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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Caracterización electroforética de las globulinas del grano fermentado de tres tipos de cacao]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[ELECTROPHORETIC CHARACTERIZATION OF GLOBULINS FROM FERMENTED GRAINS OF THREE TYPES OF COCOA]]></article-title>
<article-title xml:lang="pt"><![CDATA[CARACTERIZAÇÃO ELETROFORÉTICA DAS GLOBULINAS DO GRÃO FERMENTADO DE TRES TIPOS DE CACAU]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The globulins of the fermented grain of the criollo, forastero and trinitario cocoa types in the Cumboto area, Aragua state, Venezuela were characterized by electrophoresis. Pods from two plants, three fruits per plant, were harvested for each type of cocoa in El Paraíso, La Vega de Santa Cruz and La Isleta parcels. Healthy pods corresponding to each type of cocoa were manually flailed and underwent a fermentation process for a period of five days. The pulp was removed from the fermented grains, and the cotiledons were dried in an oven for 48h at 40ºC. This was followed by a grinding process. The globulins were extracted using 0.5M NaCl and were analyzed by unidimensional PAGE-SDS electrophoresis in a 20% poliacrilamide plate gel. The results revealed significant variations (p<0.05) in the protein contents of the degreased powder of the fermented grains corresponding to the different cocoa types (17.6%-20.3%) and the different parcels (17.5%-20.3%). The amount of globulins also differed between parcels (15.3%-30.4%). However, the values did not show a statistical differentiation between the types (16.8%-24.9%). The electrophoretical analysis of the globulins showed patterns with a total of 49 soft bands with a relative mobility ranging from 0.214 to 0.971, and molecular weights in between 79 and 13.8kDa, which varied between plants, cocoa types, and parcels.]]></p></abstract>
<abstract abstract-type="short" xml:lang="pt"><p><![CDATA[Caracterizaram-se eletroforéticamente as globulinas do grão fermentado dos cacaus tipo crioulo, forasteiro e trinitário da localidade de Cumboto, estado Aragua, Venezuela, para o qual foram colhidas vagens de duas plantas por cada tipo de cacau, na razão de três frutos por planta, nos lotes El Paraíso, La Vega de Santa Cruz e La Isleta. Vagens sãs de cada tipo de cacau foram processadas manualmente para retirada dos grãos e submetidas a um processo de fermentação durante 5 dias. A polpa dos grãos fermentados foi eliminada, e os cotilédones foram secados em uma estufa por 48h a 40°C, seguido de um processo de moenda. As globulinas foram extraídas com solução 0,5M NaCl e analisadas eletroforéticamente por PAGE-SDS unidimensional em gel de placa de poliacrilamida 20%. Os resultados revelaram variações significativas (p<0,05) dos conteúdos de proteína no pó desengordurado dos grãos fermentados entre os tipos de cacau (17,6-20,3%) e nos lotes (17,5-20,3%). Igualmente, a quantidade de globulinas diferiu entre os lotes (15,3-30,4%), em tanto que os valores não se diferenciaram estatisticamente entre os tipos (16,8-24,9%). A análise eletroforética das globulinas mostrou padrões com um total de 49 bandas tênues com mobilidades relativas entre 0,214 e 0,971 e pesos moleculares entre 79 e 13,8kDa, os quais variaram entre as plantas, tipos de cacau e lotes.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <B>    <P align="center"><font face="Verdana" size="3">CARACTERIZACI&Oacute;N ELECTROFOR&Eacute;TICA DE LAS GLOBULINAS</font></P>     <P align="center"><font face="Verdana" size="3">DEL GRANO FERMENTADO DE TRES TIPOS DE CACAO</font></P>     <P align="center"><font face="Verdana" size="2">Ligia Ortiz de Bertorelli, Henry Maldonado, Pablo Parra y Luc&iacute;a Graziani de Fari&ntilde;as</font></P> </B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Ligia Ortiz de Bertorelli. </b> Licenciada en Qu&iacute;mica, Universidad Central de Venezuela (UCV). Mag&iacute;ster en Ciencia de los Alimentos, Universidad Sim&oacute;n Bol&iacute;var (USB), Venezuela. Profesora, UCV, Venezuela. Direcci&oacute;n: Instituto de Qu&iacute;mica y Tecnolog&iacute;a, Facultad de Agronom&iacute;a, UCV. Apartado 4579, Maracay 2101. Aragua, Venezuela. e-mail: ortizl@agr.ucv.ve</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Henry Maldonado.</b> Ingeniero Agr&oacute;nomo y Estudiante de Maestr&iacute;a en Ciencia y Tecnolog&iacute;a de Alimentos, UCV, Venezuela.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Pablo Parra G&oacute;mez.</b> Ingeniero Agr&oacute;nomo y Doctor en Ciencias Agr&iacute;colas, UCV, Venezuela. Profesor, UCV, Venezuela.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Luc&iacute;a Graziani de Fari&ntilde;as.</b> Ingeniera Qu&iacute;mica, Universidad de Oriente, Venezuela. Mag&iacute;ster en Ciencia de los Alimentos, USB, Venezuela. Profesora, UCV, Venezuela. e-mail: ticoet@net-uno.net</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMEN</b></font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se caracterizaron electrofor&eacute;ticamente las globulinas del grano fermentado de los cacaos tipo criollo, forastero y trinitario de la localidad de Cumboto, estado Aragua, Venezuela, para lo cual fueron cosechadas mazorcas de dos plantas por cada tipo de cacao, a raz&oacute;n de tres frutos por planta, en las parcelas El Para&iacute;so, La Vega de Santa Cruz y La Isleta. Mazorcas sanas de cada tipo de cacao fueron desgranadas manualmente y sometidas a un proceso de fermentaci&oacute;n durante 5 d&iacute;as. A los granos fermentados se les elimin&oacute; la pulpa, y los cotiledones fueron secados en una estufa por 48h a 40ºC, seguido de un proceso de molienda. Las globulinas fueron extra&iacute;das con soluci&oacute;n 0,5M NaCl y analizadas electrofor&eacute;ticamente por PAGE-SDS unidimensional en gel de placa de poliacrilamida 20%. Los resultados revelaron variaciones significativas (p&lt;0,05) de los contenidos de prote&iacute;na en el polvo desgrasado de los granos fermentados entre los tipos de cacao (17,6-20,3%) y en las parcelas (17,5-20,3%). Igualmente, la cantidad de globulinas difiri&oacute; entre las parcelas (15,3-30,4%), en tanto que los valores no se diferenciaron estad&iacute;sticamente entre los tipos (16,8-24,9%). El an&aacute;lisis electrofor&eacute;tico de las globulinas mostr&oacute; patrones con un total de 49 bandas tenues con movilidades relativas entre 0,214 y 0,971 y pesos moleculares entre 79 y 13,8kDa, los cuales variaron entre las plantas, tipos de cacao y parcelas.</font></P>  <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="center"><font face="Verdana" size="2">ELECTROPHORETIC CHARACTERIZATION OF GLOBULINS FROM FERMENTED GRAINS OF THREE TYPES OF COCOA</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>SUMMARY</b></font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">The globulins of the fermented grain of the criollo, forastero and trinitario cocoa types in the Cumboto area, Aragua state, Venezuela were characterized by electrophoresis. Pods from two plants, three fruits per plant, were harvested for each type of cocoa in El Para&iacute;so, La Vega de Santa Cruz and La Isleta parcels. Healthy pods corresponding to each type of cocoa were manually flailed and underwent a fermentation process for a period of five days. The pulp was removed from the fermented grains, and the cotiledons were dried in an oven for 48h at 40ºC. This was followed by a grinding process. The globulins were extracted using 0.5M NaCl and were analyzed by unidimensional PAGE-SDS electrophoresis in a 20% poliacrilamide plate gel. The results revealed significant variations (p&lt;0.05) in the protein contents of the degreased powder of the fermented grains corresponding to the different cocoa types (17.6%-20.3%) and the different parcels (17.5%-20.3%). The amount of globulins also differed between parcels (15.3%-30.4%). However, the values did not show a statistical differentiation between the types (16.8%-24.9%). The electrophoretical analysis of the globulins showed patterns with a total of 49 soft bands with a relative mobility ranging from 0.214 to 0.971, and molecular weights in between 79 and 13.8kDa, which varied between plants, cocoa types, and parcels.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">CARACTERIZA&Ccedil;&Atilde;O ELETROFOR&Eacute;TICA DAS GLOBULINAS DO GR&Atilde;O FERMENTADO DE TRES TIPOS DE CACAU</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>RESUMO</b></font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Caracterizaram-se eletrofor&eacute;ticamente as globulinas do gr&atilde;o fermentado dos cacaus tipo crioulo, forasteiro e trinit&aacute;rio da localidade de Cumboto, estado Aragua, Venezuela, para o qual foram colhidas vagens de duas plantas por cada tipo de cacau, na raz&atilde;o de tr&ecirc;s frutos por planta, nos lotes El Para&iacute;so, La Vega de Santa Cruz e La Isleta. Vagens s&atilde;s de cada tipo de cacau foram processadas manualmente para retirada dos gr&atilde;os e submetidas a um processo de fermenta&ccedil;&atilde;o durante 5 dias. A polpa dos gr&atilde;os fermentados foi eliminada, e os cotil&eacute;dones foram secados em uma estufa por 48h a 40°C, seguido de um processo de moenda. As globulinas foram extra&iacute;das com solu&ccedil;&atilde;o 0,5M NaCl e analisadas eletrofor&eacute;ticamente por PAGE-SDS unidimensional em gel de placa de poliacrilamida 20%. Os resultados revelaram varia&ccedil;&otilde;es significativas (p&lt;0,05) dos conte&uacute;dos de prote&iacute;na no p&oacute; desengordurado dos gr&atilde;os fermentados entre os tipos de cacau (17,6-20,3%) e nos lotes (17,5-20,3%). Igualmente, a quantidade de globulinas diferiu entre os lotes (15,3-30,4%), em tanto que os valores n&atilde;o se diferenciaram estatisticamente entre os tipos (16,8-24,9%). A an&aacute;lise eletrofor&eacute;tica das globulinas mostrou padr&otilde;es com um total de 49 bandas t&ecirc;nues com mobilidades relativas entre 0,214 e 0,971 e pesos moleculares entre 79 e 13,8kDa, os quais variaram entre as plantas, tipos de cacau e lotes.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">PALABRAS CLAVE </font> </B><font face="Verdana" size="2"> / Electroforesis / Fermentaci&oacute;n / Globulinas / Prote&iacute;nas / Theobroma cacao L. /</font></P> <FONT SIZE=2>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: 22/07/2005. Modificado: 22/03/2006. Aceptado:11/04/2006.</font></P> </FONT><B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Introducci&oacute;n</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las globulinas del cacao son prote&iacute;nas vacuolares de reserva que representan el 43% de las prote&iacute;nas de la semilla. Esta fracci&oacute;n proteica est&aacute; constituida por subunidades polipept&iacute;dicas que no presentan enlaces disulfuro, siendo por lo tanto del tipo vicilina, a diferencia de la mayor&iacute;a de las semillas de otras plantas que contienen solamente globulinas de reserva tipo legumina o ambos tipos, leguminas y vicilinas (Voigt et al., 1993). En estas prote&iacute;nas se han observado tres polip&eacute;ptidos principales con pesos moleculares de 47-46kDa el primero, 33,5-31kDa el segundo y 14,5kDa el tercero (Voigt et al., 1993, 1994; Lerceteau et al., 1999; Buyukpamukcu et al., 2001; Amin et al., 2002; S&aacute;nchez, 2002).</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las prote&iacute;nas de reserva del cacao son importantes para el desarrollo de su sabor espec&iacute;fico (Biehl et al., 1982; Voigt et al., 1993). Este sabor no es producido en otros vegetales y es generado durante el procesamiento de los granos, siendo la etapa fermentativa esencial para la formaci&oacute;n de los compuestos precursores (Voigt et al., 1994; Amin et al., 1997, 1998).</font> </P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Durante la fermentaci&oacute;n ocurren cambios en las prote&iacute;nas relacionados con el incremento de la temperatura y de la acidez, factores que causan la muerte del embri&oacute;n y la ruptura de las paredes celulares, permitiendo que las enzimas entren en contacto con sus respectivos sustratos (Cros y Jeanjean, 1995). La acci&oacute;n de la endoprote&iacute;nasa asp&aacute;rtica y la carboxipeptidasa sobre las globulinas tipo vicilinas genera oligop&eacute;ptidos y amino &aacute;cidos libres, compuestos considerados como precursores del aroma espec&iacute;fico del cacao fermentado (Biehl et al., 1982; Voigt et al., 1994; Amin et al., 1997, 1998). Entre los p&eacute;ptidos formados han sido identificados un nonap&eacute;ptido y un hexap&eacute;ptido. Este hexap&eacute;ptido presenta una secuencia an&aacute;loga al nonap&eacute;ptido, por lo que se supone se forma, en parte, a partir del nonap&eacute;ptido durante el proceso fermentativo (Buyukpamukcu et al., 2001).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La digesti&oacute;n proteol&iacute;tica selectiva de las globulinas reduce la fracci&oacute;n en proporciones considerables que superan el 80% (Voigt et al., 1993; Amin et al., 1997, 1998). Esta p&eacute;rdida cuantitativa de las prote&iacute;nas vacuolares de reserva ocasiona una disminuci&oacute;n de la intensidad de las bandas electrofor&eacute;ticas correspondientes a dichas prote&iacute;nas (Biehl et al., 1982; Voigt et al., 1993; Amin et al., 1997; Buyukpamukcu et al., 2001) siendo algunas veces observada una p&eacute;rdida total, de modo que las bandas no son detectadas en los granos fermentados (Pettipher, 1990; Buyukpamukcu et al., 2001).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En Venezuela, las condiciones edafoclim&aacute;ticas son apropiadas para el cultivo del cacao, que ha sido tradicional en el pa&iacute;s, donde exist&iacute;a un cacao criollo de alta calidad. Sin embargo, la hibridizaci&oacute;n natural que ha ocurrido como consecuencia de la introducci&oacute;n de materiales forasteros m&aacute;s resistentes y productivos, ha desmejorado la calidad del cacao (Cartay, 1997), sobre todo en la Regi&oacute;n Centro-Norte-Costera del estado Aragua, donde predominaban los mencionados cacaos. Ahora bien, sobre el cacao h&iacute;brido existente en la actualidad, el cual a&uacute;n puede ser considerado de buena calidad, se dispone de poca informaci&oacute;n en cuanto a la composici&oacute;n proteica, la cual reviste gran importancia en los programas de mejoramiento que se est&aacute;n realizando en el pa&iacute;s. El objetivo de este estudio consisti&oacute; en caracterizar electrofor&eacute;ticamente las globulinas de granos fermentados de tres tipos de cacao de la localidad de Cumboto.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Materiales y M&eacute;todos</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se estudiaron las globulinas de los cacaos tipo criollo, forastero y trinitario de las parcelas La Isleta, La Vega de Santa Cruz y El Para&iacute;so de la localidad de Cumboto, estado Aragua, Venezuela. En cada parcela se delimit&oacute; una superficie de 1ha y los &aacute;rboles de cacao fueron identificados seg&uacute;n algunos descriptores taxon&oacute;micos sugeridos por Bekele et al. (1994).</font> </P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el ensayo se emple&oacute; un dise&ntilde;o factorial completamente aleatorizado que consisti&oacute; de 3 tipos de cacao con 2 repeticiones en 3 parcelas. La cosecha fue realizada en 2 plantas de cada tipo de cacao, recolect&aacute;ndose 3 mazorcas sanas y maduras por planta, para una unidad experimental de 6 mazorcas. Como criterio de madurez se aplic&oacute; el m&eacute;todo se&ntilde;alado por Gonz&aacute;lez et al. (1999).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Las mazorcas cosechadas fueron fermentadas por 5 d&iacute;as, usando cajones de dimensiones 15×15×15cm, construidos con madera saqui-saqui, Bombacopsi quinata (Jacq) Dugan, con perforaciones de 0,8cm de di&aacute;metro en el fondo para permitir la salida del exudado (Graziani et al., 2003). Los cotiledones de los granos fermentados fueron separados manualmente, secados en una estufa a 40ºC por 48h y molidos finamente.</font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">An&aacute;lisis qu&iacute;micos</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La extracci&oacute;n de las prote&iacute;nas fue realizada siguiendo el procedimiento descrito por Voigt et al. (1993). El contenido proteico del polvo de acetona (AcDP) fue analizado por el m&eacute;todo microKjeldahl (AOAC, 1997) y las globulinas cuantificadas seg&uacute;n Lowry et al. (1951) usando como est&aacute;ndar alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina. La caracterizaci&oacute;n electrofor&eacute;tica de las prote&iacute;nas se realiz&oacute; de forma unidimensional en placa de gel de poliacrialamida con dodecilsulfato de sodio (PAGE-SDS) al 20% de acrilamida, de acuerdo con el m&eacute;todo propuesto por Laemmli (1970). La determinaci&oacute;n del peso molecular de los polip&eacute;ptidos de las globulinas se calcul&oacute; por comparaci&oacute;n de las movilidades relativas (Mr) de las bandas de los patrones electrofor&eacute;ticos de las muestras con las de prote&iacute;nas est&aacute;ndares (fosforilasa b, alb&uacute;mina s&eacute;rica bovina, ovoalb&uacute;mina, anhidrasa carb&oacute;nica, inhibidor de tripsina, lisoenzima), determinadas ambas Mr en igualdad de condiciones (Ortiz de Bertorelli y Ram&iacute;rez, 2000). La movilidad relativa fue calculada por la ecuaci&oacute;n usada por Robard et al. (1971). Para comparar los contenidos proteicos se aplic&oacute; un an&aacute;lisis de varianza complementado con una prueba de comparaci&oacute;n de medias de Duncan (SAS, 1998).</font></P>  <B>    ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Resultados y Discusi&oacute;n</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Contenido prote&iacute;nico</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En el polvo desgrasado del cotiled&oacute;n de los tres tipos de cacao fermentado, los porcentajes de prote&iacute;na total difirieron entre s&iacute; (p&lt;0,05) y la prueba de comparaci&oacute;n de medias de Duncan (<a href="#t1">Tabla I</a>) indic&oacute; que la menor concentraci&oacute;n correspondi&oacute; al trinitario. En cambio, entre las globulinas no se observaron diferencias significativas.</font></P>      <P align="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="t1"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v31n6/Image211.jpg" WIDTH=375 HEIGHT=220></a></font></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En los tres tipos de cacao, las globulinas se encontraron en cantidades mayores que los 18mg/gAcDP se&ntilde;alados por Voigt et al. (1993) y 10,5mg/gAcDP por Amin et al. (1998) para cacaos fermentados de otros pa&iacute;ses, diferencia posiblemente debida a los materiales analizados y al uso de una metodolog&iacute;a distinta.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Al comparar con los resultados obtenidos (30,3% de globulinas en el cacao criollo, 25,4% en el forastero y 24,5% en el trinitario) por S&aacute;nchez (2002) para el cacao fresco de Cumboto, se observ&oacute; que los valores de este estudio son inferiores, lo cual revel&oacute; una reducci&oacute;n de esta fracci&oacute;n durante la fermentaci&oacute;n. La disminuci&oacute;n de la concentraci&oacute;n de las globulinas en el proceso fermentativo del cacao tambi&eacute;n ha sido observada por Voigt et al. (1993), quienes encontraron un descenso de 197 a 18mg globulinas/gAcDP. As&iacute; mismo, Amin et al. (1998) detectaron una reducci&oacute;n del 88,8% en dicha fracci&oacute;n, ocasionada por la acci&oacute;n enzim&aacute;tica de la endoproteasa asp&aacute;rtica, que divide las cadenas prote&iacute;nicas para formar oligop&eacute;ptidos hidr&oacute;fobos, sobre los cuales act&uacute;a la carboxipeptidasa produciendo oligop&eacute;ptidos hidrof&iacute;licos y amino&aacute;cidos hidrof&oacute;bicos, compuestos responsables de la formaci&oacute;n de los precursores del sabor del cacao fermentado (Voigt et al., 1994; Amin et al., 1997, 1998).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La prueba de medias de Duncan tambi&eacute;n demostr&oacute; diferencias significativas (p&lt;0,05) entre los contenidos proteicos del cacao de las tres parcelas (<a href="#t2">Tabla II</a>), presentando el de El Para&iacute;so menor porcentaje de prote&iacute;nas totales en la harina desgrasada, en tanto que en las globulinas, la proporci&oacute;n fue mayor en La Isleta.</font></P>      <P align="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="t2"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v31n6/Image212.jpg" WIDTH=379 HEIGHT=217></a></font></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">La concentraci&oacute;n total de las prote&iacute;nas del cacao est&aacute; relacionada con los factores ambientales y ecol&oacute;gicos. Sin embargo, el contenido proteico del cacao de El Para&iacute;so fue m&aacute;s bajo que el de las otras dos parcelas, a pesar que desde 1999 esa parcela se ha venido manejando con un patr&oacute;n tecnol&oacute;gico que involucra riego, poda y un cierto control de plagas y enfermedades (Gonz&aacute;lez, 2001), mientras que en La Isleta las pr&aacute;cticas agron&oacute;micas aplicadas han sido escasas, por lo que en este caso la deficiencia en prote&iacute;na podr&iacute;a ser adjudicada a las muestras analizadas, en las cuales posiblemente haya ocurrido una hibridaci&oacute;n natural con materiales de baja calidad, hibridizaci&oacute;n que es se&ntilde;alada por Motamayor (1995) y Parra et al. (2002).</font></P>      <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">PAGE-SDS de las globulinas</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los patrones electrofor&eacute;ticos obtenidos (<a href="#fig1">Figuras 1</a> y <a href="#fig2">2</a>) fueron caracter&iacute;sticos, altamente reproducibles y mostraron un total de 49 bandas con Mr desde 0,214 hasta 0,971 y PM entre 79 y 13,8kDa (<a href="#fig3">Figura 3</a>). Sin embargo, pareciera que algunas de las bandas de los zimogramas podr&iacute;an ser similares, como lo ser&iacute;an las bandas 7 y 8, 9 y 10, 12 y 13, 14 y 15, 40 y 41, y 47 y 48.</font></P>      <P align="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="fig1"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v31n6/Image213.jpg" WIDTH=380 HEIGHT=322></a></font></P>     
<P align="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="fig2"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v31n6/Image214.jpg" WIDTH=379 HEIGHT=313></a></font></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En todos los cacaos analizados la banda mas intensa y de mayor anchura fue la de Mr de 0,829 y PM 19,8kDa en la planta 1 (<a href="#fig1">Figuras 1</a> y <a href="#fig3">3</a>) y 0,809 y 21kDa en la planta 2 (<a href="#fig2">Figuras 2</a> y <a href="#fig3">3</a>), la cual supuestamente corresponde a las alb&uacute;minas, mientras que las restantes fueron bandas tenues. La presencia de dichas alb&uacute;minas, en las globulinas de todas las muestras de cacao, tambi&eacute;n ha sido observada por varios investigadores (Amin et al., 1997, 2002) y ha sido atribuida a contaminaci&oacute;n, que incluso ha sido detectada en globulinas parcialmente purificadas (Amin et al., 2002), debido a que las prote&iacute;nas de reserva son dif&iacute;ciles de purificar por su insolubilidad y su tendencia a formar complejos (MacDonald et al., 1994).</font></P>      <P align="center"><font face="Verdana" size="2"><a name="fig3"><IMG SRC="/img/fbpe/inci/v31n6/Image215.jpg" WIDTH=535 HEIGHT=789></a></font></P>      
<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">El n&uacute;mero de bandas de las globulinas vari&oacute; entre los tipos de cacao, entre las plantas y entre las parcelas (<a href="#fig3">Figura 3</a>). Al excluir la banda considerada como correspondiente a las alb&uacute;minas (19,8-21kDa) y tomando en cuenta la similitud se&ntilde;alada de algunas bandas, se not&oacute; que entre los tipos de cacao el mayor n&uacute;mero le correspondi&oacute; al tipo criollo (24 bandas). En cuanto a las plantas se observ&oacute; que en la planta 1, el n&uacute;mero m&aacute;s alto lo mostr&oacute; el tipo forastero (15 bandas) y en la planta 2 el criollo (18 bandas). En las parcelas se encontr&oacute; que la mayor cantidad de bandas la presentaron los patrones del cacao tipo criollo de El Para&iacute;so (17 bandas) y de La Isleta (23 bandas), y en La Vega de Santa Cruz los del tipo forastero (20 bandas). El n&uacute;mero de bandas encontrado es mayor que el indicado para las prote&iacute;nas de reserva del cacao fermentado de otros pa&iacute;ses (Biehl et al., 1982; Voigt et al., 1993; MacDonald et al., 1994; Amin et al., 1997, 1998; Lerceteau et al., 1999; Buyukpamukcu et al., 2001), lo cual podr&iacute;a deberse al m&eacute;todo de an&aacute;lisis usado y/o a los tipos de cacao existentes en la zona de Cumboto. Por otra parte, las bandas con PM de 46,8; 31 y 14,5kDa coinciden con las detectadas por varios investigadores en globulinas de granos frescos de cacao gen&eacute;ticamente indefinido (Voigt et al., 1993, 1994), de genotipos denominados Forastero (Amelonado), Criollo (Kraton) y Trinitario (DR2) (Amin et al., 2002) y de los mismos tipos analizados en este estudio (S&aacute;nchez, 2002), as&iacute; como en granos fermentados de cacao Amelonado (Buyukpamukcu et al., 2001) y del clon Forastero Amaz&oacute;nico IMC67 (Lerceteau et al., 1999).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En cuanto a las bandas comunes de los cacaos estudiados (<a href="#fig3">Figura 3</a>), se puede observar que la de PM 64,5-65kDa se encontr&oacute; en todos los patrones electrofor&eacute;ticos de los tres tipos de cacao, la de 79kDa en los zimogramas de la planta 1 de las tres parcelas, mientras que en la planta 2 las bandas comunes fueron las de 46,8 y 14,5kDa. Igualmente, en todas las parcelas el cacao tipo criollo mostr&oacute; 6 bandas comunes en las plantas 1 y 2; el forastero 8 en la planta 1 y 5 en la planta 2 y el trinitario 8 en la planta 1 y 7 en la planta 2.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Por otra parte, las bandas que diferenciaron los tipos de cacao fueron las de PM 77; 72; 70; 68; 63; 62,5; 54-53; 46; 45; 44; 39; 16,2; 15,5; y 13,8kDa, las cuales s&oacute;lo aparecieron en las globulinas del tipo criollo, las de PM 75; 57; 48; 42; 40,5; 36; 35,5; 34,2; 31; 28; 24; y 14kDa en el forastero y las de PM 52; 50,5; 33; 26; 17; 16; y 15,8kDa &uacute;nicamente en el trinitario, de forma tal que las prote&iacute;nas del tipo criollo se distinguieron, principalmente, en los polip&eacute;ptidos de PM m&aacute;s alto (77-62,5), las del forastero en los PM intermedios (42-28) y los del trinitario en los de PM m&aacute;s bajo (17-15,8).</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Entre las parcelas, el cacao tipo criollo de El Para&iacute;so discrep&oacute; del de las otras dos en que no mostr&oacute; las bandas de 77; 72; 70; 68; 46; 36,8; y 29kDa. As&iacute; mismo, las bandas de 45; 44; 41; 37; y 13,8kDa no se detectaron en el criollo de La Vega de Santa Cruz ni la banda 15,5kDa en el de La Isleta, lo que indica que las globulinas del cacao criollo del Para&iacute;so difirieron en los polip&eacute;ptidos de PM m&aacute;s alto (77-68kDa), el de La Vega de Santa Cruz en los de PM intermedio (45-37kDa) y los de La Isleta en el de PM m&aacute;s bajo (15,5kDa). Por su parte, el cacao tipo forastero de El Para&iacute;so no present&oacute; las bandas de 42; 40; 36; 35,5; 34,2; y 24kDa, ni el de La Isleta las de 75; 40; y 37kDa, diferenci&aacute;ndose las prote&iacute;nas del cacao de estas dos parcelas en las subunidades de PM intermedio. Igualmente, el cacao trinitario se distingui&oacute; entre las parcelas en los polip&eacute;ptidos de PM intermedio, de manera que en el de El Para&iacute;so no aparecieron las bandas de 41; 36,8kDa y en el de La Vega de Santa Cruz la de 52kDa.</font></P>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">S&aacute;nchez (2002) observ&oacute; la presencia de bandas intensas con PM de 49,5; 44,5; 41; 33 y 31kDa en las  globulinas de muestras frescas de cacao de Cumboto, por lo tanto la ausencia de algunas de estas bandas o su presencia como bandas tenues en las globulinas del grano fermentado, revel&oacute; degradaci&oacute;n de los polip&eacute;ptidos predominantes de estas prote&iacute;nas en la fermentaci&oacute;n, los que son preferentemente afectados en dicho proceso, debido a una digesti&oacute;n proteol&iacute;tica selectiva (Biehl et al., 1982; Voigt et al., 1993; Amin et al., 1997, 1998). Estos resultados coinciden con los obtenidos por varios investigadores (Biehl et al., 1982; Pettipher, 1990; Voigt et al., 1993; Amin et al., 1997, 1998), quienes observaron que al fermentarse el grano de cacao las prote&iacute;nas vacuolares de reserva disminuyen y las bandas electrofor&eacute;ticas correspondientes se observan muy tenues o desaparecen. Por otra parte, Buyukpamukcu (2001) se&ntilde;ala que posiblemente las prote&iacute;nas se degradan, durante la fermentaci&oacute;n, a componentes con masas menores a los 14kDa, puesto que los polip&eacute;ptidos de peso molecular entre 46 y 14kDa no se incrementaron.</font></P>     ]]></body>
<body><![CDATA[<P align="justify"><font face="Verdana" size="2">En conclusi&oacute;n, el contenido proteico del cacao fermentado vari&oacute; entre los tipos y entre las parcelas, en tanto que el porcentaje de globulinas solo difiri&oacute; entre las parcelas. Adem&aacute;s, las globulinas mostraron patrones electrofor&eacute;ticos PAGE-SDS constituidos por un total de 49 bandas tenues con Mr entre 0,214 y 0,971 y PM entre 79 y 13,8 los cuales difirieron entre las plantas, tipos de cacao y parcelas.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">AGRADECIMIENTOS</font></P> </B>     <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los autores agradecen al Vicerrectorado Acad&eacute;mico de la UCV y a la FUNDACITE Aragua el aporte econ&oacute;mico otorgado.</font></P>  <B>    <P align="justify"><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS</font></P> </B>     <!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Amin I, Jinap S, Jamilah B (1997) Vicilin-class globulins and their degradation during cocoa fermentation. Food Chem. 59: 1-5.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026078&pid=S0378-1844200600060001100001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Amin I, Jinap S, Jamilah B (1998) Proteolytic activity (aspartic endoproteinase and carboxypeptidase) of cocoa bean during fermentation. J. Sci. Food Agric. 76: 123-128.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026079&pid=S0378-1844200600060001100002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Amin I, Jinap S, Jamilah B, Harikrisna K, Biehl B (2002) Analysis of vicilin (7S)-class globulin in cocoa cotyledons from various genetic origins. J. Sci. Food Agric. 82: 728-732.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026080&pid=S0378-1844200600060001100003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. AOAC (1997) Official methods of analysis. 16a ed. Association of Analytical Chemists. Gaithersburg, MD, EEUU. Cap. 31. pp. 1-17.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026081&pid=S0378-1844200600060001100004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Bekele FL, Kennedy AJ, McDavid C, Lauckener FB, Bekele I (1994) Numerical Taxonomic studies on cacao (Theobroma cacao L.) in Trinidad. Euphytica. 75: 231-240.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026082&pid=S0378-1844200600060001100005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Biehl B, Wewetzer C, Passern D (1982) Vacuolar (storage) proteins of cocoa seeds and their degradation during germination and fermentation. J. Sci. Food Agric. 33: 1291-1304.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026083&pid=S0378-1844200600060001100006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Buyukpamukcu E, Goodall D, Hansen C, Keely B, Kochhar S, Wille H (2001) Characterization of peptides formed during fermentation of cocoa bean. J. Agric. Food Chem. 49: 5822-5827.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026084&pid=S0378-1844200600060001100007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Cartay R (1997) La econom&iacute;a del cacao en Venezuela. Memorias 1er Congreso Venezolano del Cacao y su Industria. Maracay, Venezuela. pp. 129-146.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026085&pid=S0378-1844200600060001100008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Cros E, Jeanjean N (1995) Cocoa quality: effect of fermentation and drying. Plantations, recherche, d&eacute;veloppement 24: 25-27.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026086&pid=S0378-1844200600060001100009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Gonz&aacute;lez M (2001) Caracterizaci&oacute;n de genotipos de cacao (Theobroma cacao L.). Tesis. Universidad Central de Venezuela. 78 pp.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026087&pid=S0378-1844200600060001100010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Gonz&aacute;lez F, Ortiz de Bertorelli L, Graziani de Fari&ntilde;as L, Monteverde-Penso E (1999) Influencia del &iacute;ndice de cosecha de la mazorca sobre algunas caracter&iacute;sticas de la grasa de dos cultivares de cacao (Theobroma cacao L.). Rev. Fac. Agron. (UCV) 25: 159-171.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026088&pid=S0378-1844200600060001100011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Graziani de Fari&ntilde;as L, Ortiz de Bertorelli L, &Aacute;lvarez N, Trujillo de Leal A (2003) Fermentaci&oacute;n del cacao en dos dise&ntilde;os de cajas de madera. Agron. Trop. 53: 175-187.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026089&pid=S0378-1844200600060001100012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Laemmli UK (1970) Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature 227:680-685.</font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026090&pid=S0378-1844200600060001100013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Lerceteau E, Rogers J, Petiard V, Crouzillat D (1999) Evolution of cacao bean proteins during fermentation: a study by two-dimensional electrophoresis. J. Sci. Food Agric. 79:619-625.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026091&pid=S0378-1844200600060001100014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Lowry OH, Rosebrough NJ, Farr L, Randall RJ (1951) Protein measurement with the folin phenol reagent. J. Biol. Chem. 193:257-65.</font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026092&pid=S0378-1844200600060001100015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. MacDonald H, Master K, Pettipher G (1994) Partial purification of cocoa seed proteins and studies into the degradation of cocoa storage protein. Caf&eacute; Cacao Th&eacute;. 38 (2):119-124.</font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026093&pid=S0378-1844200600060001100016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Motamayor J (1995) Estudio de la variabilidad gen&eacute;tica de los cacaoteros Criollo de Venezuela mediante el uso de marcadores moleculares tipo RFLP. Trabajo de Grado. Facultad de Agronom&iacute;a, Universidad Central de Venezuela. 91 p.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026094&pid=S0378-1844200600060001100017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Ortiz de Bertorelli L, Ram&iacute;rez A (2000) Estudio electrofor&eacute;tico de las alb&uacute;minas y globulinas de cuatro genotipos de Canavalia ensiformis. Arch. Latinoamer. 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Voigt J, Biehl B, Wazir S (1993) The major seed proteins of Theobroma cacao L. Food Chem. (47):145-151.</font> &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026101&pid=S0378-1844200600060001100024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Voigth J, Heinrichs H, Voigth G, Biehl B (1994) Cocoa-specific aroma precursors are generated by proteolytic digestion of the vicilin-like globulin of cocoa seeds. Food Chem. 51:177-184.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1026102&pid=S0378-1844200600060001100025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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