71-87.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002727&pid=S0378-1844200500060000500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">11.Dorn BP, Vipond ET, Salanitro PJ, Wisniewski LH (1998) Assessment of the acute toxicity of crude oils using earthworms, microtox, and plants. <I>Chemosphere 37</I>: 845-860.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002728&pid=S0378-1844200500060000500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">12.EPA (1986) <I>Method 418.1 mod. Petroleum hydrocarbons. Total Recoverable Spectrophotometric Infrared</I>. Environmental Protection Agency. Washington, DC. EEUU. 8 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002729&pid=S0378-1844200500060000500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">13.Freedman B (1995) <I>Environmental Ecology. The ecological effects of pollution, disturbance, and stresses</I>. 2ª ed. Academic Press. San Diego, CA, EEUU. 606 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002730&pid=S0378-1844200500060000500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">14.Hern&aacute;ndez AE (1997) Influencia de un complejo de hidrocarburos en poblaciones rizosf&eacute;ricas y en el crecimiento del frijol variedad Michoac&aacute;n 12-A3. Tesis. Colegio de Postgraduados. Montecillo, M&eacute;xico. 131 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002731&pid=S0378-1844200500060000500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">15.INEGI (2001) <I>S&iacute;ntesis de Informaci&oacute;n Geogr&aacute;fica del Estado de Tabasco</I>. Instituto Nacional de Estad&iacute;stica, Geograf&iacute;a e Inform&aacute;tica. Aguascalientes, M&eacute;xico. 89 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002732&pid=S0378-1844200500060000500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">16.ISSS-ISRIC-FAO (1998) <I>World Reference Base for Soil Resources</I>. World Soil Resources Reports Nº84. ISSS-ISRIC-FAO. Roma, Italia. 91 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002733&pid=S0378-1844200500060000500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">17.Madigan MT, Martinko JM, Parker J (1999) <I>Brok. Biolog&iacute;a de los Microorganismos</I>. 8ª ed. Prentice Hall Iberia. Madrid, Espa&ntilde;a. 1064 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002734&pid=S0378-1844200500060000500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">18.OECD (1984) <I>Terrestrial plant growth test. </I>Guidelines for Testing Chemicals Nº208. Organizaci&oacute;n para la Cooperaci&oacute;n y Desarrollo Econ&oacute;mico. Par&iacute;s, Francia. 5 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002735&pid=S0378-1844200500060000500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">19.Ortiz OM (2001) <I>Bioensayos con </I>Cyperus elegans<I> para la determinaci&oacute;n del potencial fitot&oacute;xico de suelos contaminados con hidrocarburos en el pantano de Santa Alejandrina, Veracruz. </I>Tesis. UNAM. M&eacute;xico. 112 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002736&pid=S0378-1844200500060000500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">20.Plice MJ (1948) Some effects of crude petroleum on soil fertility. <I>Proc. Soil Sci. Soc. Am</I>. <I>13</I>: 413-416.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002737&pid=S0378-1844200500060000500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">21.Pothuluri VJ, Cerniglia CE (1994) Microbial metabolism of polycyclic aromatic hydrocarbons. En Chaudry RG (Ed.) <I>Biological Degradation and Bioremediation of Toxic Chemicals.</I> Dioscorides. Portland, OR, EEUU. pp. 92-123.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002738&pid=S0378-1844200500060000500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">22.Rivera-Cruz M del C (2004) Clasificaci&oacute;n de suelos tropicales influenciados por derrames de petr&oacute;leo en Tabasco. <I>Tecnociencia Universitaria III(7)</I>: 6-25.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002739&pid=S0378-1844200500060000500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">23.Rivera-Cruz M del C, Trujillo-Narc&iacute;a A (2004) Estudio de toxicidad vegetal en suelos con petr&oacute;leos nuevo e intemperizado. <I>Interciencia 29</I>: 369-376.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002740&pid=S0378-1844200500060000500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">24.Rivera-Espinoza Y, Dendooven L (2004) Dinamics of carbon, nitrogen and hydrocarbons in diesel-contaminated soil amended with biosolids and maize. <I>Chemosphere 54</I>: 379-386.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002741&pid=S0378-1844200500060000500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">25.Salisbury FB, Ross CW (2000) <I>Fisiolog&iacute;a de las Plantas 3. Desarrollo de las plantas y fisiolog&iacute;a ambiental</I>. Paraninfo. Madrid, Espa&ntilde;a. 458 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002742&pid=S0378-1844200500060000500025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">26.SAS (1989) <I>SAS/ML* Software: usage and reference</I>. Version 6 1st ed. SAS Institute Inc. Cary, NC, EEUU. 501 pp.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002743&pid=S0378-1844200500060000500026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">27.Suominen L, Jussila MM, M&auml;kel&auml;inen K, Romantschuk M, Lindstr&ouml;m K (2000) Evaluation of the <I>Galega</I>-<I>Rhizobium galegae</I> system for the bioremediation of oil-contaminated soil. <I>Envir. Pollut. 107</I>: 239-244.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002744&pid=S0378-1844200500060000500027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">28.Trujillo NA, Zavala CJ, Lagunes EL del C (1995) Contaminaci&oacute;n de suelos por metales pesados e hidrocarburos arom&aacute;ticos en Tabasco. En <I>Memoria VIII Reuni&oacute;n Cient&iacute;fica-Tecnol&oacute;gica Forestal y Agropecuaria</I>. INIFAP Tabasco. Villahermosa, Tabasco, M&eacute;xico. pp. 45-52.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002745&pid=S0378-1844200500060000500028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">29.Weaver RW, Frederick LR (1982) Rhizobium. En Page AL (Ed.). <I>Methods of Soil Analysis. Part 2.</I> <I>Chemical and Microbiological Properties</I>. Agronomy Monograph Nº9. 2nd ed. ASA-SSSA. Madison, WI, EEUU. pp. 1043-1069.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002746&pid=S0378-1844200500060000500029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify">30.Wetzel A, Werner D (1995) Ecotoxicological evaluation of contaminated soil using the legume root nodule symbiosis as effect parameter. <I>Envir. Toxicol. Water Qual. 10</I>: 127-133&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1002747&pid=S0378-1844200500060000500030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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