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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Comparación del empleo de nisina y cultivos de lactococcus lactis subsp. Lactis para la biopreservación de queso blanco]]></article-title>
<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Comparation of Nisin and Lactococcus lactis subsp. lactis Cultures for Biopreservation of White Cheese.]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[The main disease transmitted by foods in Venezuela is the staphylococci poisoning, and it is white cheeses the most involved food. The nisin is a bacteriocin able to inhibit the growth of Gram positive microorganisms; among them, Staphylococcus aureus. One of the limitations of its use is its high cost. The use of bacteriocin producing starter cultures represents an alternative for milk industry. The objective of the present study was to evaluate the biopreservating effect of the Lactococcus lactis subsp. lactis (ATCC 11454) and to compare it with the addition of nisin to milk. Five types of cheese from pasteurized milk were elaborated: control; addition of L. lactis; addition of L. lactis and S. aureus; addition of S. aureus; addition of nisina and S. aureus. Both, microbiological and physical-chemical determinations were made according to COVENIN. The nisin concentration was measured using the agar diffusion technique. The data was analyzed with an analysis of variance and testing the means by the method of least squares means. The starter cultures produced nisin, but in low amounts. In cheeses elaborated with milk inoculated whit S. aureus (10³ ufc/mL), no inhibiting effect of the culture on this pathogenic microorganism was observed. Nevertheless, cheeses elaborated with both, Lactococcus without inoculation of Staphylococcus and with nisin, presented little growth of Staphylococcus and coliforms. Nisin was more efficient to obtain biopreservation of white cheeses, although the use of producing bacteriocin starter culture, allowed to obtain cheeses with low counts of pathogens, if the initial contamination of the milk was low.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[  <BASEFONT SIZE="3">     <P ALIGN="center"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>COMPARACIÓN DEL EMPLEO DE NISINA Y CULTIVOS  DE</B><I><B> Lactococcus lactis </B></I><B>subsp</B><I><B>.  lactis </B></I><B>PARA LA BIOPRESERVACIÓN DE QUESO BLANCO.</B> </FONT></P>      <p align="center"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <I><B>Gustavo Castro</B></I><SUP><B>1</B></SUP><I><B>*, Emiro Valbuena</B></I><SUP><B>1</B></SUP><I><B>, Wilfido Bríñez</B></I><SUP><B>1</B></SUP><I><B>, Egar Sánchez</B></I><SUP><B>2</B></SUP><I><B>, Henry  Vera</B></I><SUP><B>1</B></SUP><I><B> y Armando Tovar</B></I><SUP><B>1</B></SUP> </FONT></p>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <SUP>1</SUP><I>Unidad de Investigación en Ciencia y Tecnología de los Alimentos. </I> </FONT></P>     <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <SUP>2</SUP><I>Unidad  de Bioestadística. Facultad de Ciencias Veterinarias, Universidad del Zulia.  Maracaibo, Venezuela. *E-mail: <a href="mailto:gcastro@luz.edu.ve">gcastro@luz.edu.ve</a> </I> &nbsp;</FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>RESUMEN</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La principal enfermedad transmitida por alimentos en Venezuela es la intoxicación  estafilocóccica y es el queso blanco el principal alimento involucrado.  La nisina es una bacteriocina capaz de frenar el crecimiento de microorganismos  Gram positivos, entre ellos <I>Staphylococcus aureus. </I>Una de las limitaciones  de su uso es su alto costo. El empleo de cultivos iniciadores productores  de bacteriocinas, representa una alternativa para elaboración de quesos  con mejor calidad microbiológica. El objetivo del presente estudio fue  evaluar el efecto biopreservador del <I>Lactococcus lactis </I>subsp. <I>lactis </I>(ATCC  11454) y compararlo con la adición de nisina a la leche. Para ello se elaboraron  cinco tipos de quesos con leche pasteurizada: control; con <I>L. lactis</I>;<I> </I>con  <I>L. lactis </I>y <I>S. aureus</I>;<I> </I>con <I>S. aureus</I>; con<I> S. aureus</I> y nisina. Las determinaciones  microbiológicas y físico-químicas se realizaron de acuerdo a las normas  COVENIN. La concentración de nisina se determinó mediante la técnica de  difusión en agar. Los datos se analizaron utilizando el análisis de varianza  y se probaron las medias por el método de los mínimos cuadrados. Se encontró  producción de nisina por parte del cultivo iniciador, pero en bajas concentraciones.  En los quesos elaborados con leche a la que se le inoculó <I>S. aureus </I>(10<SUP>3  </SUP>ufc/mL) no se encontró efecto inhibidor del cultivo sobre este microorganismo  patógeno. Sin embargo, los quesos elaborados con <I>Lactococcus </I>sin inoculación  de <I>Staphylococcus </I>y los quesos elaborados con nisina, presentaron escaso  crecimiento de estafilococos y de bacterias coliformes. La nisina resultó  ser más eficiente para lograr biopreservación de los quesos blancos, aunque  la utilización del cultivo iniciador productor de la bacteriocina, permitió  obtener quesos con bajo conteo de patógenos, cuando la carga microbiana  inicial en la leche era escasa. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Palabras clave:</B>&nbsp; Nisina, <I>Lactococcus lactis</I>, queso blanco, biopreservación. </FONT></P>     <P ALIGN="center"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Comparation of Nisin and </B><I><B>Lactococcus lactis</B></I><B> subsp. </B><I><B>lactis</B></I><B> Cultures for  Biopreservation of White Cheese.</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>ABSTRACT</B> </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> The main disease transmitted by foods in Venezuela is the staphylococci  poisoning, and it is white cheeses the most involved food. The nisin is  a bacteriocin able to inhibit the growth of Gram positive microorganisms;  among them, <I>Staphylococcus aureus</I>. One of the limitations of its use is  its high cost. The use of bacteriocin producing starter cultures represents  an alternative for milk industry. The objective of the present study was  to evaluate the biopreservating effect of the <I>Lactococcus lactis </I>subsp<I>.  lactis</I> (ATCC 11454) and to compare it with the addition of nisin to milk.  Five types of cheese from pasteurized milk were elaborated: control; addition  of <I>L. lactis</I>; addition of <I>L. lactis</I> and <I>S. aureus</I>; addition of <I>S. aureus</I>;<I>  </I>addition of nisina and <I>S. aureus</I>. Both, microbiological and physical-chemical  determinations were made according to COVENIN. The nisin concentration  was measured using the agar diffusion technique. The data was analyzed  with an analysis of variance and testing the means by the method of least  squares means. The starter cultures produced nisin, but in low amounts.  In cheeses elaborated with milk inoculated whit <I>S. aureus</I> (10<SUP>3</SUP> ufc/mL),  no inhibiting effect of the culture on this pathogenic microorganism was  observed. Nevertheless, cheeses elaborated with both, <I>Lactococcus</I> without  inoculation of <I>Staphylococcus</I> and with nisin, presented little growth of  <I>Staphylococcus</I> and coliforms. Nisin was more efficient to obtain biopreservation  of white cheeses, although the use of producing bacteriocin starter culture,  allowed to obtain cheeses with low counts of pathogens, if the initial  contamination of the milk was low. </FONT></P>     <p align="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Key words:</B>&nbsp; Nisin, <I>Lactococcus lactis,</I> white cheese,<I> </I>biopreservation. </FONT></p> <font FACE="Verdana" SIZE="2" COLOR="#231f20">     <p align="justify">Recibido: 23 / 01 / 2008. Aceptado: 14 / 06 / 2008.</p> </font>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>INTRODUCCIÓN</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> El queso blanco es considerado como el producto lácteo de mayor consumo  y el más popular en América Latina y Venezuela [1, 22]. También es el principal  alimento involucrado en casos de intoxicación estafilocóccica, principal  enfermedad transmitida por alimentos (ETA) del país, causada por toxinas  producidas por algunas cepas de <I>Staphylococcus aureus </I>[31, 32, 35]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Aproximadamente el 50% de la producción nacional de quesos se realiza mediante  procesos artesanales o semi-industriales [7], para lo cual generalmente  se emplea leche cruda, muchas veces obtenida bajo un ambiente antihigiénico  para el ordeño. Esa elaboración artesanal se da, tanto en pequeñas plantas  procesadoras como en las mismas unidades de explotación lechera, dando  origen a lo que se conoce popularmente como “queso de matera”. A nivel  semi-industrial, aunque se cuente con tecnologías que mejoran la productividad,  existen muchas fallas en cuanto a normas sanitarias, en parte quizás debido  a la escasa formación técnica del personal [7]. De allí que no sorprende  que sean los productos lácteos, específicamente los quesos blancos, los  involucrados en la mayoría de los casos de ETA en Venezuela. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Según la Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN), la leche  utilizada para la elaboración de queso blanco debe ser pasteurizada [18],  pero la pasteurización por si sola no representa la solución a los casos  de intoxicación estafilocóccica, ya que el proceso logra destruir al <I>Staphylococcus  aureus, </I>pero no a la toxina causante de la enfermedad. Es por ello que  la solución debe abarcar las condiciones higiénico-sanitarias durante el  ordeño y manejo de la leche antes del procesamiento. Se debe tener en cuenta  además, que éste microorganismo constituye parte de la flora bacteriana  de animales y humanos, siendo éstos considerados como los principales reservorios,  aunque también se puede encontrar en el agua, suelo, polvo, aire o equipos  empleados en la elaboración de alimentos [8]. En consecuencia, si se tiene  un manejo poco cuidadoso de los productos terminados, existe la posibilidad  de que los quesos se contaminen con el patógeno y con ello el riesgo de  producir ETA. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La industria tiene la alternativa de emplear preservativos biológicos o  biopreservadores, para satisfacer el interés de los consumidores por obtener  alimentos inocuos y naturales, es decir, elaborados con estricto control  de calidad sanitaria y sin la adición de aditivos químicos artificiales  [25]. El <I>Lactococcus lactis</I> subsp. <I>lactis</I> es una bacteria ácido láctica  (BAL) con propiedades biopreservadoras, ya que algunas cepas son capaces  de producir nisina, una bacteriocina ampliamente usada en la industria  alimentaria y generalmente reconocida como segura (GRAS, por sus siglas  en inglés) por la Organización para la Agricultura y la Alimentación de  las Naciones Unidas (FAO) en 1969 [43]. Numerosos estudios han sido publicados  reportando la eficacia de la nisina para inhibir el crecimiento de bacterias  patógenas, entre ellas <I>Listeria monocytogenes </I>y<I> Clostridium </I>spp.<I>; </I>sin embargo,  son escasos los que demuestran la efectividad sobre <I>Staphylococcus aureus </I>[30, 36, 37, 43]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Uno de los inconvenientes que tiene el uso de nisina como aditivo en alimentos  es su elevado costo como materia prima, por lo que la utilización de cultivos  microbianos productores de bacteriocinas, puede ser una alternativa prominente  para mejorar la calidad e inocuidad de los alimentos manteniendo bajos  los costos de producción. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> El objetivo del presente trabajo fue el de evaluar el efecto biopreservador  de cultivos de <I>Lactococcus lactis </I>subsp<I>. lactis </I>productores de nisina,  en quesos blancos elaborados con leche de vaca (<I>Bos taurus-indicus</I>) pasteurizada  y compararlo con la utilización de la bacteriocina adicionada directamente  a la leche. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>MATERIALES Y MÉTODOS</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se utilizó leche cruda fresca obtenida a nivel de recepción de una planta  quesera ubicada en la ciudad de Maracaibo. La leche fue transportada refrigerada  hasta el laboratorio de Ciencia y Tecnología de la Leche de la Facultad  de Ciencias Veterinarias de la Universidad del Zulia, donde se evaluó su  calidad sanitaria y físico-química mediante prueba de la acidez titulable  (AT), alcohol, punto crioscópico así como el contenido de sólidos totales  (ST), grasa (G) y sólidos no grasos (SNG). Posteriormente, la leche se  pasteurizó a 65°C por 30 minutos en baño maría y seguidamente se le realizó  el recuento de aerobios mesófilos (RAM), recuento de bacterias coliformes  (RBC) y recuento de <I>Staphylococcus aureus </I>(RSa). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Con la leche pasteurizada se elaboraron los quesos para los diferentes  tratamientos, a los cuales se les evaluó la composición físico-química  (ST, humedad sin materia grasa (HSMG), grasa en el extracto seco (GES)  y contenido de sal) y la calidad microbiológica (RAM, RBC y RSa). El RAM  y RBC solo se realizó a los tratamientos CONTROL, LACTIS, LACTIS+S Y NISINA.  Adicionalmente se determinó la concentración de nisina. Las determinaciones  físico-químicas y microbiológicas se realizaron de acuerdo a lo establecido  en las normas COVENIN respectivas [9-20]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Tratamientos experimentales y elaboración de quesos</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se elaboraron cinco tipos de quesos blancos, de acuerdo a los diferentes  tratamientos experimentales que se indican a continuación: queso blanco  con cultivo iniciador de <I>Lactococcus lactis</I> subsp.<I> lactis, </I>denominado tratamiento  LACTIS;<I> q</I>ueso blanco con cultivo iniciador de <I>Lactococcus lactis </I>subsp.  <I>lactis</I> y <I>Staphylococcus aureus, </I>denominado LACTIS+S; queso blanco con cultivo  de <I>Staphylococcus aureus, </I>denominado STAPH; queso blanco con cultivo de<I>  Staphylococcus aureus</I> y adición de nisina, denominado NISINA y queso blanco  control (sin adición de ningún cultivo), denominado CONTROL. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La elaboración de los quesos se realizó según el procedimiento siguiente: </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 1. La leche se pasteurizó a 65°C por 30 minutos y se enfrió a 37°C, temperatura  a la cual se mantuvo hasta la coagulación. Posteriormente se llenaron 5  recipientes de acero inoxidable con aprox. 3 L de leche, uno para cada  tratamiento. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 2. Se adicionó el cultivo iniciador de <I>Lactococcus lactis </I>subsp<I>. lactis </I>al  2% a los tratamientos LACTIS y LACTIS+S y se dejó la leche en reposo por  30 minutos. La población inicial se estimo en 10<SUP>4 </SUP>ufc/mL. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 3. Posteriormente se adicionó el cultivo de <I>Staphylococcus aureus </I>a los tratamientos  LACTIS+S, STAPH y NISINA para obtener una población inicial de 10<SUP>3 </SUP>ufc/mL.  Al mismo tiempo se mezcló la leche con 0,02% de cloruro de calcio en solución  al 10% (a todos los tratamientos) y al tratamiento NISINA, se adicionó  200 mg/Kg de Nisaplin<SUP>® </SUP>(Danisco, Grindsted, Dinamarca) para alcanzar una  dosis aproximada de nisina en la leche de 200 UI/g. La leche se dejó en  reposo por 5 minutos. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 4. Se adicionó el cuajo siguiendo las indicaciones del fabricante (Marshall<SUP>®</SUP>,  Danisco Colombia Ltda., Bogotá, Colombia), se mezcló y se dejó en reposo  hasta alcanzar la coagulación de la leche, aprox. 40 minutos. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 5. La cuajada se cortó con liras, hasta obtener granos de 1 cm de diámetro  aproximadamente, mientras se elevó la temperatura hasta alcanzar 40°C. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 6. Se adicionó la sal (NaCl) a razón de 2,5% del volumen inicial de leche  y se mantuvo en agitación por 20 minutos. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 7. La cuajada se llevó a los moldes para luego ser prensada durante 2 horas.  Se invirtieron los quesos cada hora para regular su forma y asegurar un  desuerado uniforme. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 8. Los quesos se almacenaron a temperatura de refrigeración (aprox. 7°C) durante  10 días y cada dos días se tomaron muestras para su análisis. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Determinación de nisina</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> El contenido de nisina a los tratamientos CONTROL, LACTIS, LACTIS+S y NISINA,  se realizó según la metodología descrita por el Committee on Food Chemicals  Codex<B> </B>[21], utilizando como microorganismo indicador al <I>Micrococcus luteus  </I>ATCC 10240 y para la curva de calibración se empleó como patrón de nisina  muestras de Nisaplin<SUP>®</SUP>. Para ello se tomaron 10 g de muestra, los cuales  se homogeneizaron con ayuda de una licuadora (Oster, Sunbeam Products Inc.,  Venezuela) en 90 mL de ácido clorhídrico al 0,02 N. Las muestras se prepararon  de acuerdo a la técnica citada. La determinación se realizó los días 0;  2; 8 y 10 de almacenamiento. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Preparación de los cultivos</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Como cultivo iniciador se utilizó una cepa de <I>Lactococcus lactis </I>subsp.  <I>lactis </I>ATCC 11454, productora de nisina. El microorganismo fue mantenido  en caldo M-17 (Himedia<SUP>®</SUP> Laboratories Limited; Bombai, India) y antes de  ser utilizado para la elaboración de los quesos, fue reactivado por incubación  en leche descremada estéril durante 24 horas a 37°C. El cultivo en fase  estacionaria se mantuvo en refrigeración y justo antes de elaborar los  quesos se realizaron diluciones en leche descremada estéril, hasta obtener  el título para alcanzar en la leche pasteurizada una población inicial  de 10<SUP>4</SUP> ufc/mL. La cepa de <I>Staphylococcus aureus </I>coagulasa positivo empleada  en el estudio, fue adquirida del cepario del laboratorio de Microbiología  de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la Universidad del Zulia y mantenida  en caldo infusión cerebro corazón (Merck &amp; Co, Darmstadt, Alemania). Su  preparación se hizo de manera similar a la del cultivo iniciador. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Diseño experimental</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se planteó un diseño completamente aleatorizado, donde las unidades experimentales  (10 g de quesos) se asignaron al azar a los tratamientos. Los resultados  del experimento se analizaron usando el Modelo Lineal Generalizado del  paquete estadístico SAS [42], las medias de tratamientos se compararon  a través del método de los mínimos cuadrados y se determinaron las diferencias  significativas (P&lt;0,05). Se ejecutaron un total de 4 repeticiones de cada  tratamiento. Las variables dependientes fueron RAM, RBC, RSa y concentración  de nisina en los quesos. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>RESULTADOS Y DISCUSIÓN</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Composición físico-química de la leche y de los quesos elaborados</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Las medias de los valores físico-químicos obtenidos del análisis de la  leche cruda utilizada para la elaboración de los quesos fueron: AT 16,50  ± 2,12%, punto crioscópico -0,538 ± 0,001°H; ST 13,07 ± 0,09%; G 4,10 ±  0,14% y SNG 8,97 ± 0,05%, los cuales fueron similares a los reportados  para la leche de vacas mestizas en el estado Zulia [4] y cumplieron con  lo establecido por la norma COVENIN 903-93 [12]; a excepción de la crioscopía  que estuvo ligeramente por debajo de lo establecido legalmente. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> En el análisis microbiológico de la leche pasteurizada se obtuvieron resultados  inferiores a 30 ufc/mL para RAM, RBC y RSa, valores que estuvieron dentro  de lo establecido legalmente [15] y que demostraron la efectividad del  proceso de pasteurización para asegurar la disminución de la carga bacteriana  total y de patógenos, permitiendo contar con una materia prima de calidad  para la elaboración de los quesos. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La composición físico-química promedio de los quesos blancos elaborados  se muestra en la <a href="#tab1">TABLA I</a>. El contenido de GES y HSMG permitió clasificarlos  como semi-grasos y blandos [18]. Los quesos blancos se caracterizan por  tener un alto contenido de humedad, lo que los hace altamente perecederos  [22]. El porcentaje de sal (NaCl) resultó menor que lo esperado (2,5%),  por lo que se recomienda el uso de una mayor cantidad de la misma o aumentar  el tiempo de salado de los granos de cuajada, para poder alcanzar la concentración  final deseada, siguiendo el procedimiento de elaboración señalado en el  estudio. La norma COVENIN 3821-2003 establece para quesos blancos frescos  un contenido de sal menor o igual al 3%; los quesos elaborados cumplieron  con lo establecido en esta norma [18]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Por no haber un proceso estandarizado único para la elaboración de quesos  blancos a nivel industrial en Venezuela [1], la composición de éstos varía  entre marcas comerciales; adicionalmente existen pocos estudios que permitan  definir desde el punto de vista de la composición físico-química, lo que  es un queso blanco venezolano. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Recuento de aerobios mesófilos (RAM)</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> En la <a href="#tab2">TABLA II</a> se pueden observar los resultados obtenidos para el RAM  a los 0; 2; 4; 6; 8 y 10 días de almacenamiento de los quesos blancos correspondientes  a los diferentes tratamientos. Los tratamientos CONTROL y NISINA resultaron  ser diferente estadísticamente a los otros (P&lt;0,05), en todos los días  de almacenamiento. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Los quesos elaborados con el cultivo iniciador (LACTIS y LACTIS+S) resultaron  iguales entre sí y fueron los que a su vez presentaron mayor población  total de microorganismos, posiblemente debido al crecimiento del <I>Lactococcus  lactis</I>, bacteria anaerobia facultativa y mesófila, cuya población está  representada en el RAM. Además, está demostrado que a temperaturas de refrigeración,  condiciones bajo las cuales se almacenaron los quesos, éstos pueden crecer  [44]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> De todos los tratamientos, los quesos elaborados con nisina fueron los  que presentaron un RAM significativamente menor, lo que demuestra el efecto  de ésta sobre la población bacteriana total, cuando es añadida directamente.  Esto permite obtener un queso con una vida útil prolongada, ya que el efecto  combinado de la refrigeración con la bacteriocina, evita el crecimiento  microbiano excesivo [29], como se puede observar en la evolución del RAM  para éste tratamiento durante toda la fase de almacenamiento. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Recuento de bacterias coliformes (RBC)</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> En la <a href="#tab3">TABLA III</a> se presentan los resultados obtenidos para el RBC en los  quesos blancos elaborados. En todos los días de almacenamiento el tratamiento  CONTROL resultó significativamente diferente (P&lt;0,05) al resto de los tratamientos,  por ser estos quesos los que presentaron mayor cantidad de bacterias coliformes.  A excepción del tratamiento CONTROL, todos los quesos cumplieron con lo  establecido en la Norma COVENIN 3821-2003, en cuanto al contenido de bacterias  coliformes [19]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se observó un efecto significativo del cultivo iniciador sobre el RBC,  posiblemente causado por la competencia microbiana por los nutrientes y/o  al efecto de la acidez provocada por el cultivo iniciador. Aunque la acidez  de los quesos no fue determinada, se conoce que el cultivo utilizado tiene  la propiedad de fermentar la lactosa con producción de ácido láctico, lo  que causa una disminución del pH, siendo éste uno de los mecanismos de  biopreservación de las BAL [26, 40]. </FONT></P>     <P ALIGN="center"><font size="2"> <a name="tab1"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v19n2/art15fig1.gif" width="422" height="273"></a></P>     
<P ALIGN="center"> <a name="tab2"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v19n2/art15fig2.gif" width="743" height="216"></a></P> </font>    
<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Estos resultados son semejantes a los reportados por Salinas [38], quien  encontró en quesos blancos elaborados con cultivos de <I>Enterococcus </I>productores  de bacteriocinas, baja población de bacterias coliformes al compararlos  con los quesos controles, lo que se debió al efecto de la acidez generada  por el metabolismo fermentativo de los cultivos y con lo observado por  Rodríguez y col. [36], que utilizando cultivos de <I>Lactococcus </I>productores  de nisina y pediocina encontraron un efecto inhibitorio de <I>Escherichia  coli</I> O57:H7 en quesos durante la maduración. Spelhaug y col. [41], empleó  la misma cepa de <I>Lactococcus </I>(ATCC 11454) en un estudio realizado <I>in vitro,  </I>encontró inhibición leve del crecimiento de gérmenes Gram negativos como  la <I>Escherichia coli </I>O157:H7. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Estudios previos han reportado la incapacidad de la nisina para inhibir  el crecimiento de microorganismos Gram negativos, hecho que se atribuye  a su mecanismo de acción sobre la membrana citoplasmática donde forma poros  que facilitan la salida de componentes esenciales para la supervivencia  bacteriana [43]. Las bacterias Gram negativas poseen una pared celular  que evita la acción de la nisina. Sin embargo, algunos investigadores han  demostrado que tratamientos previos aplicados a los cultivos como la utilización  de quelantes tipo EDTA, pueden incrementar la sensibilidad de las bacterias  Gram negativas frente a esta bacteriocina, pero dicho efecto se ve disminuido  en productos lácteos fermentados sobre todo cuando la producción es <I>in  situ</I>, porque la acidez antagoniza la acción de los quelantes [2]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se ha demostrado también que un choque térmico puede aumentar la sensibilidad  de la célula bacteriana Gram negativa a la nisina, aunque el efecto ocurre  mayormente cuando la bacteriocina está presente durante el tratamiento  térmico y no cuando se adiciona después, debido a que las células pueden  recuperarse del efecto negativo causado por las temperaturas elevadas [3].  En este estudio, la leche fue pasteurizada a 65°C por 30 minutos y la nisina  fue adicionada después de la pasteurización; sin embargo, se observó en  los quesos una menor cantidad de coliformes totales con respecto al control  (P&lt;0,05). </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Estos resultados concuerdan con los encontrados por Cutter y Siragusa [23],  quienes reportaron actividad inhibitoria de nisina frente a bacterias Gram  negativas y son contrarios a los reportados por Salinas [38], que demostró  un efecto nulo de la nisina sobre la flora coliforme. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Recuento de Staphylococcus aureus (RSa)</B> </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La <a href="#tab4">TABLA IV</a> muestra los resultados obtenidos para el RSa<I> </I>en los quesos  blancos. En los tratamientos LACTIS y NISINA no se logró aislar ninguna  colonia de <I>Staphylococcus, </I>demostrándose por un lado, la efectividad de  la nisina para inhibir su crecimiento y por el otro, la capacidad del cultivo  iniciador para evitar la contaminación con el patógeno. Se observó un efecto  bactericida inmediato de la nisina en la leche sobre el <I>Staphylococcus</I>,  efecto que también ha sido observado sobre <I>Listeria monocytogenes</I> por Samelis  y col. [39]. </FONT></P>     <P ALIGN="center"> <a name="tab3"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v19n2/art15fig3.gif" width="751" height="199"></a></P>     
<P ALIGN="center"> <a name="tab4"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v19n2/art15fig4.gif" width="745" height="229"></a></P>    
<P ALIGN="justify"> <FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La norma COVENIN 3821-2003 exige un valor de 1x10<SUP>2</SUP> (mínimo) y 1x10<SUP>3</SUP> (máximo)  ufc/g de <I>Staphylococcus aureus</I> (2 y 3 Log ufc/g, respectivamente) [19],  en base a esto se demostró que el empleo de un cultivo iniciador de <I>Lactococcus  lactis </I>subsp<I>. lactis</I> y de nisina garantizan un queso blanco libre de estafilococos,  si la contaminación inicial en la leche es baja. Salinas, igualmente reportó  escaso recuento de <I>Staphylococcus</I> en los quesos blancos elaborados con  adición de nisina [38]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Cava y col., demostraron la efectividad de la adición de nisina para inhibir  el crecimiento de <I>Staphylococcus aureus </I>en queso blanco de pasta hilada  elaborado con leche cruda [6]. Ellos encontraron que la población de éste  se redujo a lo largo del periodo de almacenamiento de los quesos, pero  no se logró eliminar por completo, contrario a lo observado en el presente  estudio, donde en ningún momento se pudo aislar el microorganismo en los  quesos elaborados con leche a la cual se le adicionó nisina. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Los tratamientos LACTIS+S y STAPH resultaron iguales (P&gt;0,05), demostrando  que el cultivo iniciador no fue efectivo para evitar el crecimiento del  <I>Staphylococcus</I> cuando la población inicial en leche fue de aproximadamente  1x10<SUP>3</SUP> ufc/mL, dosis empleada en el tratamiento LACTIS+S. Esto entra en  contradicción con lo demostrado por Hamama y col., quienes al utilizar  un cultivo de <I>Lactococcus </I>productor de nisina, encontraron una reducción  de la carga de <I>Staphylococcus</I>, aunque en dicho estudio, el efecto biopreservador  se vio favorecido a la vez por la alta acidez encontrada en los quesos  elaborados [27]. Adicionalmente, Rodríguez y col., también encontraron  efecto inhibidor de cultivos biopreservadores sobre el crecimiento de <I>Staphylococcus  </I>en quesos [36], al igual que Salinas, cuando utilizó cultivos autóctonos  productores de bacteriocinas en la elaboración de quesos blancos [38]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> El bajo efecto inhibitorio observado del <I>Lactococcus lactis </I>sobre el microorganismo  patógeno, pudo ser consecuencia de la escasa producción de bacteriocina  por parte del mismo, tal como se puede evidenciar en la <a href="#tab5">TABLA V</a>; por el  contrario los estudios mencionados [27, 36, 38], además del efecto inhibidor,  encontraron una notable actividad bacteriocinogénica de los cultivos empleados. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>Concentración de nisina</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Las medias por cuadrado mínimo para la concentración de nisina en los días  0; 2; 8 y 10 de almacenamiento, se presentan en la <a href="#tab5">TABLA V</a>. En los tratamientos LACTIS y LACTIS+S, se observó un aumento de la concentración a medida que  transcurre el tiempo de almacenamiento, consiguiéndose para el décimo día  concentraciones de 59,78 y 9,68 UI/g, respectivamente, lo cual demuestra  la capacidad del cultivo para producir la bacteriocina bajo las condiciones  de almacenamiento de los quesos. Solo se encontró diferencia estadística  entre el tratamiento LACTIS y CONTROL para el día 10, debido a la amplia  variabilidad de los resultados obtenidos para las muestras de quesos entre  las diferentes repeticiones del experimento. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> El método empleado está fundamentado en la técnica de difusión en agar,  desarrollada inicialmente por Tramer y Fowler [43]. En la actualidad se  han desarrollado nuevos métodos, buscando mejorar algunos de los inconvenientes  que presenta esta técnica, como lo son dificultad para leer las zonas de  inhibición y aparición de falsas zonas causadas por interferencia de componentes  presentes en los diluentes o por efecto del pH [46]. La mayor limitación  de la técnica es la difusión de la nisina, la cual es proporcional a su  concentración solo en un limitado rango lineal, por lo que la concentración  en las muestras debe estar dentro del mismo para alcanzar precisión en  las lecturas [28]. Otros factores que pueden afectar los resultados son  la sensibilidad del microorganismo de ensayo, cantidad de agar y de sulfactante  añadido y pasos previos aplicados para mejorar la difusión de la nisina  [33]. Algunos investigadores concluyen que en la medición de la concentración  de nisina por medio del diámetro de las zonas de inhibición, el grado del  error es elevado y la repetitividad baja [5], lo cual puede explicar las  amplias variaciones encontradas para esta variable en éste estudio. Sin  embargo, esta técnica es la más ampliamente usada para la determinación  de nisina en alimentos [45], gracias a la relativa facilidad de ejecución  y de consecución de los materiales. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> En la <a href="#tab5">TABLA V</a> se puede observar que los resultados para el tratamiento NISINA correspondieron a los valores iníciales aplicados a la leche (200  UI/g). Igualmente la concentración de nisina en los estándares preparados  para elaborar la curva de calibración, se aproximó a los valores teóricos,  como se muestra en la <a href="#tab6">TABLA VI</a>. </FONT></P>      <p align="center"> <a name="tab5"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v19n2/art15fig5.gif" width="742" height="211"></a></p>     
<p align="center"> <a name="tab6"> <img border="0" src="/img/fbpe/rc/v19n2/art15fig6.gif" width="373" height="242"></a></p>     
<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se ha reportado que aproximadamente un 20% de la cantidad de nisina se  pierde durante el proceso de elaboración de los quesos y durante el almacenamiento  en frío de los mismos [24, 43]. No obstante, se pudo observar en el tratamiento  NISINA un aumento no significativo (P&gt;0,05), de la concentración de la  bacteriocina hacia el final del almacenamiento, posiblemente por efecto  de concentración causado por la pérdida de humedad de los quesos. La norma  COVENIN permite un máximo de 12,5 mg/Kg de nisina equivalente a 500 UI/g  [18]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La producción de nisina por parte del cultivo iniciador no fue muy elevada,  debido quizás a la población inicial del mismo en la leche, a su estado  fisiológico o a las condiciones bajo las cuales se almacenaron los quesos.  Zottola y col., encontraron altas concentraciones de nisina en quesos tipo  Gouda elaborados con cultivos productores de esta bacteriocina, lo cual  les permitió utilizarlos como ingrediente para lograr biopreservación en  estos tipos de quesos [47]. También se han descrito concentraciones elevadas  de nisina en queso Manchego elaborado con otras cepas de <I>Lactococcus lactis  </I>productor de nisina [37] y en queso Vidiago [34]. Otros trabajos en los  cuales se emplearon cultivos productores de bacteriocinas (diferentes a  la nisina), reportan concentraciones significativas de éstas en los quesos  elaborados [30, 36]. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> También se observó que la producción fue menor en aquellos queso a los  cuales se les inoculó <I>Staphylococcus aureus, </I>presumiblemente debido a un  posible antagonismo competitivo que afectó la producción de la nisina por  parte del <I>Lactococcus.</I> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Los quesos elaborados con cultivo iniciador de <I>Lactococcus lactis </I>subsp.  <I>lactis </I>ATCC 11454, sin inoculación de <I>Staphylococcus aureus </I>presentaron  bajos recuentos de éste microorganismo y coliformes totales, esto indica  que el cultivo iniciador puede ser una alternativa para evitar la contaminación  de los quesos por patógenos. Sin embargo, no se pudo observar inhibición  cuando el <I>Staphylococcus aureus </I>fue inoculado a la leche; lo que hace inferir  que su empleo como biopreservador en quesos elaborados con leche pasteurizada  inoculada a las concentraciones empleadas, no es efectivo. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> El cultivo iniciador de <I>Lactococcus lactis </I>subsp. <I>lactis </I>ATCC 11454 utilizado  fue capaz de producir nisina en los quesos durante el periodo de almacenamiento,  aunque en concentraciones bajas. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La adición de nisina a la leche empleada para la elaboración de quesos  blancos, resultó ser eficaz para inhibir el crecimiento de bacterias coliformes  y <I>Staphylococcus aureus </I>aún cuando la población inicial en la leche era  de 10<SUP>3 </SUP>ufc/mL<I>, </I>lo que permite concluir que su uso como biopreservador es  eficaz para obtener un producto de buena calidad microbiológica. </FONT></P>      ]]></body>
<body><![CDATA[<P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> La adición de nisina resultó ser más eficiente que el empleo de cultivos  iniciadores productores de esta bacteriocina para lograr biopreservación  en el queso. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se recomienda realizar nuevos estudios para evaluar el efecto de la población  inicial y estado fisiológico del cultivo de <I>Lactococcus</I>, para definir las  condiciones que favorecen sus propiedades biopreservadoras. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Se debe estudiar el efecto de la acidez, concentración de sal y condiciones  de almacenamiento de los quesos, sobre el efecto biopreservador del cultivo  y de la nisina adicionada a la leche para la elaboración de los quesos. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> También es necesario evaluar las características organolépticas y el periodo  de vida útil de los quesos blancos elaborados con cultivo iniciador de  <I>Lactococcus lactis </I>subsp. <I>lactis </I>y con la adición de nisina. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>AGRADECIMIENTO</B> </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> Los autores quieren dejar constancia de su agradecimiento al Consejo de  Desarrollo Científico y Humanístico de la Universidad del Zulia, a la empresa  Venelácteos y a la empresa Danisco y Calier Internacional, por el financiamiento  otorgado y por haber facilitado información y materiales necesarios para  la ejecución del estudio. </FONT></P>      <P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> <B>REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</B> </FONT></P>      <!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 1.ARISPE, I.; WHESTHOFF, D. Manufacture and Quality of Venezuelan White Cheese.  <B>J. Food Sci</B>. 49(4): 1005-1010. 1984. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616163&pid=S0798-2259200900020001500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 2.BOZIARIS, I.; ADAMS, M. Effect of chelators and nisin produced in situ  on inhibition and inactivation of <I>Gram</I> negatives. <B>Int. J. Food Microbiol</B>.  53: 105-113. 1999. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616164&pid=S0798-2259200900020001500002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 3.BOZIARIS, I.S.; ADAMS, M.R. Temperature shock, injury and transient sensitivity  to nisin in Gram negatives. <B>J. Appl. Microbiol. </B>91: 715-724. 2001. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616165&pid=S0798-2259200900020001500003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 4.BRIÑEZ, W.; FARÍA, J.; ISEA, W.; ARANGUREN, J.; VALBUENA, E. Efectos del  mestizaje, etapa de lactación y número de partos de la vaca sobre la producción  y algunos parámetros de calidad en leche. <B>Rev. Científ FCV-LUZ. </B>VI(1):  59-66. 1996. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616166&pid=S0798-2259200900020001500004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 5.CABO, M.; MURADO, M.; GONZÁLEZ, M.; PASTORIZA L. A method for bacteriocin  quantification. <B>J. Appl. Microbiol</B>. 87: 907-914. 1999. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616167&pid=S0798-2259200900020001500005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 6.CAVA, R.; SANGRONIS, E.; LUCCI, E.; WOYZECHOWSKY, L<B>.</B> Efecto de la adición  de nisina en queso fresco “telita” sobre la supervivencia de <I>Staphylococcus  aureus</I>.<I> </I><B>An. Venez Nutr. </B>19(2): 69-73. 2006. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616168&pid=S0798-2259200900020001500006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 7.CAVILAC. <B>La industria lechera en Venezuela. Su evolución.</B> Informe anual  de la Cámara Venezolana de la Industria Láctea. Caracas, Venezuela. 28  pp. 2006. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616169&pid=S0798-2259200900020001500007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 8.CENTER FOR FOOD SAFETY AND APPLIED NUTRITION (CFSAN). Food borne Pathogenic  Microorganisms and Natural Toxins. US Food and Drug Administration. Estados  Unidos. 1998. En línea: http://www.cfsan.fda. gov/~mow/intro.html. Dic.  2006. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616170&pid=S0798-2259200900020001500008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 9.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Alimentos. Método  para recuento de bacterias coliformes en placas de Petri, N° 1086-84.<B> </B>1984. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616171&pid=S0798-2259200900020001500009&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 10.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Alimentos. Método  para recuento de colonias de bacterias aerobias en placas de petri. (2da.  Revisión) N° 902-87. 1987. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616172&pid=S0798-2259200900020001500010&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 11.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Alimentos. Aislamiento  y recuento de <I>Staphylococcus aureus</I>, N° 1292-89. 1989. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616173&pid=S0798-2259200900020001500011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 12.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Leche cruda, Nº 0903-93.  1993. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616174&pid=S0798-2259200900020001500012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 13.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Leche fluida. Determinación  de grasa. Método de Gerber, N° 1053-82. 1982. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616175&pid=S0798-2259200900020001500013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 14.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Leche Fluida. Determinación  del punto crioscópico, Nº 940-82. 1982. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616176&pid=S0798-2259200900020001500014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 15.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Leche Pasteurizada,  Nº 0798:1994. 1994. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616177&pid=S0798-2259200900020001500015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 16.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Leche y sus derivados.  Determinación de cloruros, Nº 0362-82. 1982. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616178&pid=S0798-2259200900020001500016&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 17.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Leche y sus derivados.  Determinación de la Acidez Titulable, Nº 0658:1997. 1997. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616179&pid=S0798-2259200900020001500017&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 18.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Norma general de  Quesos, Nº 1813:2000. 2000. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616180&pid=S0798-2259200900020001500018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 19.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Queso Blanco, Nº  3821-2003. 2003. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616181&pid=S0798-2259200900020001500019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 20.COMISIÓN VENEZOLANA DE NORMAS INDUSTRIALES (COVENIN). Quesos. Determinación  de grasa, N° 1814-81. 1981. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616182&pid=S0798-2259200900020001500020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 21.COMMITTEE ON FOOD CHEMICALS CODEX. <B>Food Chemicals Codex.</B> Fourth supplement  to the third edition. National Academy Press. Washington D.C. 203-205 pp.  1994. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616183&pid=S0798-2259200900020001500021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 22.CUNNINGHAM, A.I. <B>Optimización de Rendimientos y Aseguramiento de Inocuidad  en la Industria de Quesería. Una guía para la pequeña y mediana empresa.</B>  Organización de los Estados Americanos-Cooperación Alemana para el Desarrollo.  163 pp. 2000. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616184&pid=S0798-2259200900020001500022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 23.CUTTER, C.N.; SIRAGUSA, G.P. Population reductions of Gram-negative pathogens  following treatments with nisin and chelators under various conditions.  <B>J. Food Protect. </B>58: 977-983. 1995. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616185&pid=S0798-2259200900020001500023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 24.DAVIES, E; BEVIS, H.; DELVES-BROUGHTON, J. The use de bacteriocin, nisin,  as a preservative in ricotta-type cheeses to control the food-borne pathogen  <I>Listeria monocytogenes</I>. <B>Lett. Appl. Microbiol.</B> 24(5): 343-346. 1997. </FONT>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=1616186&pid=S0798-2259200900020001500024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><P ALIGN="justify"><FONT COLOR="000000" SIZE="2" FACE="Verdana"> 25.DEVLIEGHERE, F.; VERMEIREN, L.; DEBEVERE, J. New preservation technologies:  Possibilities and limitations. <B>Int. 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