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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar en Venezuela, desde el año 2003 a la actualidad: Una revisión]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[Amebiasis is an infection caused by Entamoeba histolytica. It represents one of the main causes of death for protozoans worldwide, ranking in fourth place according to the WHO, due to the high number of people living in extreme poverty, poor sanitation and inadequate hygiene standards; these being the major risk factors related to the occurrence of such infections. This amoeba shares similar characteristics with two other species: E. dispar and E. moshkovskii, thus being at present named as complex Entamoeba or Entamoeba histolytica/ dispar/moshkovskii. However, E. histolytica is the only capable of producing damage to the human body by its extraintestinal cycle. For this reason, it is important to use molecular biology techniques for differential diagnosis, although their high costs make it difficult to include these methodologies in the routine laboratory analyses in Venezuela. Therefore, its implementation for the diagnosis of these parasitic agents has mostly been through research. At present, few published epidemiological data about this illness have been released, reason for which there is not an up-to-date register of the true prevalence of these amoebae, giving instead a sub-registry. The tests currently used in routine parasitological laboratories do not discriminate between species, which mainly involves a problem in clinical diagnosis that reflects in the use of inadequate treatment, hampering the restitution of the health of affected patients.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[   <font FACE="Verdana">     <p ALIGN="center"><b>Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar en Venezuela,  desde el año 2003 a la actualidad. Una revisión</b></p>     <p ALIGN="center"><b>Entamoeba histolytica and Entamoeba dispar in Venezuela  from year 2003 to present. A review</b></p> </font>  <font FACE="Verdana" SIZE="2">     <p ALIGN="center"><b>Ángela Bracho Mora</b></p>     <p ALIGN="justify">Universidad del Zulia, Facultad de Medicina, Escuela de  Bioanálisis, Cátedra de Práctica Profesional de Parasitología, Maracaibo,  Venezuela. E-mail: <a href="mailto:angelitab60@gmail.com">angelitab60@gmail.com</a></p>     <p ALIGN="justify"><b>RESUMEN</b></p>     <p ALIGN="justify">La amibiasis es una infección producida por Entamoeba  histolytica. Representa una de las principales causas de muerte por protozoarios  a nivel mundial, ubicándose en el cuarto lugar según la OMS, debido al elevado  número de personas que viven en pobreza extrema, deficiente saneamiento  ambiental e inadecuadas normas higiénicas; siendo estos los principales factores  de riesgo relacionados con la aparición de dichas infecciones. Esta amiba  comparte características similares con otras dos especies: E. dispar y E.  moshkovskii, razón por la cual se le denomina actualmente complejo Entamoeba o  Entamoeba histolytica/dispar/moshkovskii. Sin embargo, es E. histolytica la  única con capacidad de producir daño al organismo humano por su ciclo  extraintestinal. Por esta razón, es importante utilizar técnicas de biología  molecular para su diagnóstico diferencial, aunque sus costos elevados hacen  difícil la inclusión de estas metodologías en los análisis de laboratorios  rutinarios en Venezuela. Por ello, su implementación para el diagnóstico de  estos agentes parasitarios, en su mayoría, ha sido a través de investigaciones.  Al presente, son escasos los datos epidemiológicos publicados sobre esta  enfermedad, razón por la cual no existe un registro actualizado de la verdadera  prevalencia de estas amibas, dando por el contrario un sub-registro. Las pruebas  actualmente utilizadas en los laboratorios de rutina parasitológica, no  discriminan entre especies, lo cual conlleva principalmente a un problema en el  diagnóstico clínico, que se reflejan en el uso tratamientos inadecuados,  dificultando finalmente la restitución de la salud a los pacientes afectados.</p>     <p ALIGN="justify"><b>Palabras clave</b>: Amibiasis, Entamoeba moshkovskii,  Venezuela, PCR.</p>     <p ALIGN="justify"><b>ABSTRACT</b></p>     <p ALIGN="justify">Amebiasis is an infection caused by Entamoeba histolytica. It  represents one of the main causes of death for protozoans worldwide, ranking in  fourth place according to the WHO, due to the high number of people living in  extreme poverty, poor sanitation and inadequate hygiene standards; these being  the major risk factors related to the occurrence of such infections. This amoeba  shares similar characteristics with two other species: E. dispar and E.  moshkovskii, thus being at present named as complex Entamoeba or Entamoeba  histolytica/ dispar/moshkovskii. However, E. histolytica is the only capable of  producing damage to the human body by its extraintestinal cycle. For this reason,  it is important to use molecular biology techniques for differential diagnosis,  although their high costs make it difficult to include these methodologies in  the routine laboratory analyses in Venezuela. Therefore, its implementation for  the diagnosis of these parasitic agents has mostly been through research. At  present, few published epidemiological data about this illness have been  released, reason for which there is not an up-to-date register of the true  prevalence of these amoebae, giving instead a sub-registry. The tests currently  used in routine parasitological laboratories do not discriminate between species,  which mainly involves a problem in clinical diagnosis that reflects in the use  of inadequate treatment, hampering the restitution of the health of affected  patients.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><b>Key words</b>: Amoebiasis, Entamoeba moshkovskii,  Venezuela, PCR.</p>     <p ALIGN="justify">Recibido: septiembre 2014. Aprobado: septiembre 2014. Versión  final: octubre 2014.</p>     <p ALIGN="justify"><b>INTRODUCCIÓN</b></p>     <p ALIGN="justify">La amibiasis, es una enfermedad producida por el protozoario  Entamoeba histolytica, está distribuida en todo el mundo, pero las mayores  prevalencias se reportan en América Latina, África e India. Las zonas con mayor  endemia son los países tropicales y subtropicales, donde se presentan factores  sociodemográficos y problemas de accesibilidad a los servicios básicos, tales  como carencia de agua potable en la vivienda, hacinamiento y falta de redes de  aguas servidas, así como con la pobreza extrema (Clark 1998, Ximénez et al.  2007). Se han reportado actualmente alrededor de 500 millones de personas  infectadas en todo el mundo de los cuales, el 10% presentan síntomas clínicos  intestinales y del 2 al 20% extraintestinales, ocasionando una mortalidad que  oscila entre 40.000 y 110.000 casos por año (Walsh 1986, Cabellero-Salcedo et  al. 1994, Evangelopoulos et al. 2000, Ximénez 2000). El mecanismo de transmisión  más frecuente es por vía oral-fecal por la ingestión de los quistes  tetranucleados (forma de resistencia) por bebidas, alimentos y/o manos  contaminadas (Ximénez et al. 2007).</p>     <p ALIGN="justify"><b>Historia</b></p>     <p ALIGN="justify">Entamoeba histolytica fue reconocida por Lösh en un paciente  con disentería en 1875 en San Petersburgo; sin embargo, el autor no estableció  la relación causa-efecto entre la ameba y los síntomas del paciente (Jackson et  al. 1985, Kartulis 1986). Koch, en el año de 1883, revisando autopsias, en una  epidemia de cólera, demostró la presencia de las amebas en la submucosa de la  pared intestinal, en los capilares cercanos a la pared de abscesos hepáticos y  en el exudado de lesiones del hígado (Kartulis 1986). A este autor se le  considera el primero en afirmar que la ameba era el agente etiológico de la  disentería tropical, y que el absceso del hígado era una secuela de la  disentería amebiana (Pelletier y Magendie 1817).</p>     <p ALIGN="justify">En 1903, Heuber hizo la descripción de los quistes de esta  ameba, y Schaudinn la de los trofozoítos; este autor diferenció dos especies:  Entamoeba histolytica o ameba patógena y Entamoeba coli o no patógena.  Posteriormente se adoptó el nombre genérico de Entamoeba, que había sido  propuesto desde el siglo pasado (Faust 1944). En 1925, E. Brumpt propuso el  concepto de que E. histolytica comprendía dos especies morfológicamente  idénticas, una no patógena y otra patógena responsable de la amibiasis invasiva,  pero que era posible la existencia de portadores asintomáticos; propuso el  nombre de E. dispar para la primera y E. disenteriae para la segunda. Este  concepto no fue ampliamente aceptado y E. dispar pasó al anonimato, como  sinónimo de E. histolytica, durante más de medio siglo se empezaron a acumular  evidencias de que Brumpt estaba en lo cierto (Marín et al. 2000, Reyes y León  2002, Pinilla et al. 2008, Traviezo-Valles 2014).</p>     <p ALIGN="justify">En 1978, Sargeaunt empezó a analizar el patrón  electroforético de las isoenzimas de la hexoquinasa de E. histolytica  estableciendo su gran valor para el estudio de la relación hospedador-parásito.  Logró determinar dos tipos de patrones electroforéticos, los cuales denominó  “zimodemos patógenos” y “zimodemos no patógenos”. El autor, en conjunto con  otros investigadores de Estados Unidos, México, Europa, Israel, India, Japón y  Sur África, estudió la distribución mundial de los zimodemos del parásito en  alrededor de 10.000 casos de amebiasis. Todos los pacientes con amebiasis  invasiva estaban infectados con amebas que presentaban zimodemos patógenos y  aquellos con infecciones asintomáticas tenían zimodemos patógenos y no  patógenos. Estos hallazgos condujeron a Sargeaunt a postular en 1982 que en la  amibiasis estaban involucradas dos especies, una patógena y otra no patógena, y  que la propuesta de Brumpt debía ser aceptada (Riquelme y Uribe 2004).</p>     <p ALIGN="justify">Los estudios de Sargeaunt y un grupo de investigadores de Sur  África permitieron llegar a la conclusión de que la ameba clásicamente conocida  como E. histolytica en realidad comprende dos especies morfológicamente  idénticas: una responsable de la enfermedad y otra un comensal intestinal (E.  dispar). Estudios genéticos han demostrado una divergencia genómica entre las  dos amebas (Tannich et al. 1989), hallazgo que constituye una evidencia  irrefutable de la existencia de dos especies diferenciables por métodos  bioquímicos, inmunológicos y genéticos.</p>     <p ALIGN="justify">Otro evento que causó confusión en el panorama de la  amibiasis fue el hallazgo en un paciente con diarrea de Laredo, Texas, en 1956;  de una amiba morfológicamente igual a E. histolytica pero a diferencia de ésta,  era capaz de crecer a temperatura ambiente (Dreyer 1961). Esta amiba se conoció  como la “raza Laredo de E. histolytica”. Subsecuentemente, se demostraron  diferencias antigénicas (Goldman et al. 1962), enzimáticas (Bragg y Reeves  1962), de susceptibilidad a las drogas (Entner y Most 1965) y de infectividad en  animales de experimentación (Goldman y Cannon 1967, Neal y Johnson 1968).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">La raza Laredo de E. histolytica es morfológicamente  indistinguible de E. moshkovskii, especie descrita por primera vez en aguas  servidas de Moscú, Rusia por Tshalaia en 1941 (Tshalaia 1941) y luego en otros  países (Scaglia et al. 1983) y se consideró como una amiba de vida libre. Ambos  tipos de amibas comparten algunos rasgos biológicos, que las diferencian de la  clásica E. histolytica y E. dispar, como la capacidad de crecer a temperatura  ambiente, la osmotolerancia y la resistencia a la emetina (Clark y Diamond 1991,  1997).</p>     <p ALIGN="justify">Clark y Diamond en 1991, demostraron, mediante estudios  moleculares, que la raza Laredo de E. histolytica es definitivamente E.  moshkovskii (Clark y Diamond 1991). Aunque los primeros aislamientos de esta  amiba se hicieron de aguas servidas, posteriormente se ha identificado cada vez  con mayor frecuencia en humanos (Clark y Diamond 1991, Ali et al. 2003, Parija y  Khairnar 2005, Fotedar et al. 2007), en países como Estados Unidos, Italia,  Irán, Turquía, Bangladesh, India y Australia (Clark y Diamond 1991, Parija y  Khairnar 2005, Solaymani-Mohammadi et al. 2006, Fotedar et al. 2007),  considerándolo como un comensal. Sin embargo, estudios recientes en India y  Bangladesh lo han identificado como el único probable enteropatógeno potencial  en pacientes con manifestaciones gastrointestinales, incluyendo la disentería (Haque  et al. 1998a, Parija y Khairnar 2005). Todo ello conlleva a una serie de  problemas clínicos y diagnósticos, pues aunque la única especie que provoca  patologías es E. histolytica, las otras dos amibas presentan detalles  morfológicos similares, lo que impide la diferenciación a través de microscopia  óptica, la técnica más frecuente para el diagnóstico de la amibiasis.</p>     <p ALIGN="justify">La aceptación de estas especies cambia drásticamente la  epidemiología de la amibiasis. Con base en la redefinición de E. histolytica, se  estima que del 10% de la población mundial alberga E. histolytica y E. dispar,  90% están colonizados por E. dispar y sólo el 10% por E. histolytica (Gathiram y  Jackson 1987, Ravdin et al. 1990); sólo una de cada 10 infecciones produce  enfermedad (Stamm et al. 1976) dado que no se han realizado estudios  epidemiológicos de E. moshkovskii con respecto a E. histolytica y E. dispar para  conocer la verdadera prevalencia de esta nueva especie de amiba (Chacín 2010).</p>     <p ALIGN="justify"><b>Manifestaciones clínicas</b></p>     <p ALIGN="justify">La infección por E. histolytica puede resultar en diferentes  presentaciones clínicas: como una infección asintomática, una infección  sintomática sin invasión de tejido o con invasión de tejido. Los factores  responsables de que en unos casos la infección amibiana sea por completo  asintomática que en otros llega incluso a amenazar la vida del hospedador, son  múltiples y dependen tanto del parásito como del hospedador y del medio  ambiente. La mayoría de las infecciones por E. dispar y E. moshkovskii son  asintomáticas (Wilson et al. 1995, Murray et al. 2003).</p>     <p ALIGN="justify">Aun cuando se conoce esta amplia variedad de manifestaciones  clínico-patológicas de la enfermedad y la capacidad destructiva de los  trofozoítos de E. histolytica en los tejidos afectados, sobre todo en el  intestino grueso y en el hígado, todavía se ignora mucho acerca de los  mecanismos intrínsecos de la amiba y los factores del hospedero que conducen a  la producción de las lesiones (Orozco et al. 1982). La amibiasis intestinal  puede ser asintomática o causar disentería o enfermedad extraintestinal, cuya  forma de presentación más frecuente es el absceso hepático amibiano (AHA). Los  pacientes con amibiasis intestinal sintomática o colitis amibiana refieren dolor  abdominal tipo cólico de varias semanas de evolución, en ocasiones tienen  pérdida de peso y diarrea, que puede ser acuosa con abundante moco y poca  materia fecal acompañada o no de sangre, cuando ésta existe se habla de  disentería amibiana (Ximénez 2007).</p>     <p ALIGN="justify">Por otra parte, alrededor del 80% de los pacientes que cursan  con AHA tienen manifestaciones clínicas después de dos a cuatro semanas de la  infección, aunque no existe un consenso con relación al periodo de incubación de  la enfermedad invasora propiamente dicho. La mayoría de los pacientes presentan  fiebre y dolor en el hipocondrio derecho, que puede ser sordo o similar a los de  origen pleurítico, con irradiación a hombro; es frecuente el dolor a la  palpación del hígado. Si bien es cierto el sitio primario de la infección es el  colon, menos de un tercio de los pacientes con AHA tiene diarrea activa (Ximénez  2007).</p>     <p ALIGN="justify"><b>Métodos de diagnóstico</b></p>     <p ALIGN="justify">El diagnóstico clínico de la amibiasis se confirma mediante  examen coprológico, generalmente con la confirmación microscópica de quistes o  trofozoítos característicos en las heces. Sin embargo, la examinación  microscópica tiene varias limitaciones la más importante es la inhabilidad de  distinguir E. histolytica de E. dispar y E. moshkovskii. Además, con frecuencia  las muestras fecales pueden presentar al examen microscópico quistes de otras  especies tales como: Entamoeba coli, Entamoeba hartmanni, Iodamoeba butschlii o  Endolimax nana, que pueden complicar el diagnóstico (Rivero et al. 2009).</p>     <p ALIGN="justify">La epidemiología de Entamoeba puede ser estudiada cultivando  trofozoítos y ejecutando técnicas de análisis de isoenzimas pero éstas son  laboriosas, costosas y consumen tiempo y no son practicadas de rutina por  laboratorios de diagnóstico. La detección de anticuerpos de amibas en suero de  pacientes ha sido reportada como indicador de infección por E. histolytica; sin  embargo, con los test serológicos, no se pueden distinguir las infecciones  pasadas de las recientes en individuos que emigren o residan en áreas endémicas  (Sargeaunt et al. 1978, Haque et al. 1993, 1998a). El desarrollo de técnicas  moleculares como la Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR) ha permitido la  diferenciación de estas especies. Esta técnica resulta de gran utilidad para  estudios epidemiológicos y, por su gran sensibilidad, permite detectar casos que  no han podido ser identificados al aplicar las pruebas convencionales, así como  diagnosticar infecciones mixtas (Tanyukel y Petri 2003).</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><b>Prevalencia Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar</b></p>     <p ALIGN="justify">El rango de prevalencia de la amibiasis es de 1% a 40% en  América Central y del Sur, Asia y África y de 0,2% a 10,8% en países  industrializados (Braga et al. 1998, Rivera et al. 1998). En México, Brasil,  Nicaragua y Ecuador, se han observado porcentajes de infección con E.  histolytica de 0% a 13,8% y de E. dispar de 2,8% a 7,5% (Braga et al. 1998,  Ramos et al. 2005, Levecke et al. 2011, Chacín-Bonilla 2013). En Bangladesh, se  demostraron nuevas infecciones por E. histolytica en 39% de los niños estudiados  durante un año, de los cuales 10% desarrolló diarrea y 3% disentería (Haque et  al. 2006).</p>     <p ALIGN="justify">En Venezuela, país en vías de desarrollo, con una numerosa  población infantil, se registra a la amibiasis como principal enfermedad  parasitaria, reportándose 100.000 casos al año con 80 muertes, sin embargo, es  importante aclarar que este registro se realiza exclusivamente con base en la  evaluación clínica (OPS 1998). Se han reportado tasas variables de infección por  el complejo E. histolytica/E dispar las cuales varían de 6,8 a 42%, distribuidos  en 1,8 a 29,5% para las áreas urbanas y hasta 20% en poblaciones rurales, con un  mayor porcentaje en los niños (Blanc 1992, Araujo et al. 2008).</p>     <p ALIGN="justify">De acuerdo al Boletín Epidemiológico Semanal Nº 05 (Semana  Epidemiológica del 26 de enero al 01 de febrero de 2014) se reportaron 1.957  casos de amibiasis a nivel nacional, con un riesgo más elevado en el grupo de  niños menores de 5 años, observándose que el grupo menor de 1 año registró la  mayor tasa de incidencia (28,61%). Las ocho entidades federales que reportaron  el mayor número de casos acumulan 67,2% correspondientes al total registrado en  el país, siendo los estados Zulia (531 casos 27,51%), Táchira (147/7,5%) y Sucre  (135/6,9%) los que ocupan los primeros lugares (MPPS 2014).</p>     <p ALIGN="justify">A nivel nacional son diversos los estudios que refieren la  prevalencia del complejo Entamoeba (Devera et al. 2005, Mora et al. 2005, Díaz  et al. 2006, Calchi et al. 2007, Solano et al. 2008, Pineda et al. 2010, Fuentes  et al. 2011), sin embargo, al indagar sobre las prevalencias de las especies del  complejo (E. histolytica, E. dispar y E. moshkovskii) las publicaciones son  escasas, esto probablemente se deba a que para su diferenciación se requiere la  utilización de pruebas especiales, las cuales son altamente laboriosas y  costosas. La mayoría de las investigaciones realizadas en Venezuela se presentan  en dos puntos del país (Este y Oeste), las cuales se han realizado en personas  sin discriminación de sexo, raza, edad, en poblaciones rurales y escasamente en  indígenas.</p>     <p ALIGN="justify">En las investigaciones que se han realizado, utilizan la  detección de antígenos o PCR en sus diferentes variantes. Comenzando en el año  2003, Rivero (2003) realizó una investigación en niños de un área endémica del  municipio Maracaibo, mediante la detección de coproantígenos, reportando 23,2%  de prevalencia de E. histolytica. Para el mismo año, Cedeño et al. (2008),  estudiaron la seroprevalencia de infección de E. histolytica a través de la  técnica de ELISA, obteniendo 57,29% (n = 275) en una población de diversos  centros hospitalarios del estado Sucre.</p>     <p ALIGN="justify">En el año 2008, se realizó un estudio epidemiológico y  molecular de cepas de E. histolytica y E. dispar en 428 pacientes con  sintomatología gastrointestinal de diarrea, de distintos centros de salud en  Cumaná, estado Sucre, por nested-múltiplex PCR obteniéndose una prevalencia para  E. histolytica de 6,31% y E. dispar de 4,44%, detectándose cuatro casos de  infecciones mixtas (Mora et al. 2008).</p>     <p ALIGN="justify">Rivero et al. (2009), utilizaron la técnica de PCR a una  comunidad susceptible a las parasitosis, y obtuvieron un total de 47 casos  positivos a estas amibas; de los cuales 22 individuos eran portadores de E.  histolytica (10,78%), 16 (7,84%) de E. dispar y 9 (4,41%) presentaron infección  mixta. En el mismo año, Rodríguez (2009) evaluó por métodos convencionales y  moleculares (Nested-multiplex PCR), individuos provenientes de diferentes  centros de salud de la ciudad de Cumaná, estado Sucre con la finalidad de  detectar e identificar Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar en individuos  sintomáticos y asintomáticos. Refiriendo cuatro casos sintomáticos de E.  histolytica (1,26%) y tres de E. dispar (0,95%), estos últimos distribuidos en  individuos sintomáticos y asintomáticos.</p>     <p ALIGN="justify">Rodulfo et al. (2012) diagnosticaron 150 muestras fecales  positivas mediante examen microscópico, provenientes de pacientes del anexo  pediátrico del “Hospital Luis Razetti” de Barcelona, estado Anzoátegui; donde  sólo 28,0% (42/150) fueron positivas al género Entamoeba mediante nested PCR;  evidenciándose un elevado sobrediagnóstico de E. histolytica. Además se  identificaron 9,3% infecciones por E. histolytica, 4,0% E. dispar, y 4,7%  infecciones mixtas.</p>     <p ALIGN="justify">Recientemente, Bracho et al. (2013a) detectaron anticuerpos  IgG anti-Entamoeba histolytica en indígenas de la comunidad de Toromo, estado  Zulia, encontrando una seroprevalencia de anticuerpos contra E. histolytica, del  83%. Los mismos autores (Bracho et al. 2013b) refieren en un estudio preliminar  efectuado en 50 niños menores de 2 años del Hospital Universitario de Maracaibo,  la positividad de seis muestras (12%) con E. dispar, dos (4%) con E. histolytica,  sin casos de asociación entre ambas amibas.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify"><b>Consideraciones finales</b></p>     <p ALIGN="justify">Como puede evidenciarse Entamoeba histolytica y Entamoeba  dispar se mantienen en elevada frecuencia a nivel nacional, lo cual ha sido  demostrado a través de numerosos estudios a lo largo de estos años, y estas  cifras son compartidas con las reportadas a nivel mundial; sin embargo, surge la  pregunta ¿cuál es la verdadera prevalencia de Entamoeba moshkovskii en nuestro  país?, para dar respuesta a esta interrogante es necesario mencionar que  actualmente se están realizando investigaciones al respecto por lo que en un  futuro próximo se podrán evidenciar datos de interés de las tres especies que  conforman el complejo Entamoeba. y así confirmar una vez más el valor de las  técnicas de biología molecular en el diagnóstico epidemiológico de las  parasitosis y en especial en el caso de estas amibas.</p>     <p ALIGN="justify"><b>REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS</b></p>     <!-- ref --><p ALIGN="justify">1. Ali IK, Hossain MB, Roy S, Ayeh-Kumi PF, Petri WA, Haque  R, Clark CG . 2003. Entamoeba moshkovskii infections in children, Bangladesh.  Emerg. Infect. Dis. 9(5):580-584.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3245669&pid=S1315-0162201500010000300001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify">2. Araujo J, García Me, Díaz-Suárez O, Urdaneta H. 2008.  Amibiasis: Importancia de su diagnóstico y tratamiento. Mini-revisión. Invest.  Clin. 49(2):265- 271.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3245670&pid=S1315-0162201500010000300002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p ALIGN="justify">3. Blanc DS. 1992. Determination of taxonomic status of  pathogenic and non-pathogenic Entamoeba histolytica zymodemes using isoenzyme  analysis. J. Protozool. 39(4):471-479.&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3245671&pid=S1315-0162201500010000300003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><p ALIGN="justify">4. Bracho A, Rivero Z, Cordero Me, Chirinos R, González Y,  Uribe I, Atencio R, Villalobos R. 2013a. Anticuerpos IgG anti-Entamoeba  histolytica y prevalencia de enteroparasitos en indígenas de la comunidad de  Toromo, estado Zulia, Venezuela. Rev. Soc. Ven. Microbiol. 33(2):151-156. </p>     <p ALIGN="justify">5. Bracho A, Rivero Z, Arraiz N, Villalobos R, Urdaneta H.  2013b. Detección de Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar mediante PCR, en  niños menores de cinco años con diarrea en Maracaibo, Venezuela. Estudio  Preliminar. Invest. Clin. 54(4):373-381.</p>     <p ALIGN="justify">6. Braga LL , Mendonca Y, Paiva CA , Sales A, Cavalcante AL ,  Mann BJ. 1998. Seropositivity for and intestinal colonization with Entamoeba  histolytica and Entamoeba dispar in individuals in Northeastern Brazil. J. Clin.  Microbiol. 36(10):3044-3055.</p>     <p ALIGN="justify">7. Bragg PD, Reeves RE . 1962. Pathways of glucose  dissimilation in the Laredo strain of Entamoeba histolytica. Exp. Parasitol.  12:393-400. </p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">8. Cabellero-Salcedo A, Viveron-Rogel M, Salvatierra B,  Tapia-Conyer R, Sepúlveda-Amor J, Gutiérrez G, Ortiz-Ortiz L. 1994.  Seroepidemiology of amebiasis in Mexico. Am. J. Trop. Med. Hyg. 50(4):412-419.</p>     <p ALIGN="justify">10. Calchi M, Rivero Z, Acurero E, Díaz I, Chourio G, Bracho  A, Maldonado A, Villalobos R. 2007. Prevalencia de enteroparásitos en dos  comunidades de Santa Rosa de Agua en Maracaibo, estado Zulia, Venezuela 2006  Kasmera. 35(1):38-48.</p>     <p ALIGN="justify">11. Cedeño B, García A, Alfonzo N, Urdaneta H. 2008.  Seroprevalencia de Entamoeba histolytica y diagnóstico de amebiasis en Cumana,  estado Sucre, Venezuela. Saber. 20(3):318-328.</p>     <p ALIGN="justify">12. Chacín L. 2010. Amibiasis: implicaciones del  reconocimiento de Entamoeba dispar e identificación de Entamoeba moshkovskii en  humanos. Invest. Clín. 51(2):239-256.</p>     <p ALIGN="justify">13. Chacín-Bonilla L. 2013. Amebiasis: aspectos clínicos,  terapéuticos y de diagnóstico de la infección. Rev. Med. Chile. 141(5):609-615.</p>     <p ALIGN="justify">14. Clark CG . 1998. Amoebic disease. Entamoeba dispar, an  organism reborn. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg. 92(4):361-364.</p>     <p ALIGN="justify">15. Clark CG , Diamond LS . 1991. The Laredo strain and other  Entamoeba histolytica-like amoebae are Entamoeba moshkovskii. Mol. Biochem.  Parasitol. 46(1):11-18.</p>     <p ALIGN="justify">16. Clark CG , Diamond LS . 1997. Intraspecific variation and  phylogenetic relationschip in the genus Entamoeba as revelated by riboprinting.  J. Eukaryot. Microbiol. 44(2):142-154.</p>     <p ALIGN="justify">17. Devera R, Finali M, Franceschi G, Gil S, Quintero O.  2005. Elevada prevalencia de parasitosis intestinales en indígenas del Estado  Delta Amacuro, Venezuela. Rev. Biomed. 16(4):289- 291.</p>     <p ALIGN="justify">18. Díaz I, Rivero Z, Bracho A, Castellanos ME, Acurero E,  Marinella C, Atencio R. 2006. Prevalencia de enteroparásitos en niños de la  etnia Yukpa de Toromo, estado Zulia, Venezuela. Rev. Med. Chile. 134(1):72-78.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">19. Dreyer DA. 1961. Growth of a strain of Entamoeba  histolytica at room temperature. Texas Rep. Biol. Med. 19:393-396.</p>     <p ALIGN="justify">20. Entner N, Most H. 1965. Genetics of Entamoeba:  Characterisation of two new parasitic strains which grow at room temperature (and  at 37°C). J. Protozool. 12:10-13.</p>     <p ALIGN="justify">21. Evangelopoulos A, Spanakos G, Patsoula, Vakalis N. 2000.  A nested, multiplex PCR assay for the simultaneous detection and differentiation  of Entamoeba histolytica and Entamoeba dispar in feces. Ann. Trop. Med.  Parasitol. 94(3):233-240.</p>     <p ALIGN="justify">22. Faust EC . 1944. Some modern conceptions on amebiasis.  Science. 99:45-51.</p>     <p ALIGN="justify">23. Fuentes M, Galíndez L, García D, González N, Goyanes J,  Herrera E, Sánchez J. 2011. Frecuencia de parasitosis intestinales y  características epidemiológicas de la población infantil de 1 a 12 años que  consultan al Ambulatorio Urbano Tipo II de Cerro Gordo. Barquisimeto, estado  Lara. Enerojunio 2007. Kasmera. 39(1):31-42.</p>     <p ALIGN="justify">24. Fotedar R, Stark D, Beebe N, Marriott D, Ellis J,  Harkness J. 2007. PCR detection of Entamoeba histolytica, Entamoeba dispar, and  Entamoeba moshkovskii in stool samples from Sydney, Australia. J. Clin.  Microbiol. 45(3):1035-1037.</p>     <p ALIGN="justify">25. Gathiram V, Jackson TF. 1987. A longitudinal study of  asymptomatic carriers of pathogenic zymodemes of Entamoeba histolytica. S. Afr.  Med. J. 72(10):669- 672.</p>     <p ALIGN="justify">26. Goldm an M, Cannon LT . 1967. Antigenic analysis of  Entamoeba histolytica by means of fluorescent antibody. V. Comparison of 15  strains of Entamoeba, with information on their pathogenicity to guineapigs. Am.  J. Trop. Med. Hyg. 16(3):245-254.</p>     <p ALIGN="justify">27. Goldman M, Gleason NN, Carver RK. 1962. Antigenic  analysis of Entamoeba histolytica by means of fluorescent antibody III.  Reactions of the Laredo strain with 5 anti-histolytica sera. Am. J. Trop. Med.  Hyg.11:341-346.</p>     <p ALIGN="justify">28. Haque R, Krees K, Wood S. 1993. Diagnosis of pathogenic  Entamoeba histolytica infection using a stool ELISA based on monoclonal  antibodies to the galactose-specific adhesin. J. Infect. Dis. 167(1):247-249.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">29. Haque R, Ali IK, Akther S, Petri JR W. 1998a. Comparison  of PCR isoenzyme analisis and antigen detection for diagnosis of Entamoeba  histolytica infection. J. Clin. Microbiol. 36(2):449-452.</p>     <p ALIGN="justify">30. Haque R, Ali IK, Clark CG, Petri WA Jr. 1998b. A case  report of Entamoeba moshkovskii infection in a Bangladeshi child. Parasitol.  Int. 47(3):201-202.</p>     <p ALIGN="justify">31. Haque R, Mondal D, Duggal P, Kabir M, Roy S, Far BM,  Bradley S, Petri W. 2006. Entamoeba histolytica infection in children and  protection from subsequent amebiasis. Infect. Immun. 74(2):904- 909.</p>     <p ALIGN="justify">32. Jackson TF, Gathiram V, Simjee A. 1985.  Seroepidemiological study of antibody responses to the zymodemes of Entamoeba  histolytica. Lancet. 1(8431):716-719.</p>     <p ALIGN="justify">33. Kartulis S. 1986. Zur Aetiologie der Dysenterie in  Aegypten. Virch. Arch. Path. Anat. 105(3):521- 531.</p>     <p ALIGN="justify">34. Marín E, Pinilla AE, López MC. 2000. Absceso hepático  amebiano. Revisión de 100 años de esta patología en Colombia. Acta Méd. Colomb.  25(5):218-226.</p>     <p ALIGN="justify">35. Mora L, García A, De Donato M. 2005. Prevalencia del  Complejo Entamoeba histolytica/Entamoeba dispar en pacientes con síntomas  gastrointestinales de diarrea procedentes de Cumaná, estado Sucre. Kasmera.  33(1):33-45.</p>     <p ALIGN="justify">36. Mora L, García A, De Donato M, Urdaneta H. 2008. Estudio  epidemiológico y molecular de cepas de Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar  en pacientes con diarrea en Cumaná, estado Sucre, Venezuela. Invest. Clin.  49(2):225-237.</p>     <p ALIGN="justify">37. Murray P, Baron E, Jorgensen J, Pealler M, Yolken R.  2003. Manual of Clinical Microbiology. ASM Press, Washington DC, USA, pp. 2113  MPPS (Ministerio del Poder Popular para la Salud) 2014. Boletín Epidemiológico.  Semana Epidemiológica N° 05, 26 de enero al 01 de febrero de 2014. Año de  edición LXIII. Disponible en línea en: <a href="http://www.mpps.gob.ve/index.php?option=com_phocadownload&view=category&id=43:ano2014&Itemid=915"> http://www.mpps.gob.ve/index.php?option=com_phocadownload&amp;view=category&amp;id=43:ano2014&amp;Itemid=915</a>  (Acceso 06.08.2014).</p>     <p ALIGN="justify">38. Neal RA, Johnson P. 1968. The virulence to rats of five  Entamoeba histolytica-like strains capable of growth at 25°C and attempts to  discover similar strains. Parasitology. 58(3):599-603.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">39. Levecke B, Dreesen L, Barrionuevo-Samaniego M, Benítez  Ortíz W, Praet N, Brandt J, Dorny P. 2011. Molecular differentiation of  Entamoeba spp. in a rural community of Loja province, South Ecuador. Trans. R.  Soc. Trop. Med. Hyg. 105(12):737-739.</p>     <p ALIGN="justify">40. OPS (Organización Panamericana de la Salud). 1998.  Atención integrada a las Enfermedades Prevalentes de la Infancia. AIEPI. Reunión  sobre el control de las Helmintiasis intestinales en el contexto AIEPI, octubre  1998, pp. 184.</p>     <p ALIGN="justify">41. Orozco E, Martínez-Palomo A, González-Robles A. 1982. Las  interacciones lectina-receptor median la adhesión de Entamoeba histolytica a sus  células epiteliales. Arch. Inv. Med. 13(S3):153-157.</p>     <p ALIGN="justify">42. Parija Sc, Khairnar K. 2005. Entamoeba moshkovskii and  Entamoeba dispar-associated infections in Pondicherry, India. J. Health Popul.  Nutr. 23(3):292-295.</p>     <p ALIGN="justify">43. Pelletier J, Magendie F. 1817. Reserches chemies et  physiologiques sir l´ipecacuanha. Ann. Chimie Pysique. 4(6):172-185.</p>     <p ALIGN="justify">44. Pineda A, Sosa M, Pérez M, Gil M, Durán I, Castillo C,  Guedez C. 2010. Protozoos intestinales en pacientes que acuden al ambulatorio  rural Monay, estado Trujillo-Venezuela. Academia. 9(18):73-81.</p>     <p ALIGN="justify">45. Pinilla AE , López MC, Viasus D. 2008. Historia del  protozoo Entamoeba histolytica. Rev. Méd. Chile.136(1):118-124.</p>     <p ALIGN="justify">46. Ramos F, Morán P, González E, García G, Ramiro M, Gómez  A, Del Carmen M, De Leon G, Melendro EI , Valadez A, Ximenez C. 2005. High  prevalence rate of Entamoeba histolytica asymptomatic infection in a rural  Mexican community. Am. J. Trop. Med. Hyg. 73(1):87-91.</p>     <p ALIGN="justify">47. Ravdin JI, Jackson TF, Petri WA Jr, Murphy CF, Ungar BLP,  Gathiram V, Skilogiannis J, Simjee AE . 1990. Association of serum antibodies to  adherence lectin with invasive amebiasis and asymptomatic infection with  pathogenic Entamoeba histolytica. J. Infect. Dis. 162(3):768-772. </p>     <p ALIGN="justify">48. Reyes L, León R. 2002. Diferenciación de Entamoeba  histolytica/Entamoeba dispar y los nuevos hallazgos en la patogénesis de la  amibiasis intestinal. Rev. Costarric. Cienc. Méd. 23(3- 4):161-73.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">49. Riquelme F, Uribe R. 2004. Determinación de anticuerpos  anti-Entamoeba histolytica mediante inmunofluorescencia indirecta en pacientes  con pruebas hepáticas alteradas. Chile: Universidad del Talca, Facultad de  Ciencias de la Salud, Escuela de Tecnología Médica (Disertación Grado Licenciado  en Tecnología Médica), pp. 52.</p>     <p ALIGN="justify">50. Rivera WL, Tachibana H, Kanbara H. 1998. Field study on  the distribution of Entamoeba histolytica Entamoeba dispar in the Northern  Philippines as detected by the polimerase chain reaction. Am. J. Trop. Med. Hyg.  59(6):916-921.</p>     <p ALIGN="justify">51. Rivero Z. 2003. Detección y diferenciación de Entamoeba  histolytica y dispar en niños de una área endémica. Maracaibo: Universidad del  Zulia, Escuela de Bioanálisis, Departamento de Microbiología (Ascenso Profesor  Titular). pp. 45.</p>     <p ALIGN="justify">52. Rivero Z, Bracho A, Calchi M, Díaz I, Acurero E,  Maldonado A, Chourio G, Arraiz N, Corzo G. 2009. Detección y diferenciación de  Entamoeba histolytica y Entamoeba dispar mediante reacción en cadena de la  polimerasa en individuos de una comunidad del estado Zulia, Venezuela. Cad.  Saúde Pública. 25(1):151-159.</p>     <p ALIGN="justify">53. Rodulfo H, Ahmar B, Rodríguez Me, Mora L, De Donato M.  2012. Nested PCR reveals elevated overdiagnosis of E. histolytica in Barcelona,  Venezuela. Invest. Clin. 53(4):365-377.</p>     <p ALIGN="justify">54. Rodríguez M. 2009. Entamoeba histolytica y Entamoeba  dispar en individuos sintomáticos y asintomáticos por métodos convencionales y  moleculares provenientes de diferentes centros de salud de la ciudad de Cumaná,  estado Sucre. Cumaná: Universidad de Oriente, Escuela de Ciencias, Departamento  de Bioanálisis [Disertación Grado Licenciada en Bioanálisis], pp. 64.</p>     <p ALIGN="justify">55. Sargeaunt PG, Willians JE , Grene JD. 1978. The  differentiation of invasive and non-invasive Entamoeba histolytica by isoenzyme  electrophoresis. Trans. R. Soc. Trop. Med. hyg.72(5):519-521.</p>     <p ALIGN="justify">56. Scaglia M, Gatti S, Strosselli M, Grazioli V, Villa MR.  1983. Entamoeba moshkovskii (Tshalaia, 1941): morpho-biological characterization  of new strains isolated from the environment, and a review of the literature.  Ann. Parasitol. Hum. Comp. 58(5):413- 422.</p>     <p ALIGN="justify">57. Solano L, Acuña I, Barón M, Morón A. 2008. Asociación  entre pobreza e infestación parasitaria intestinal en preescolares, escolares y  adolescentes del sur de Valencia estado Carabobo-Venezuela. Kasmera.  36(2):37-147.</p>     <p ALIGN="justify">58. Solaymani-Mohammadi S, Rezaian M, Babaei Z, Rajabp our A,  Meamar AR , Pourbabai AA , Petri WA Jr. 2006. Comparison of stool antigen  detection kit and PCR for diagnosis of Entamoeba histolytica and Entamoeba  dispar infections in asymptomatic cyst passers in Iran. J. Clin. Microbiol.  44(6):2258-2261.</p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p ALIGN="justify">59. Stamm WP, Ashley MJ, Bell K. 1976. The value of amoebic  serology in an area of low endemicity. Trans. R. Soc. Trop. Med. Hyg.  70(1):49-53.</p>     <p ALIGN="justify">60. Tanyukel M, Petri W. 2003. Laboratory diagnosis of  amebiasis. Clin. Microbiol. Rev. 16(4):713-729.</p>     <p ALIGN="justify">61. Tannich E, Horstmann RD, Knobloch J, Arnold HH . 1989.  Genomic DNA differences between pathogenic and non-pathogenic Entamoeba  histolytica. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 86(13):5118-5122.</p>     <p ALIGN="justify">62. Traviezo-Valles L. 2014. Fritz Schaudinn, su época y su  relación con amibiasis, malaria y sífilis. Saber. 26(1):5-9.</p>     <p ALIGN="justify">63. Tshalaia LE. 1941. On a species of Entamoeba detected in  sewage effluents. Med. Parazit. (Moscow). 10:244-252.</p>     <p ALIGN="justify">64. Ximénez C. 2000. Parasitosis intestinales en México.  Cuadernos FunSalud (34). D.R. Fundación Mexicana para la Salud, México DF,  México, p. 70</p>     <p ALIGN="justify">65. Ximénez C, Morán P, Ramos F, Ramiro M. 2007. Amibiais  intestinal: estado actual del conocimiento. Med. Int. Mex. 23(5):398-407.</p>     <p ALIGN="justify">66. Walsh JA. 1986. Problems in recognition and diagnosis of  amebiasis: estimation of the global magnitude of morbidity and mortality. Rev.  Infect. Dis. 8(2):228-238.</p>     <p ALIGN="justify">67. Wilson M, Schantz P, Pieniazek N. 1995. Diagnosis of  parasitic infections: inmunologic and a molecular methods. In: Murray PR, Baron  EJ , Pfaller MA, Tenover FC, Yolken RH (Eds). Manual of Microbiology, 6th ed.  American Society for Microbiology, Washington, DC, USA, pp. 1159- 1170.</p> </font>       ]]></body>
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