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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Biocumulación y efecto del cadmio en juveniles del mejillon verde perna viridis (L.1758) (Mytiloida: Mytilidae)]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[We evaluated the potential for bioaccumulation of Cadmium in juveniles of the green-lipped mussel Perna viridis (with average antero-posterior length 12.67±3.02 mm) exposed to two sublethal concentrations of cadmium chloride (50 and 80 &#956;gCd/ L) and the immediate effect on the RNA/DNA ratio during an exposure period of 8 days. Cadmium levels were quantified in all tissues and the shell, using an atomic absorption spectrophotometer with air-acetylene flame. The ratio RNA/DNA was quantified in the abductor muscle. After two days of the experiment, the mussels showed the highest accumulation of Cd in tissues, which was proportional to the experimental concentrations, and then the levels in tissues remained unchanged during the rest of the experiment. Organisms in the control treatment maintained a constant amount of cadmium throughout the study. The accumulation in the shell was continuous and proportional to the concentration of the treatments. The ratio RNA/DNA showed a decline in both treatments, while organisms in the control group showed the highest levels and without significant changes throughout the experiment. Results showed an immediate incorporation of Cd in organisms, during the first 48 hours of exposure, with subsequent regulation of the metal, generating possibly a metabolic cost to counteract the toxic effect, leading to a decrease in RNA/ DNA ratio. Perna viridis is a species capable of regulating tolerable levels of cadmium, responding with effective regulatory mechanisms that allow it to acclimate to contaminated areas. The continuous accumulation of Cd in the shell suggests that this compartment can be used as an indicator of pollution for this metal in aquatic systems.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><b><font face="Verdana">Biocumulación y efecto del cadmio en  juveniles del mejillon verde perna viridis (L.1758) (Mytiloida: Mytilidae)</font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana">Biocumulación and effect of cadmium in  juveniles the green mussel perna viridis (L.1758) (Mytiloida: Mytilidae)</font></b></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana" size="2">Vanessa Acosta<sup>1</sup>,  César Lodeiros<sup>2</sup>, Osmar Nusetti<sup>1</sup>, Mairín Lemus<sup>1</sup></font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1 Universidad de Oriente,  Núcleo de Sucre, Escuela de Ciencias, Departamento de Biología, Cumaná  Venezuela. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2 Instituto Oceanográfico de  Venezuela, Departamento de Biología Pesquera, Cumaná Venezuela. E-mail: <a href="mailto:vanessaacosta@yahoo.com">vanessaacosta@yahoo.com</a></font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESUMEN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se evalúo la capacidad de  bioacumulación de cadmio en juveniles del mejillón verde Perna viridis con  longitud antero-posterior promedio (12,67 ± 3,02 mm) expuestos durante un  periodo de 8 días a dos concentraciones subletales de cloruro de cadmio (50 y 80  &#956;gCd/L) y su inmediato efecto sobre el índice ARN/ADN. Los niveles de cadmio se  cuantificaron en la totalidad de los tejidos y en la concha, usando un  espectrofotómetro de absorción atómica con llama de aire-acetileno. El índice de  ARN/ADN fue cuantificado en el músculo abductor. A los dos días del experimento,  los mejillones presentaron el mayor nivel de acumulación de Cd en los tejidos,  proporcional a las concentraciones experimentales, para luego mantener los  niveles en los tejidos sin cambios durante el experimento. Los organismos en el  tratamiento control mantuvieron una cantidad de cadmio constante durante todo el  estudio. La acumulación en la concha fue continua e igualmente proporcional a la  concentración de los tratamientos. El índice ARN/ADN presentó descenso en ambos  tratamientos, mientras que los organismos del grupo control mostraron los  mayores niveles y sin cambios significativos a lo largo del experimento. Los  resultados mostraron una inmediata incorporación del Cd en los organismos  durante las primeras 48 h, con posterior regulación del metal, lo cual generó  posiblemente un gasto metabólico asociado al proceso de contrarrestar el efecto  tóxico, conllevando a una disminución del índice ARN/ADN. Perna viridis es una  especie capaz de regular niveles tolerables de cadmio, respondiendo con  mecanismos eficaces de regulación que le permiten aclimatarse a zonas  contaminadas. La acumulación continua de Cd en la concha, sugiere a este  compartimiento como indicador de contaminación por este metal en sistemas  acuáticos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Palabras clave</b>: Metales  pesados, acumulación, relación, ARN/ADN.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">ABSTRACT</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">We evaluated the potential for  bioaccumulation of Cadmium in juveniles of the green-lipped mussel Perna viridis  (with average antero-posterior length 12.67±3.02 mm) exposed to two sublethal  concentrations of cadmium chloride (50 and 80 &#956;gCd/ L) and the immediate effect  on the RNA/DNA ratio during an exposure period of 8 days. Cadmium levels were  quantified in all tissues and the shell, using an atomic absorption  spectrophotometer with air-acetylene flame. The ratio RNA/DNA was quantified in  the abductor muscle. After two days of the experiment, the mussels showed the  highest accumulation of Cd in tissues, which was proportional to the  experimental concentrations, and then the levels in tissues remained unchanged  during the rest of the experiment. Organisms in the control treatment maintained  a constant amount of cadmium throughout the study. The accumulation in the shell  was continuous and proportional to the concentration of the treatments. The  ratio RNA/DNA showed a decline in both treatments, while organisms in the  control group showed the highest levels and without significant changes  throughout the experiment. Results showed an immediate incorporation of Cd in  organisms, during the first 48 hours of exposure, with subsequent regulation of  the metal, generating possibly a metabolic cost to counteract the toxic effect,  leading to a decrease in RNA/ DNA ratio. Perna viridis is a species capable of  regulating tolerable levels of cadmium, responding with effective regulatory  mechanisms that allow it to acclimate to contaminated areas. The continuous  accumulation of Cd in the shell suggests that this compartment can be used as an  indicator of pollution for this metal in aquatic systems.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>Key words</b>: Heavy metals,  mussels, accumulation, RNA/DNA.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Recibido: octubre 2012.  Aprobado: enero 2013. Versión final: marzo 2013</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">INTRODUCCIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En la actualidad los metales  pesados constituyen un serio problema a nivel mundial ya que pueden ser  bioacumulados por diferentes organismos acuáticos, lo que les permite ingresar a  cualquier nivel de la cadena trófica; en consecuencia, su estudio y evaluación  es de importancia en la preservación de los ecosistemas acuáticos (Bustamante et  al. 2000). Un grupo de organismos que ampliamente han sido utilizados para  estimar el grado y efecto de los metales pesados en los ecosistemas marinos, son  los moluscos bivalvos debido a la capacidad que tienen de tolerar, acumular y  depurar altas concentraciones de contaminantes (Pan y Wang 2008, Voets et al.  2009). Un buen ejemplo lo representan los mejillones de aguas templadas Mytilus  edulis, subtropicales Mytilus galloprovincialis y tropicales Perna viridis  (Gutiérrez-Galindo y Muñoz-Barbosa 2003, Yap et al. 2006, Rojas et al. 2009).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">De los metales pesados, el  cadmio constituye uno de los elementos más biotóxicos para la vida acuática,  debido a que no es esencial para el funcionamiento normal de los organismos. Se  ha demostrado que su presencia en los bivalvos produce alteraciones fisiológicas  y metabólicas, afectando procesos de trascripción y síntesis del ARN, transporte  a través de la membrana plasmática, funciones mitocondriales, así como la  estabilidad lisosómica (Vargas y Barracco 2001, Cheung et al. 2001, Zapata et  al. 2012)</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Una manera de conocer y evaluar  la influencia de agentes contaminantes en bivalvos que conlleven a la evaluación  de procesos fisiológicos relativos a la síntesis de proteínas, mediante pruebas  de laboratorio, es la relación del ARN con respecto al ADN, ya que es utilizada  como respuesta inmediata del crecimiento en un momento determinado (Acosta y  Lodeiros 2001, Wang 2002, Anton et al. 2008). La relación ARN/ADN ha tenido  aplicación en estudios sobre la biología del crecimiento de los organismos  acuáticos bajo condiciones controladas o en ambientes naturales (Belmar et al.  2008) y más recientemente ha sido empleada como herramienta para determinar en  organismos el grado de perturbación causado por la presencia de xenobióticos en  el ambiente. Por lo que es empleada para evaluar áreas afectadas por la  presencia de contaminantes, tanto orgánicos como inorgánicos (Wo et al. 1999,  Wang 2002, Tsangaris et al. 2010).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Perna viridis es un organismo  que presenta relevancia muy significativa, tanto como recurso pesquero como por  acuicultura (Manoj y Appukuttan 2003, Lodeiros et al. 1999, Acosta et al. 2009),  ha sido utilizado como bioindicador de contaminación en zonas tropicales del  Océano Indopacífico (Krishnakumar et al. 1996, Rajagopal 2006). En la  actualidad, la especie se ha expandido por el Atlántico tropical (Agard et al.  1992, Lodeiros et al. 1999), lo cual permite considerarla de amplia distribución  zoogeográfica. Estas características, junto con la elevada abundancia que  presenta durante todo el año, la importancia socioeconómica, y los conocimientos  que se tienen sobre su biología y principalmente sobre la ecotoxicología (Acosta  y Lodeiros 2001, Rojas et al. 2002, Narváez et al. 2005, Rojas et al. 2009,  Lémus 2010), han permitido considerarla como una de las especies más  representativas para estudios ecotoxicológicos en las costas de Venezuela y el  Caribe (Lodeiros 2011). En vista de ello, las evaluaciones referentes a sus  repuestas ante agentes contaminantes, son de gran importancia. El presente  estudio muestra la acumulación del cadmio en concentraciones subletales en  juveniles del mejillón verde Perna viridis y su efecto sobre la condición  fisiológica utilizando el índice ARN/ ADN.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">MATERIALES Y MÉTODOS</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los ejemplares de Perna viridis  fueron recolectados de un banco natural de la localidad de La Esmeralda  (10º,40’35’’N; 63º,30’50”W), ubicado en la costa norte del golfo de Cariaco,  estado Sucre, Venezuela. Los organismos fueron trasladados en contenedores  isotérmicos con agua de mar suficientemente aireada hasta el laboratorio donde  se aclimataron sin suministro de alimento durante 96 h a temperatura de 22 ±  1°C, salinidad de 35 ± 1 psu, pH 7,8 ± 2 y saturación de oxígeno del agua &gt; 90%.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Para el experimento se  utilizaron nueve acuarios de 40 L de capacidad, llenados con 20 L de agua de mar  filtrada (1 &#956;m) y tratada con luz ultravioleta. Se utilizaron 50 organismos  juveniles de tallas homogéneas (12,67 ± 3,02 mm; longitud dorso-ventral) por  cada acuario. Tres réplicas de estos acuarios, fueron utilizados para cada uno  de los siguientes tratamientos: exposición de 0 (control), 50 y 80 &#956;gCd/L en  forma de cloruro de cadmio (CdCl<sub>2</sub>) durante 8 días. Durante el periodo  experimental, cada 24 horas, se realizaron recambios del 50% de agua en los  acuarios con el fin de mantener constantes las concentraciones del metal y  conservar la calidad del agua. Posteriormente se realizaron mediciones en el  agua con la ayuda de un analizador de iones para registrar la cantidad de cadmio  y luego se procedió a añadir la solución patrón hasta completar los niveles  experimentales iniciales. Cada dos días, una vez iniciada la experiencia, se  tomaron 10 ejemplares al azar en cada réplica, e inmediatamente se congelaron a  -40°C para su análisis posterior.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La cuantificación de cadmio se  realizó en todo el tejido blando y en la concha, mediante un tratamiento previo  de deshidratación en una estufa a 70°C/48h hasta obtener peso constante. Una vez  deshidratados, el tejido y la concha se pulverizaron y luego se pesó 1 g de  tejido seco de las muestras. La digestión del tejido, se realizó siguiendo las  recomendaciones descritas en Bebiano y Machado (1997) con algunas  modificaciones: las muestras se colocaron en matraces de 100 mL y se les agregó  5 mL de una solución constituida por ácido nítrico y perclórico (3:1); mientras  que las conchas fueron digeridas con 5 mL de ácido nítrico, más 5 mL de agua  desionizada, ambas muestras fueron calentadas por separado a 100ºC/4h.  Posteriormente se procedió al filtrado de las muestras, diluyéndolas en agua  desionizada y filtrando en papel Whatman Nº 40, hasta alcanzar un volumen de 25  mL en matraces aforados. La concentración del metal se determinó usando  espectrofotómetro de absorción atómica con llama de aire-acetileno y corrector  de fondo de deuterio (Perkin Elmer, modelo 3110), a una longitud de onda de 229  nm, tomando el promedio de tres lecturas. Para las curvas de calibración se  utilizó un estándar de cadmio de 1000 ppm marca Fixanal. La precisión del método  fue verificada utilizando el estándar de referencia de tejido NIST Oyster tissue  1566a.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El índice de ARN/ADN fue  cuantificado en el músculo abductor a partir de una muestra de unos 80 mg de los  organismos de cada réplica de tratamiento, siguiendo la metodología establecida  por Canino y Calderone (1995). El tejido fue macerado en viales Eppendorf de 1,5  mL, hasta formar un homogeneizado. A cada vial se añadió 100 mL de solución de  sarcosina (1%), mezclando en un agitador eléctrico por 30 min. Se dejó reposar y  se mezcló nuevamente otros 30 min. Luego se agregó 900 mL de buffer (TRIS-EDTA),  se mezcló, y se centrifugó a 2500 rpm durante 15 min. A cada muestra y por  duplicado, se colocó 10 mL del sobrenadante en tubos de borosilicato (12x75 mm),  añadiendo 400 mL del buffer. Para la determinación del ARN se añadió 500 mL de  la solución de bromuro de etidio y para el ADN 500 mL de reactivo de Hoechst.  Las lecturas, tanto para el ARN como para el ADN, se realizaron a longitudes de  onda de 490 nm. Para estimar por extrapolación, las concentraciones de los  ácidos nucleicos, se establecieron curvas patrones tanto para el ARN y ADN. Para  esto se tomaron 200 mL de la solución estándar de ADN y de ARN, por separado, y  se colocaron en tubos de borosilicato, el cual contenía previamente 300 mL de  solución buffer (TRIS-EDTA), a partir del cual se realizaron diluciones seriadas  de 250 mL.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se aplicó análisis de varianza  de una vía. En los casos donde se determinaron diferencias significativas (p &lt;  0,05), se aplicó la prueba a posteriori de Sheffé, siguiendo las recomendaciones  establecidas en Zar (1984).</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">RESULTADOS Y DISCUSIÓN</font></b></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Los ejemplares expuestos a las  concentraciones experimentales de 50 &#956;gCd/L y 80 &#956;gCd/L sobrevivieron en el  transcurso del bioensayo, reafirmando a estas concentraciones como dosis  subletales. Durante los dos primeros días de exposición, los organismos  mostraron valores de cadmio significativamente diferentes (p &lt; 0,05), la  acumulación en los tejidos fue proporcional a los niveles presentes en el medio  (49 ± 10,33 &#956;gCd/g y 74 ± 20,16 &#956;gCd/g, respectivamente). En el grupo control  los valores se mantuvieron constantes (8 ± 2,03 &#956;gCd/g) durante todo el estudio  (<a href="#fig1">Fig. 1</a>).</font></p>     <p align="center"><a name="fig1"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n1/art05fig1.gif" width="499" height="391"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Después de transcurridas las 48  h de exposición, no se evidenciaron cambios significativos en el proceso de  acumulación del metal (67-72 &#956;gCd/L para 80 &#956;gCd/L y 49-50 &#956;gCd/g para 50 &#956;gCd/g,  respectivamente). Estos resultados sugieren que en menos de 48 h los mejillones  acumularon de manera eficiente el cadmio en el medio, para luego activar  mecanismos de control. De esta manera, se considera que el umbral de acumulación  en esta especie podría ser dependiente del tiempo y de los intervalos de las  concentraciones del metal. La condición de inanición pudo condicionar al bivalvo  a activar rápidos procesos metabólicos rápidos para el mantenimiento basal. En  este sentido, se debería diseñar estudios que incorporen esquemas experimentales  con y sin alimentación de los organismos para comparar dichas respuestas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Se ha demostrado que los  organismos pueden presentar tres estrategias principales para eludir la acción  tóxica del cadmio: 1) reducción de la entrada de metal, 2) aumento de la  excreción y 3) secuestro del metal dentro de los tejidos en forma no tóxica (Yang  y Thompson 1996, Nicholson y Lam 2005, Rojas et al. 2009). En nuestro estudio,  P. viridis posiblemente empleó una combinación de las estrategias anteriores,  con la finalidad de regular la concentración del metal en sus tejidos. De  acuerdo con los resultados obtenidos, esta especie presentó un comportamiento de  organismo regulador y no como un acumulador de cadmio, ya que mantuvo un  equilibrio entre la acumulación y la eliminación (caso contrario a lo observado  en la concha).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El grupo experimental no  expuesto (control), presentó valores de 8,24 ± 1,47 &#956;gCd/g, sugiriendo que los  organismos experimentales provenientes de la zona de La Esmeralda tenían  acumulado cadmio en sus tejidos (<a href="#fig1">Fig. 1</a>). La presencia del  Cd en la zona nororiental de Venezuela está principalmente relacionada con la  descomposición de la materia orgánica y liberación del metal al medio, producto  del fenómeno de surgencia costera que se presenta anualmente (Müller-Karger et  al. 1989, Acosta y Lodeiros 2004, Lemus et al. 2010). En este sentido, el cadmio  muestra un comportamiento biogeoquímico muy similar al de los nutrientes, por lo  tanto este metal, parece estar controlado por el ciclo de nutrientes en la  columna de agua, esta característica hace que las aguas de surgencia constituyan  la principal fuente de este metal en la zona, haciéndose biodisponible (Acosta y  Lodeiros 2004). De esta manera es posible que los organismos establecidos en el  nororiente de Venezuela, puedan contener cierta cantidad de cadmio en sus  tejidos debido a procesos naturales y antrópicos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">La adsorción de cadmio en la  concha presentó un ligero incremento en ambas concentraciones hasta finalizada  la experiencia (<a href="#fig2">Fig. 2</a>). A 80 &#956;gCd/L los niveles fueron  significativamente más elevados (p &lt; 0,05), sugiriendo incorporación continua  del metal en la concha. La explicación es que las conchas están hechas de  aragonita, una forma de carbonato de calcio que cambia sus átomos de calcio a  favor de los metales pesados, bloqueándolos en una forma sólida. Estos  resultados concuerdan con los reportados por White y Rainbow (1985), Phillips y  Rainbow (1997) y Acosta y Lodeiros (2004), quienes señalan que la adherencia de  los metales en la concha es constante con respecto a la concentración del medio,  proporcionándole a este compartimiento ventajas para determinar niveles de  metales en función de monitorear procesos de contaminación por metales pesados.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><a name="fig2"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n1/art05fig2.gif" width="512" height="361"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">El índice de condición  fisiológica ARN/ADN presentó diferencias significativas (p &lt; 0,05), con un  descenso progresivo de este índice en los tratamientos con las mayores  concentraciones experimentales en relación al tiempo de exposición (<a href="#fig3">Fig.  3</a>). En el grupo control se registraron los mayores niveles de ARN/ADN (15,1  ± 4,86), seguido de los organismos expuestos a 50 &#956;gCd/L (12,1 ± 2,45) y el  menor índice de condición se obtuvo a 80 &#956;gCd/L (3,6 ± 2,34). Los mejillones no  expuestos al cadmio presentaron los niveles mayores de ARN/ADN, acompañado por  síntesis de proteínas, sugiriendo mejor condición fisiológica con respecto a los  organismos expuestos. En este sentido, se ha demostrado que P. viridis expuesto  a concentraciones bajas de cadmio activa enzimas transportadoras de metales como  respuesta que ayuda a contribuir con la homeostasis del metal dentro del músculo  (Yang y Thompson 1996).</font></p>     <p align="center"><a name="fig3"> <img border="0" src="/img/fbpe/saber/v25n1/art05fig3.gif" width="503" height="363"></a></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">En los mejillones expuestos se  observó una disminución inmediata del índice, posiblemente relacionada con la  rápida acumulación del metal en las primeras 48 h, aunado al estado de inanición  en la cual se encontraban los organismos. Con relación al estado de inanición,  Viñoles et al. (2000), encontraron que el índice ARN/ADN en el tejido muscular  de P. viridis responde lentamente en presencia de estrés alimentario; sin  embargo, esta especie es capaz de utilizar la energía en forma de glucógeno,  contenida en el tejido muscular, para mantener un comportamiento de ajuste  energético, mostrando adaptación al estrés, resultando en un uso muy lento o  disminuido de la energía de reserva, hecho que se ve reflejado en los niveles  constantes de ARN/ ADN hasta el final de la experiencia.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">A 80 &#956;gCd/L, se produjo un  estado de estrés avanzado, que se evidenció en la condición fisiológica del  organismo, reflejado en su índice ARN/ADN. Este índice tendió a disminuir  progresivamente durante todo el período experimental, respuesta que pudo estar  asociada con la cantidad de cadmio acumulada durante los dos primeros días. No  obstante, los valores menores de ARN/ADN pudieron estar asociados con la baja  capacidad de síntesis de proteínas que son las que activan los mecanismos de  destoxificación y biotransformación del metal. Al comparar los resultados  obtenidos en las concentraciones de ARN y de los valores del cociente ARN/ADN en  Donax denticulatus expuestos a dosis subletales de cadmio, se evidenció  disminución de ambos parámetros, asociados con el aumento de la concentración  del metal al que fueron expuestos, posiblemente como consecuencia del efecto  tóxico del mismo (Anton et al. 2008). El índice ARN/ADN ha sido considerado como  indicativo del estado de la condición fisiológica en bivalvos y otros organismos  (Gómez et al. 1998, Bracho et al. 1999, Becker et al. 2005). </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">Perna viridis es una especie  capaz de regular niveles tolerables de cadmio, respondiendo con eficaces  mecanismos de regulación, que les permiten acondicionarse a zonas que puedan  estar contaminadas por este metal, siendo la relación ARN/ADN, un índice de  respuesta inmediata, que permite conocer la condición fisiológica en la cual se  encuentra el organismo en un momento determinado.</font></p>     <p align="justify"><b><font face="Verdana" size="2">REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</font></b></p>     <!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">1. Acosta V, Lodeiros C. 2001.  Evaluación del efecto del cobre sobre juveniles del mejillón verde Perna viridis  mediante la concentración de ADN y la relación ARN/ADN en el músculo abductor.  Rev. Cient. FCV-LUZ. XI (6):485-490.    &nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3233882&pid=S1315-0162201300010000500001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">2. Acosta V, Lodeiros C. 2004.  Metales pesados en la almeja Tivela mactroides (Born, 1778. Bivalvia: Veneridae)  en localidades costeras con diferentes grados de contaminación en Venezuela.  Cienc. Mar. 30(2):323–333.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">3. Acosta V, Glem M, Urbano T,  Natera Y, Himmelman J, Rey-Méndez M, Lodeiros C. 2009. Differential growth of  the mussels Perna perna and Perna viridis (Bivalvia: Mytilidae) in suspended  culture in the Golfo de Cariaco, Venezuela. J. World Aquac. Soc. 40(2):226-235. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">4. Agard J, Lishore R, Bayne B.  1992 Perna viridis (Linnaeu 1758) firt records of the Indo-Pacific green mussel  (Mollusca:Bivalvia) in the Caribbean. Caribb. Mar. Stud. 3:59-60.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">5. Anton Y, Lémus M, Chung K.  2008. Índice ARN/ADN como indicador de la condición fisiológica en ejemplares de  Donax denticulatus expuestos a dosis subletales de cadmio. Saber. 20(1, 2,  3):149-154.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Bebiano N, Machado L. 1997.  Concentration of metals and metallothioneins in Mytilus galloprovincialis along  the South Coast of Portugal. Mar. Pollu. Bull. 34(8):666-671.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">7. Becker C, Brepohl D,  Feuchtmayr H, Zollner E, Sommer F, Clemmesen C, Sommer U, Boersma M. 2005.  Impacts of copepods on marine seston and resulting effects on Calanus  fimarchicus RNA/ DNA ratios in mesocosm experiments. Mar. Biol. 146(3):531-541.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">8. Belmar D, Lemus M, Armas J,  Zapata C. 2008. Efectos de los efluentes del central azucarero de cumanacoa  sobre la condición fisiológica y biomarcadores de contaminación en el  gasterópodo Pomacea glauca (Linné, 1758). Rev. Invest. Mar. 29(1):33-38.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">9. Bracho M, Segnini M, Viñoles  I, Chung K. 2000. Efecto de la alimentación sobre la condición fisiológica del  mejillón verde Perna viridis (L. 1758) (Mollusca: Mytilidae) medido por la  relación ARN/ADN. Reunión 29 Asociación Laboratorios Marinos del Caribe. Cumaná,  Venezuela. 83 pp. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">10. Bustamante P, Grigioni S,  Boucher-Rodoni R, Caurant F, Miramand P. 2000 Bioaccumulation of 12 Trace  Elements in the Tissues of the Nautilus Nautilus macromphalus from New  Caledonia. Mar. Pollu. Bull. 40:688-696.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">11. Canino M, Calderone E.  1995. Modifications and comparison of two fluometric techniques for determining  nucleic acids and contents of fish larvae. Fish. Bull. 93:15-65.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">12. Cheung C, Zheng G, Li A,  Richardson B, Lam P. 2001. Relationships between tissue concentrations of  polycyclic aromatic hydrocarbons and antioxidative responses of marine mussels,  Perna viridis. Aquat. Toxicol. 52:189–203.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">13. Gómez J, Segnini M, Fuentes  M. 1998. Efecto del cobre sobre la condición fisiológica de Lima scabra, medida  por la razón ARN/ADN. Scientia (Panamá). 13(1):27-34.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">14. Gutiérrez-Galindo E,  Muñoz-Barbosa A. 2003. Variabilidad geográfica de la concentración de Hg, Co, Fe  y Ni en mejillones Mytilus californianus (Conrad, 1837) de la costa de Baja  California. Cienc. Mar. 29(1):21-34.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">15. Krishnakumar P, Asokan P,  Pill ai V. 1996. Physiological and cellular responses to copper and mercury in  the green mussel Perna viridis. Aquatic Toxicol. 18(3):163-1734.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">16. Lemus M, Laurent C, Acagua  A, Cabrera M, Aponte A, Chung K. 2010. Variación estacional de metales pesados  en Perna viridis, de la localidad de Guayacán, península de Araya, estado Sucre,  Venezuela. The Biologist (Lima). 8:126-138.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">17. Lodeiros C. 2011. Selección  de especies de moluscos bivalvos en el nororiente de Venezuela para ser  utilizados en bioensayos de toxicidad. X Congreso SETAC 2011, Cumaná, Venezuela.  p 32.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">18. Lodeiros C, Marín B, Prieto  A. 1999. Catálogo de moluscos del nororiente de Venezuela. Clase Bivalvia.  Edición APUDONS. 109 pp.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">19. Manoj R, Appukuttan K.  2003. Effect of temperature on the development, growth, survival and settlement  of green mussel Perna viridis (Linneaus, 1758). Aquac. Res. 34:1037-1045.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">20. Müll er-Karger F, McClain  C, Fisher T, Esaias W, Varela R. 1989. Pigment distribution in the Caribbean  Sea: observations from space. Prog. Oceanogr. 23:23-64.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">21. Narváez N, Lodeiros C,  Nusetti O, Lemus M, Maeda- Martínez A. 2005. Incorporación, depuración y efecto  del cadmio en el mejillón verde Perna viridis (L.1758) (Mollusca: Bivalvia).  Cienc. Mar. 31:91-102.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">22. Nicholson S, Lam P. 2005.  Pollution monitoring in southeast Asia using biomarkers in the mussel Perna  viridis (Mytilidae: Bivalvia. Environ. Int. 31:121-132.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">23. Pan K, Wang W. 2008. The  subcellular fate of cadmium and zinc in the scallop Chlamys nobilis during  waterborne and dietary metal exposure. Aquatic. Toxicol. 90:253-260.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">24. Phillips D, Rainbow P.  1997. Trace metal accumulation in marine invertebrates: Marine Biology or Marine  Chemistry. J. Mar. Biol. Ass. 77:195-210.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">25. Rajagopal S, Venugopalan V,  Van Der Velde G, Jenner H. 2006. Greening of the coasts: a review of the Perna  viridis Success Story. 40:273-297.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">26. Rojas L, Chang Y, Agard J,  Bekele I, Hubbard R. 2002. Heavy metals in green mussel (Perna viridis) and  oysters from Trinidad and Venezuela. Arch. Environ. Contam. Toxicol. 42:410–415.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">27. Rojas N, Lemus M, Rojas L,  Martínez G, Ramos Y, Chung K. 2009. Contenido de mercurio en Perna viridis al  norte del estado Sucre, Venezuela. Cienc. Mar. 25:91-99.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">28. Tsangaris C, Kormas K,  Strogyloudi E, Hatzianestis I, Neofitou C, Andral B, Galgani F. 2010. Multiple  biomarkers of pollution effects in caged mussels on the Greek coastline. Comp.  Biochem. Physiol. C. Toxicol. Pharmacol. 15:369-378.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">29. Vargas F, Barracco M. 2001.  Mecanismos de defensa de los moluscos bivalvos, con énfasis en pectínidos. En:  Los Moluscos Pectínidos de Iberoamérica: Ciencia y Acuicultura. Maeda, A. (ed).  pp. 127- 146.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">30. Viñoles I, Segnini M,  Bracho M, Chung K. 2000. Efecto de la temperatura de aclimatación sobre el  crecimiento instantáneo de Perna viridis (Bivalvia: Mytilidae), según el  coeficiente ARN/ ADN. Rev. Biol. Trop. 48(I):159-170.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">31. Voets J, Steen R, Blust R,  Bervoets L. 2009. Differences in metal sequestration between zebra mussels from  clean and polluted field locations. Aquatic Toxicol. 93:53-60.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">32. Wang W. 2002. Interactions  of trace metals and different marine food chains. Mar. Ecol. Prog. Ser.  243:295-309.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">33. Wo K, Lam P, Wu R. 1999. A  comparison of growth biomarkers for assessing subletal effects of cadmium on a  marine gastropod Nassarius festivus. Mar. Pollut. Bull. 39:165-173.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">34. White S, Rainbow R. 1985.  On the metabolic requirements for copper and zinc in mollusk and crustacean.  Mar. Environ. Res.16:215-229.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">35. Yang M, Thompson J. 1996.  Binding of endogenus copper and zinc to cadmium-induced metalbinding proteins  various tissues of Perna viridis. Environn. Contam. Toxicol. 30(2):267-273.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">36. Yap C, Ismail A, Edward F,  Tan S, Siraj S. 2006. Use of different soft tissues of Perna viridis as  biomonitors of bioavailability and contamination by heavy metals (Cd, Cu, Fe, Pb,  Ni, and Zn) in a semi-enclosed intertidal water, the Johore Straits. Environ.  Toxicol. Chem. 88:683-695.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">37. Zapata-Vívenes E, Rojas de  Astudillo L, Sánchez G, Barreto G. 2012. Heavy metals and related biomarkers in  Perna viridis (Bivalvia: Mytilidae) collected on the coast of Sucre State,  Venezuela Cienc. Mar. 38(3):517–528.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">38. Zar J. 1984. Biostatistical  analysis. (2 ed). Prentice- Hall, Inc., New Jersey. 120 pp.</font></p>       ]]></body>
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<label>1</label><nlm-citation citation-type="journal">
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<surname><![CDATA[Acosta]]></surname>
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<surname><![CDATA[Lodeiros]]></surname>
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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación del efecto del cobre sobre juveniles del mejillón verde Perna viridis mediante la concentración de ADN y la relación ARN/ADN en el músculo abductor]]></article-title>
<source><![CDATA[Rev. Cient. FCV-LUZ]]></source>
<year>2001</year>
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<page-range>485-490</page-range></nlm-citation>
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