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<article-title xml:lang="es"><![CDATA[Evaluación de la calidad higiénico-sanitaria de leche cruda y pasteurizada expendida en el estado Carabobo, Venezuela]]></article-title>
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<article-title xml:lang="en"><![CDATA[Evaluation of the hygienic-sanitary quality of raw and pasteurized milk from Carabobo, Venezuela]]></article-title>
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<abstract abstract-type="short" xml:lang="en"><p><![CDATA[In the present study the hygienic-sanitary quality of raw and pasteurized milk from various areas of the State of Carabobo, Venezuela, was assessed. Following the methodology described by the APHA and COVENIN, 100 pasteurized milk samples and 40 raw milk samples were analyzed. Counts of aerobic mesophilic bacteria, total coliforms, thermotolerant (faecal) coliforms, molds and yeasts were determined for pasteurized milk; for raw milk, only counts of mesophilic aerobic bacteria and methylene blue reduction test (MBRT) were carried out. The presence of Salmonella spp. was also investigated. Test results of pasteurized milk indicated that 92% of samples met the limits set for mesophilic aerobic bacteria established by COVENIN; however, 45% of samples were above the limit allowed in the Standard for total coliforms, and 72% of them exceeded the limit of acceptance in terms of thermotolerant coliforms; Salmonella spp. was not observed. With regard to raw milk, 72.5% of the samples had aerobic mesophilic bacteria counts above the limits, contrary to the MBRT results, which claimed that only 30% of samples did not comply with the norm. These findings strongly suggest the need for the country’s health authorities to implement more stringent sanitary control measures on milk from dairy farms and on the regional dairy industry, since the high microbiota found in raw milk and high counts of total coliforms and thermotolerant in pasteurized milk, in addition to diminishing the milk lifetime, could represent a potential risk to the consumer’s health.]]></p></abstract>
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</front><body><![CDATA[ <p align="center"><font face="Verdana"><b>Evaluación de la calidad higiénico-sanitaria de leche  cruda y pasteurizada expendida en el estado Carabobo, Venezuela</b></font></p>     <p align="center"><b><font face="Verdana">  Teresita Luigi<sup>1,3</sup>, Legna Rojas², Oscar Valbuena<sup>2,3</sup>.</font></b></p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2">1 Laboratorio de Prácticas Profesionales de Bacteriología.  Escuela de Bioanálisis. Facultad de Cs de la Salud.  Universidad de Carabobo. Venezuela</font></p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2">  2 Dpto de Biologia. Facultad de Ciencia y Tecnología.  Universidad de Carabobo. Venezuela</font></p>     <p align="left"><font face="Verdana" size="2">  3 Centro de Investigaciones de Microbiología Ambiental.  Universidad de Carabobo  Correspondencia: Teresita Luigi  E-mail: <a href="mailto:teresitaluigi@hotmail.com">teresitaluigi@hotmail.com</a></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESUMEN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En el presente trabajo se evaluó la calidad higiénico-sanitaria de  leche cruda y pasteurizada proveniente de diversas zonas del  estado Carabobo, Venezuela. Siguiendo la metodología descrita  por la APHA y COVENIN, fueron analizadas 100 muestras de  leche pasteurizada y 40 de leche cruda. En leche pasteurizada  fueron determinados recuentos de: bacterias aerobias mesófilas,  coliformes totales, termotolerantes (fecales), mohos y levaduras,  en leche cruda sólo se realizaron recuentos de bacterias aerobias  mesófilas y la prueba del tiempo de reducción del azul de metileno  (TRAM). Se investigó también la presencia de Salmonella spp.Los resultados de la leche pasteurizada, indican que 92% de  las muestras cumplieron con los límites para bacterias aerobias  mesófilas establecidos en la norma COVENIN. En relación a  coliformes totales, 45% de las muestras se encontraron por  encima del límite permitido en la Norma y 72% de las mismas  excedía el límite de aceptación para coliformes termotolerantes.No se detectó presencia de Salmonella spp. En cuanto a la leche  cruda, 72,5% de las muestras presentaron recuentos de bacterias  aerobias mesófilas por encima de los límites establecidos, contrario  a los resultados del TRAM, según los cuales sólo 30% de las  muestras incumplían la norma. Los resultados demostraron que  es necesario que las autoridades de salud del país implementen  medidas más estrictas en el control sanitario de la leche, desde  las fincas de ordeño hasta la industria láctea regional, ya que la  elevada microbiota en leche cruda y altos recuentos de coliformes  totales y termotolerantes en leche pasteurizada, además de  disminuir la vida útil de la leche, podrían representar un riesgo  potencial a la salud del consumidor.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Palabras clave:</b> Leche, bacterias Salmonella spp., calidad  microbiológica.</font></p>     <p align="center"><font face="Verdana" size="2">  <b>Evaluation of the hygienic-sanitary quality of raw and  pasteurized milk from Carabobo, Venezuela</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>ABSTRACT</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  In the present study the hygienic-sanitary quality of raw and  pasteurized milk from various areas of the State of Carabobo,  Venezuela, was assessed. Following the methodology described  by the APHA and COVENIN, 100 pasteurized milk samples and  40 raw milk samples were analyzed. Counts of aerobic mesophilic  bacteria, total coliforms, thermotolerant (faecal) coliforms, molds  and yeasts were determined for pasteurized milk; for raw milk, only  counts of mesophilic aerobic bacteria and methylene blue reduction  test (MBRT) were carried out. The presence of Salmonella spp. was  also investigated. Test results of pasteurized milk indicated that  92% of samples met the limits set for mesophilic aerobic bacteria  established by COVENIN; however, 45% of samples were above  the limit allowed in the Standard for total coliforms, and 72% of  them exceeded the limit of acceptance in terms of thermotolerant  coliforms; Salmonella spp. was not observed. With regard to raw  milk, 72.5% of the samples had aerobic mesophilic bacteria counts  above the limits, contrary to the MBRT results, which claimed that  only 30% of samples did not comply with the norm. These findings  strongly suggest the need for the country’s health authorities to  implement more stringent sanitary control measures on milk from  dairy farms and on the regional dairy industry, since the high  microbiota found in raw milk and high counts of total coliforms and  thermotolerant in pasteurized milk, in addition to diminishing the  milk lifetime, could represent a potential risk to the consumer’s  health.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Key words: </b>Milk, bacteria, Salmonella spp., microbiological quality</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Recibido:</b> Abril 2012 <b>Aprobado:</b> Diciembre 2012</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>INTRODUCCIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  El consumo de leche en las diferentes sociedades data  de épocas muy remotas, antes de la era Cristiana, según  diferentes fuentes. Este producto juega un papel de singular  importancia en la nutrición humana, por considerarse un  alimento casi completo y de sustento de diferentes procesos  vitales y por constituir la materia prima de una gran variedad  de productos (1). En Venezuela, la norma 903 de la  Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN)  define la leche cruda como el producto íntegro, normal y  fresco obtenido del ordeño higiénico e ininterrumpido de  vacas sanas (2). Asimismo, COVENIN establece que la  leche pasteurizada es la leche cruda homogeneizada o no,  que ha sido sometida a un proceso térmico aprobado por la  autoridad competente, en condiciones tales que garanticen  la destrucción de microorganismos patógenos y la casi  totalidad de los microorganismos banales que pudiesen estar  presentes, sin que alteren sensiblemente las características  organolépticas y fisicoquímicas de la misma (3). La leche  pasteurizada, por ser un producto de origen animal además  de rico en diversos nutrientes, puede contaminarse con  un amplio espectro de microorganismos provenientes de  diferentes fuentes; algunos causan sólo alteraciones en las  características organolépticas de la leche (4); sin embargo,  se pueden encontrar bacterias patógenas cuando ocurren  fallas en el proceso térmico, cuando la leche cruda tiene una  población exagerada de microorganismos incrementándose  el margen de supervivencia y por contaminación post  pasteurización (1). El problema radica en que los patógenos  en leche pasteurizada son capaces de persistir sin causar alteración organoléptica alguna, con lo que aumenta el  riesgo sanitario, ya que el consumidor no puede sospechar  su presencia (4). Aunque la pasteurización, o tratamiento  por calor de la leche, ha contribuido al dramático descenso  de muchas de las enfermedades transmitidas por alimentos  (ETA), los brotes infecciosos asociados a leche pasteurizada  han continuado ocurriendo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cuanto a la ocurrencia de ETA en América Latina y el  Caribe, la mayor parte de las enfermedades de origen  alimentario pueden atribuirse al mal manejo de los  alimentos durante la preparación (5). Según la Organización  Mundial de la Salud (OMS), la incidencia anual de diarrea  estimada en el mundo es de 1500 millones de casos, con  una mortalidad anual de 3 millones de niños por debajo de  los cinco años de edad. Se conoce que 70% de las diarreas  se originan por la ingestión de alimentos contaminados con  microorganismos y/o sus toxinas (6). En los Estados Unidos,  se estimó que en el año 2011 ocurrieron 9,4 millones de  episodios ETA, lo cual resultó en 55.961 hospitalizaciones y  1.351 muertes (7). La diseminación de estas enfermedades  se ha relacionado principalmente con el consumo de  alimentos de origen animal, como carnes y productos  lácteos, entre otros (8). Los productos lácteos representan  un importante vehículo de ETA en el mundo; de hecho, la  contaminación post-pasteurización, la manipulación durante  el proceso de fabricación, el equipamiento y el abuso de  las condiciones de temperaturas durante el transporte  y almacenamiento puede resultar en altos niveles de  microorganismos patógenos en productos como el queso  y otros productos lácteos (9). Entre los agentes etiológicos  transmitidos por leche y productos lácteos que comúnmente  pueden causar intoxicación, toxiinfección o infección  alimentaria se encuentran miembros del género Salmonella.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Se han descrito brotes por miembros de este género en  distintos países, entre ellos, se destacan aquellos ocurridos  en varios estados de Estados Unidos ocasionados por  cepas resistentes de S. typhimurium vinculados a la leche  pasteurizada (8). Otros brotes incluyen microorganismos  como E. coli O157: H7 y Yersinia enterocolitica en el  Reino Unido en los cuales estuvieron implicados botellas  y cartones de leche pasteurizada de un local de productos  lácteos (10). También se destacan casos de intoxicación  estafilocóccica (11).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En relación a lo descrito anteriormente, dado que las fallas  en la pasteurización son poco frecuentes como causas de  brotes infecciosos y que la contaminación ocurre después de  la misma, algunos investigadores han recomendado enfatizar  mecanismos reguladores adicionales en un monitoreo postpasteurización  de la leche (5). Sin embargo, también es  importante la calidad microbiológica de la leche cruda como  materia prima ya que una elevada carga microbiana podría  interferir en su transformación tecnológica (1).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Prieto et al (12) indican que todos los sectores que  intervienen en cualquier área de los alimentos, productores  e industriales, se deben concientizar de que los productos  derivados nunca serán de mejor calidad que la materia prima  de la que procede. En relación con la afirmación previa, Díaz  señala que cuando la leche cruda es de mala calidad, no  se podrá obtener ningún derivado de buena calidad (1). En  Venezuela, hay desconocimiento de la calidad sanitaria de  alimentos expendidos al público en general; son escasas las  cifras oficiales de reportes donde se analice este aspecto  que repercute directamente en la salud de la comunidad,  e inclusive, en la economía del país. Por lo tanto, se hace  indispensable una evaluación adecuada de productos de  consumo masivo como la leche, con el propósito, como  indica Valbuena et al (4), de plantear medidas correctivas  en beneficio de la salud pública. Teniendo en cuenta la  relevancia de lo anteriormente expuesto, el objetivo de este  trabajo fue evaluar la calidad higiénico-sanitaria de leche  cruda y pasteurizada proveniente de distintos municipios del  estado Carabobo, Venezuela.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  MATERIALES Y MÉTODOS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Muestra: Estuvo constituida por 100 muestras de leche  completa pasteurizada de una misma marca, obtenidas en  20 diferentes expendios comerciales del municipio Valencia  (abastos, panaderías y supermercados), en cada local se  muestrearon por día 5 unidades muestras del producto. Se  analizaron también 40 muestras de leche cruda extraída  mediante ordeño manual matutino, 30 de ellas provenientes  de una receptoría de leche ubicada en el sector Urama  del municipio Juan José Mora y 10 provenientes de una  pequeña finca productora de queso artesanal, ubicada en el  municipio San Diego del estado Carabobo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Recolección de las muestras. Las muestras de leche  completa pasteurizada fueron recolectadas mediante  muestreo probabilístico de tipo aleatorio simple. Las  muestras de leche cruda se colectaron de cántaras con  capacidad de 36 litros usando un cucharón estéril y vertiendo  la muestra en frascos de vidrio con tapa, estériles, con  capacidad de 500 mL. Las muestras se colectaron dentro de  la primera media hora posterior al ordeño manual matutino.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Todas las muestras fueron transportadas al laboratorio en  recipientes isotérmicos con hielo para reducir al mínimo los  posibles cambios microbiológicos durante el transporte y  almacenamiento de las muestras. Éstas se conservaron a  temperatura de refrigeración (4 ºC) por un lapso no mayor  de 24 horas. En general, la toma de muestra se rigió por las  normas de recolección de muestras de la Norma Venezolana  COVENIN 938 de Leche y Productos Lácteos. Métodos  para la toma de muestras (1ª Revisión) (13). Es de hacer  mención, que las muestras de leche pasteurizada tenían  fecha de elaboración reciente al momento de la toma de  muestra; se excluían las muestras con fechas cercanas a la  indicada para la culminación de su vida útil. La recolección  y procesamiento de muestras se efectuó en un período de  4 meses continuos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Determinación de Bacterias Aerobias Mesófilas (BAM)  (Recuento en placa). Según metodología estándar  sugerida por COVENIN (14) preparando diluciones seriadas  (1:10 hasta 1: 10.000) sembradas en placas con agar  cuenta estándar (BBL™ Becton Dickinson and Company.  Sparks, MD USA) a 32 ºC por 48 horas. Las colonias se  enumeraron al término del tiempo de incubación, en cuenta  colonias tipo Quebec; se determinó el número de colonias  presentes, considerando para el recuento únicamente las  placas que tenían entre 25 y 250 colonias. El resultado  expresado corresponde al número de microorganismos o  unidades formadoras de colonias por mililitro de leche (15).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">    Determinación de Mohos y Levaduras. Según  metodología estándar de siembra en profundidad sugerida  por la Asociación Americana de Salud Pública (APHA,  según siglas en inglés) (15), empleando como medio de  cultivo Sabouraud Dextrosa (BBL™ Becton Dickinson and  Company. Sparks, MD USA) con antibiótico (cloranfenicol  0,4 g/L). Las muestras fueron dejadas a temperatura  ambiente (25 a 29 ºC) por 5 días. Para el recuento se  seleccionaron las placas que tenían entre 10 y 100  colonias.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Determinación de Coliformes Totales y Termotolerantes  (fecales). Para la determinación de coliformes se empleó  el método de recuento de bacterias coliformes en placas de  Petri mediante siembra en profundidad en Agar MacConkey  (BBL™ Becton Dickinson and Company. Sparks, MD USA)  y Agar Bilis Rojo Violeta (HIMEDIA®, Himedia laboratories,  Mumbai, India), por duplicado, con posterior incubación  a 37 ºC y a 44 ºC por 24 horas (según metodología  estándar sugerida por la APHA) (15). Las colonias que  resultaron sospechosas de coliformes termotolerantes o  fecales, fueron tipificadas bioquímicamente por método  convencional empleando las siguientes pruebas: Agar  Hierro triple azúcar (TSI), Agar Lisina hierro (LIA), Urea,  Malonato, Citrato, MIO (motilidad- indol-ornitina).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Para los recuentos de todos los indicadores de calidad  sanitaria antes descritos, las siembras de las diluciones  seriadas de las muestras se realizaron por duplicado,  tomándose como resultado el número promedio de colonias  de las dos placas de una misma dilución multiplicado por la  dilución correspondiente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Tiempo de Reducción del Azul de Metileno (TRAM).  Para la realización de la misma se siguió la metodología  sugerida por la Norma COVENIN 939 (16). Para tal fin, se  emplearon tantos tubos de ensayo estériles como muestras  se analizaran; en cada tubo se agregó 1 mL de solución  de azul de metileno y 10 mL de muestra de leche cruda.  Se colocó a cada tubo una tapa de rosca; se invirtieron  tres veces suavemente, y se incubaron en baño de agua  a una temperatura de 36-37 ºC (la muestra alcanza esta  temperatura en un lapso no mayor de 10 minutos). La  primera lectura se realizó a los 30 minutos. Si durante este  período se decoloraba la muestra, se anotaba la lectura  como TRAM 30 minutos, procediendo a retirar dicha  muestra del baño de agua. En caso de persistir el color  azul “celeste”, las lecturas subsiguientes se realizaban a  intervalos de una hora. Al realizar cada lectura, si no había  iniciado la decoloración, el tubo se invertía una vez y se  colocaba de nuevo al baño de agua. Si había comenzado  la decoloración se dejaba el tubo en el baño de agua sin  moverlo.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Detección de Salmonella. La detección de Salmonella fue  realizada según la metodología descrita por COVENIN 1291  (17). Se desarrollaron tres etapas: Un Pre-enriquecimiento,  en 225 mL de agua peptonada al 0,1% donde se vertieron  25 mL de la muestra de leche pasteurizada, obteniendo  una dilución 1:10; posteriormente se incubó a 37 ºC por 24  horas. Transcurridas las 24 horas del pre-enriquecimiento,  se inició la etapa de enriquecimiento selectivo, para la cual  se tomó 1 mL de la dilución de la muestra pre-enriquecida  y se inoculó por separado en tubos contentivos de 10  mL de Caldo Selenito-Cistina (Merck KGaA, Darmstadt,  Alemania) y Tetrationato (BBL™ Becton Dickinson and  Company. Sparks, MD USA). Este último procedimiento  se realizó por duplicado, incubando uno de los tubos a 37 ºC  y el otro a 44 ºC por 24 horas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Enriquecimiento diferencial. Las muestras provenientes  de los caldos Selenito-Cistina y Tetrationato se sembraron  por agotamiento, tomando una asada de cada tubo (37 ºC  y 44 ºC), en placas de Petri con Agar MacConkey, Agar  Xilosa- Lisina-Desoxicolato (XLD) y Agar Salmonella-  Shigella (SS) (BBL™ Becton Dickinson and Company.  Sparks, MD USA) respectivamente. De esta manera, se  dispusieron de seis placas por cada muestra, las cuales  fueron incubadas durante 24 horas a 37 ºC. Posteriormente  se seleccionaron 2 a 5 colonias sospechosas de  Salmonella, para la caracterización fenotípica mediante el  empleó el sistema automatizado API Lab Plus (Biomeriux).  Análisis de los Resultados: Para un mejor análisis  e interpretación de los resultados, los datos obtenidos  fueron tabulados y sometidos a estadística descriptiva,  empleando un análisis de frecuencia (absoluta y  relativa), reportándose la distribución porcentual según  los indicadores de calidad sanitaria evaluados. Para los  recuentos se calcularon los valores medios, máximo y  mínimo de cada grupo (18).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>RESULTADOS</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Calidad sanitaria de la leche pasteurizada evaluada.  En el presente estudio se realizó un análisis de la calidad  microbiológica de 100 muestras de leche pasteurizada.  Para tal fin se evaluaron los microorganismos indicadores  de calidad sanitaria (bacterias aerobias mesófilas,  coliformes totales, termotolerantes o fecales y hongos  (mohos y levaduras), según la metodología clásica o  convencional sugerida en Venezuela por las normas  COVENIN y cuya presencia o ausencia en los productos  alimenticios ponen en evidencia indirectamente las  condiciones higiénicas bajo las cuales han sido manejados  o manipulados. En la <a href="#t1">tabla 1</a> se puede apreciar que la  carga de bacterias aerobias mesófilas determinada estuvo  entre 1,0 x 10 y 7,0 x 105 unidades formadoras de colonia  por mililitro de leche (UFC/mL) con una media global de  1,8 x 104 UFC/mL. También se observa que para coliformes  totales el recuento promedio fue de 2,6 x 103 UFC/mL con  un intervalo que osciló entre 1,0 x 10 y 8,0 x 104 UFC/mL.</font></p>     <p align="justify"><a name="t1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06t1.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En relación al recuento de coliformes termotolerantes o  fecales, se presenta un valor promedio de 0,7 x 10 (7 UFC/  mL) y un intervalo entre 0,1 x 10 y 2,0 x 10 UFC/mL. La  media al cuantificar la presencia de mohos fue de 0,2 x 10  UFC/mL con un recuento entre 0,1 x 10 y 0,9 x 10 UFC/mL  y para las levaduras el valor fue de 1,3 x 102 UFC/mL con  un intervalo de 1,0 x 10 a 1,0 x 104 UFC/mL. Es importante  mencionar que no se detectó presencia de Salmonella en  el 100% (n=100) de las muestras de leche pasteurizada  analizadas.</font></p>     <p align="justify"><a name="f1"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06f1.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la <a href="#f1">figura 1</a> se presentan los recuentos promedios  obtenidos para los indicadores de calidad sanitaria,  expresados en logaritmo, siendo para las bacterias aerobias mesófilas igual a 2,297, para coliformes totales y fecales  una media logarítmica de 1,895 y 0,734 respectivamente.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  También se observa gráficamente la media al cuantificar la  presencia de hongos la cual fue de 0,189 para mohos y un  valor de 1,154 para levaduras.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la <a href="#t2">Tabla 2</a> se muestra la distribución por frecuencia del  recuento de bacterias aerobias mesófilas (BAM) expresado  en unidades formadoras de colonia por mililitro de muestra  (UFC/mL) obtenido a partir de las 100 muestras de leche  pasteurizada evaluadas, encontrándose que 59% presentó  un recuento en el orden de 10 - 102 UFC/mL, 12% de las  mismas con un número de microorganismos que osciló  entre 102 - 103 UFC/mL, 21% en el orden 103 - 104 UFC/mL,  4% con 104 - 105 UFC/mL y finalmente 4% de las muestras  con un recuento en el orden de 105 - 106 UFC/mL.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="t2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06t2.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En las <a href="#f2">figuras 2</a> y 3 se expresan las distribuciones  porcentuales de recuentos de coliformes totales y  termotolerantes, obtenidos al evaluar microbiológicamente  100 muestras de leche pasteurizada objeto de este estudio,  destacándose que en 55% de las muestras se obtuvo  recuentos entre 10 y 100 UFC/mL de coliformes totales  y 37% con recuentos entre 8 y 10 UFC/mL de coliformes  termotolerantes.</font></p>     <p align="justify"><a name="f2"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06f2.jpg"></p>     
<p align="center"><a name="f3"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06f3.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Con relación a la presencia de hongos miceliares en la leche  pasteurizada, en la <a href="#f4">figura 4</a> se presentan los resultados del  porcentaje de unidades formadoras de colonias de mohos  por mililitro, aislados a partir de las muestras analizadas,  revelando que 100% de las muestras de leche analizadas  presentaron un recuento de hongos miceliares dentro de los  límites de aceptación, es decir, ninguna muestra excedió el  límite recomendado (1,0 x 102 UFC/mL).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Asimismo, en la <a href="#f5">figura 5</a> se observa la distribución  porcentual del recuento de levaduras en las muestras de  leche pasteurizada analizadas; de la misma se desprende  que 46% de las muestras se encontraron en el orden de  0 - 10 (UFC/mL), 52% en el orden de 10- 102 (UFC/mL)  y , resaltando que sólo 2% de las muestras mostraron un  recuento superior a 102 (UFC/mL) de levaduras, indicando  un crecimiento mayor al límite máximo permitido de 1,0 x  102 UFC/mL.</font></p>     <p align="justify"><a name="f4"></a></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06f4.jpg"></p>     
<p align="justify"><a name="f5"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06f5.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Grado de aceptabilidad de las muestras de leche  pasteurizada según COVENIN. En la <a href="#f6">figura 6</a> se presenta  el grado de aceptabilidad de las muestras de leche  pasteurizada analizadas, según el recuento de bacterias  aerobias mesófilas con relación al valor límite de referencia  de 2.0 x 104 UFC/mL (ó 20.000 UFC/mL) establecido por  la Norma COVENIN 798 (3), apreciándose, según la figura,  que la mayoría (92%) de las muestras cumplieron con los  límites microbiológicos establecidos en la norma, es decir,  presentaban recuentos bacterianos por debajo del valor  máximo antes señalado para aerobios mesófilos, según  el método de ensayo COVENIN 902 (14), considerándose  aceptables o aptas para consumo humano. No obstante,  se debe resaltar que de las 100 muestras analizadas, 8%  (n=8) correspondiente a las muestras 10, 14, 17, 23, 32,  38, 39 y 41 se encontraron fuera del límite microbiológico  para bacterias aerobias mesófilas (&gt;2.0 x 104 UFC/mL),  observándose en la <a href="#f6">figura 6</a> como puntos por encima de la  línea que representa el límite máximo permitido.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  UFC/mL = Unidades formadoras de colonias por mililitro de leche  pasteurizada.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Valor máximo permitido en COVENIN 798: 1994 = 2.0 x 104 o  20.000 UFC/mL</font></p>     <p align="justify"><a name="f6"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06f6.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2"><b>  Figura 6. Grado de Aceptabilidad de Muestras de Leche  Pasteurizada (n=100) según recuento de Bacterias Aerobias  Mesófilas (COVENIN 798). Valencia, Venezuela.</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la <a href="#t3">Tabla 3</a> se presenta el grado de aceptabilidad de  las muestras de leche pasteurizada analizadas, según  el recuento de Microorganismos Indicadores de Calidad  Sanitaria. (Norma COVENIN 798) distinguiéndose,  además del 92% de aceptación según BAM, que 55%  de las muestras poseían recuentos de coliformes totales  dentro de los limites permitidos, y 28% con resultados  aceptables según el indicador representado por coliformes  termotolerantes; asimismo, 100% y 98% de aceptabilidad  según los recuentos de Mohos y Levaduras obtenidos.</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><a name="t3"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06t3.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Calidad sanitaria de la leche cruda evaluada. En  la <a href="#t4">Tabla 4</a> se muestran los resultados obtenidos de la  evaluación de 40 muestras de leche cruda analizadas  mediante la metodología oficial sugerida por las Normas COVENIN para el recuento de bacterias aerobias  mesófilas. Del total de muestras analizadas, sólo 20%  (n=8) (correspondientes a las categorías A y B) pueden  ser utilizadas para la elaboración de leche pasteurizada,  mientras que 72,5% (n=29) de las muestras (sin  clasificación) no debería utilizarse para consumo humano,  según la normativa oficial venezolana (2), indicando la  posible contaminación bacteriana durante las operaciones  de ordeño, manipulación o almacenamiento antes o  durante su traslado a la receptoria (19). Con relación a  la prueba del Tiempo de Reducción de Azul de Metileno  (TRAM) (COVENIN 939) (16), según la norma COVENIN  903 (2), 30% (n=12) de las muestras analizadas se  clasifican como clase I, es decir, presentaron un TRAM  mayor de 4 horas, considerándose de buena calidad;  en la clase II, con un tiempo de 4 horas, 40,0% de las  muestras (n=16) son aceptables; mientras que 30% de  las muestras (n=12) se encontró en la clase III, es decir,  aquella leche considerada de mala calidad por presentar  un TRAM menor a 4 horas (<a href="#t4">Tabla 4</a>).</font></p>     <p align="justify"><a name="t4"></a></p>     <p align="center"><img border="0" src="/img/fbpe/s/v17n1/art06t4.jpg"></p>     
<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">    <b>DISCUSIÓN</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En la presente investigación, al evaluar la calidad  sanitaria de muestras de leche pasteurizada en la ciudad  de Valencia, según resultados previamente esbozados,  se observó una gran variabilidad entre los recuentos  de bacterias aerobias mesófilas obtenidos (<a href="#t1">Tabla 1</a>),  reflejado en el amplio intervalo de recuentos de 1,0 x 10  a 7,0 x 105 UFC/mL con un valor promedio 1,8 x 104, sin  embargo, el grado de aceptabilidad de las muestras de  leche pasteurizada, según lo establecido por la normativa  venezolana, fue satisfactorio. Los resultados obtenidos en  este estudio son similares a los de otros investigadores,  quienes refieren, en leche pasteurizada, recuentos  promedios de bacterias aerobias mesófilas alrededor de  104 UFC/mL. Por ejemplo, Da Silva et al (20) reportaron  valores entre 8 x104 y 3,0 x105 UFC/mL. Asi,mismo,  Tahiri (21) encontró un recuento de 3 x104 UFC/mL de  bacterias aerobias mesófilas en las muestras de leche  pasteurizada analizadas. En otros trabajos como el de  Chatterjee et al (22), las muestras de leche pasteurizada  no excedieron los límites microbiológicos permitidos.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los resultados aquí plasmados también coinciden con  los presentados en otras investigaciones realizadas en  Venezuela, entre las cuales destacan Valbuena et al (4),  quienes reportaron en un estudio realizado en la ciudad  de Maracaibo, estado Zulia, que 85,65% de muestras  de leche pasteurizada cumplían con lo normalizado por  COVENIN para la carga de bacterias aerobias mesófilas,  con una media de 4,3 x104 UFC/mL. También, Díaz y  Zambrano (23) muestran en su investigación que al  analizar tres diferentes marcas comerciales de leche  pasteurizada expendidas en la ciudad de San Cristóbal,  Estado Táchira, éstas presentaron recuentos bajos  de bacterias aerobias mesófilas, cumpliendo con los  límites establecidos en la norma COVENIN 798 (3).  </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Como se señaló en el marco metodológico, otro grupo  microbiano determinado, perteneciente a los llamados  microorganismos indicadores de calidad sanitaria, fueron los coliformes totales, los cuales en leche pasteurizada,  el número más probable por mililitro de muestra (NMP/  mL) no debe sobrepasar de 93, según lo establecido en  la norma COVENIN 798 (3); sin embargo, es de hacer  mención que en esta investigación en la determinación de  coliformes se empleó el método de recuento de coliformes  en placas de Petri (14, 24) y no el método del número más  probable (NMP), utilizando como valor máximo permitido  1,0 x 102 UFC/mL (4). En la <a href="#t3">Tabla 3</a> se observó que 55%  de las muestras de leche pasteurizada cumplieron con  los límites permitidos en cuanto al recuento de coliformes  totales.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Sin embargo, llama la atención que en 45% de  las muestras analizadas la presencia de coliformes totales  superó el recuento de 1 x 102 UFC/mL. Estos resultados  son similares a los obtenidos en Venezuela por Valbuena  et al (4), quienes reportaron que 50,93% de muestras de  leche pasteurizada superaban el valor exigido por la norma,  señalando que esos resultados eran inaceptables ya que  representan una contaminación post-proceso, ya que  este grupo de microorganismos no soporta el tratamiento  térmico de pasteurización. Sin embargo, el índice de  coliformes totales en las muestras de leche pasteurizada  analizadas, además de representar contaminación de  tipo general en el post-proceso, mediante exposición a  diversas fuentes de microorganismos ya sean humanas o  ambientales, podría ser también el reflejo de condiciones  higiénicas inadecuadas en el proceso, como por ejemplo,  deficiente desinfección de equipos. Esta carga elevada de  microorganismos coliformes puede indicar la posibilidad de  presencia y multiplicación de patógenos en los humanos,  pues, como se indica en la literatura, algunas bacterias  mesófilas normalmente no patógenas entran al cuerpo  humano por la vía oral y cuando se encuentran en número  muy elevado en los alimentos se reportan como causantes  de enfermedades alimentarias en los individuos que los  consumen (1).</font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cuanto a la determinación de coliformes  termotolerantes o fecales, tomando en consideración  que se ha establecido como recomendación un recuento  menor a 3 UFC/mL en leche pasteurizada, se observó que  72% de las muestras analizadas presentaron un índice  de contaminación por encima de lo permitido. Se debe  mencionar que, de este porcentaje de muestras fuera del  límite microbiológico recomendado, 14% exhibió una carga  de microorganismos por encima de 10 UFC/mL (<a href="#f3">figura  3</a>). Los resultados del recuento de coliformes totales y  termotolerantes en las muestras de leche pasteurizada  analizadas en la presente investigación difieren de los  valores conseguidos por Valbuena et al (4), donde se  reportan recuentos desde 4,0 x 10 UFC/mL hasta 1,1 x  103 UFC/mL; valores tan elevados como los conseguidos  por otros investigadores en Venezuela, donde en la ciudad  de Maracaibo reportan valores máximos de 2,0 x 104 UFC/  mL, en la región central del país 5,8 x 103 UFC/mL y en el  oriente, específicamente en Cumaná, de 1,3 x 104 UFC/mL  (4). Un factor a considerar con relación al elevado índice  de coliformes en general, y que no se evaluó en la presente  investigación, es la cadena de frío; condición ésta muy  importante al evitar la proliferación de los microorganismos  en este tipo de producto y por consiguiente el deterioro  del mismo, ya que la temperatura de la leche durante el  proceso de pasteurización y almacenamiento es uno de  los factores determinantes en el crecimiento bacteriano.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En cuanto a la presencia de hongos miceliares en la  leche pasteurizada, en los resultados expresados en la  <a href="#f4">figura 4</a> se revela que ninguna muestra excedió el límite  recomendado (1,0 x 102 UFC/mL), mientras que según el  recuento de levaduras obtenido (<a href="#f4">figura 4</a>) sólo 2% de las  muestras mostraron un crecimiento mayor al límite máximo  permitido de 1,0 x 102 UFC/mL. Es importante señalar que  aun cuando los mohos y levaduras no son señalados en la  normativa COVENIN 798 (3) para leche pasteurizada, su  detección como indicadores en leche y productos lácteos  podría ser de sumo interés para establecer, además de  calidad higiénica, la vida útil del producto.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los efectos que podrían ocasionar en el ser humano van  a depender de la cantidad de microorganismos presentes;  éstos participan en alteraciones de la leche pasteurizada  generalmente cuando la cantidad de colonias se encuentra  por encima de 106 UFC/mL, manifestándose como  sabores amargos (por proteólisis), sabores y aromas a  frutas, a ácidos, pútridos y otros; pueden originar también  viscosidad, además de, como ya se mencionó, disminuir la  vida comercial útil de la leche (1).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  En otro orden de ideas, se debe destacar que en las muestras  de leche pasteurizada evaluadas en esta investigación  no se detectó Salmonella. Sin embargo, es importante  mencionar que en algunas se aislaron enterobacterias  como Enterobacter cloacae (38%), Escherichia coli (45%),  Klebsiella pneumoniae (27%), Pseudomonas aeruginosa  (10%), y Pseudomonas putida (7%), representando una  microbiota de fondo o flora de alteración importante, la  cual, aún en bajas concentraciones, podría enmascarar o  dificultar el aislamiento de Salmonella u otros patógenos,  ya que estos microorganismos pueden influir en el  crecimiento característico de un patógeno en un alimento,  debido principalmente a la producción de metabolitos  antimicrobianos por parte de la flora competitiva y por la  utilización de los mismos nutrientes (25, 26). Además,  las enterobacterias mencionadas pueden sobrevivir a la  pasteurización, y aunque su temperatura óptima se ubica  en la categoría de mesófilos, en general no se multiplican o  lo hacen muy lentamente, a temperaturas inferiores a 7 ºC,  no causando problemas en la leche pasteurizada durante  su vida útil, cuando se refrigera a temperatura apropiada; a  diferencia de la presencia de microorganismos psicrotrofos  o psicrófilos, como el caso de Pseudomonas, que sí  podrían causar alteraciones por crecer a temperaturas  por debajo de 21 ºC, manteniendo activos, bajo tales  condiciones, sus sistemas enzimáticos, la permeabilidad  celular, la capacidad de degradar sustratos y de sintetizar  compuestos (1). En cuanto al contenido microbiano de la  leche cruda en Venezuela, Román et al (25), al analizar  muestras refrigeradas de leche cruda reportaron un  promedio de la carga de bacterias aerobias mesófilas de  5,2 x 107 UFC/mL. </font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Otros autores como Román et al (25)  y Revelli et al (26), reportaron medias por encima de 107  UFC/mL y 105 UFC/mL, respectivamente. Cepero et al (27),  en su trabajo encontraron recuentos promedios de 2-3 x  105 UFC/mL. De manera similar, Dávila et al (28) señalan  recuentos de 1,5 x 106 y 3,0 x 106 UFC/mL. Asimismo,  Sraìri et al (29) reportaron en su trabajo de investigación,  al analizar muestras de leche cruda, una media de 4,2  x 108 UFC/mL. Con relación a este tema, es importante  destacar que, entre otros autores, Díaz (1) comenta que  cuando la leche cruda es de mala calidad microbiológica,  aún cuando se apliquen procesos de higienización, se  puede correr el riesgo de accidentes indeseables en la  elaboración de productos diversos, con las consiguientes  pérdidas económicas, así como la posibilidad de encontrar  patógenos en el producto final que implican riesgos a la  salud del consumidor. En cuanto a la prueba del Tiempo de  Reducción de Azul de Metileno (TRAM) (COVENIN 939)  (16), según la norma COVENIN 903 (2) se destaca que 30%  de las muestras (n=12) resultaron clase III, es decir, leche  considerada como de mala calidad por presentar un TRAM  menor a 4 horas (<a href="#t3">tabla 3</a>). Estos resultados coinciden con  los valores de TRAM mayor a 8 horas reportados por Chen  et al (30); igualmente, Ramírez et al (31) mostraron como  resultado de su investigación un alto número de muestras  con TRAM mayor a 5 horas, a diferencia de Cepero et al  (27), quienes obtuvieron muestras de leche con TRAM de  3,5 horas. Al relacionar el recuento de bacterias aerobias  mesófilas (UFC/mL) con los resultados del TRAM, se  puede observar que en la mayoría de las muestras de leche  cruda no se presentó, como era de esperarse, una relación  inversamente proporcional entre ambos parámetros, por lo  que estos resultados no reflejaron las condiciones reales  de la leche en lo que a carga microbiana se refiere, lo cual  pone en duda la confiabilidad del TRAM como prueba de  plataforma o método rápido de análisis microbiológico de  la leche cruda, utilizada por años en muchas empresas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Autores como Burdová et al (32), Ramírez et al (31) y  Fernández y Hernández (33) tampoco encontraron relación  inversa entre el recuento bacteriano y el TRAM. La prueba  del TRAM consiste en medir el tiempo que tarda una mezcla  de leche y azul de metileno en ser decolorada (de azul a  blanco o leucobase), y se basa en la capacidad que tienen  algunos microorganismos de utilizar el oxígeno disuelto en  la mezcla, provocando un descenso del potencial de óxido  reducción y en consecuencia la decoloración del indicador  (azul de metileno) (16). Según este fundamento, es de  suponer que a medida que aumenta la carga bacteriana  en la leche, el indicador de óxido-reducción pasa más  rápidamente a su leucobase, representando así un  recuento metabólico indirecto; sin embargo, si el número  de microorganismos presentes en leche cruda con efecto  reductor es bajo, la prueba no concordaría con el recuento  bacteriano obtenido en placas, no reflejando, como ya se  mencionó, la contaminación microbiana real de la leche, lo  cual le hace perder valor como herramienta dentro de las  pruebas rápidas.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Conclusiones</b></font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  Los resultados de la evaluación de las muestras de  leche pasteurizada analizadas, indican que 92% de  las muestras cumplieron con los límites para bacterias  aerobias mesófilas establecidos en la norma COVENIN.  En relación a coliformes totales, 45% de las muestras se  encontraron por encima del límite permitido en la Norma  y 72% de las mismas excedía el límite de aceptación en  cuanto a coliformes termotolerantes. En cuanto a la leche  cruda, de acuerdo con el recuento de bacterias aerobias  mesófilas, 72,5% de las muestras presentaron recuentos  por encima de los límites establecidos, reflejando  condiciones higiénico-sanitarias deficientes al no cumplir  con lo establecido en las normas vigentes en Venezuela,  contrario a esta afirmación, los resultados del TRAM indican  que sólo 30% de las muestras incumplían la norma. Por  lo tanto, en este estudio se corroboran los resultados de  otros autores en cuanto a la poca confiabilidad del TRAM,  la cual ha sido utilizada por años en muchas empresas  lácteas venezolanas como prueba de plataforma. Este  aspecto debe ser revisado por los entes gubernamentales  encargados de establecer las normativas y métodos  oficiales en el país. En las muestras de leche pasteurizada  evaluadas no se detectó presencia de Salmonella spp, sin  embargo, los resultados demostraron que es necesario  que las autoridades de salud del país implementen  medidas más estrictas en el control sanitario de la leche,  desde las fincas de ordeño hasta la industria láctea  regional, ya que la elevada microbiota en leche cruda y  altos recuentos de coliformes totales y termotolerantes en  leche pasteurizada, además de disminuir la vida útil de la  leche, podrían representar un riesgo potencial a la salud  del consumidor.</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>Agradecimientos:</b> Al Departamento de Biología de la  Facultad de Ciencia y Tecnología de la Universidad de  Carabobo (UC). Al personal del Centro de Investigaciones  de Microbiología Ambiental (CIMA- UC), especialmente al  Dr. Luis Medina. A la Sra. Glenda Marinelli y la Sra. Yasmaira  Montesinos del Laboratorio de Practicas Profesionales de  Bacteriología de la Escuela de Bioanálisis, sede Carabobo  (UC).</font></p>     <p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  <b>REFERENCIAS</b></font></p>     ]]></body>
<body><![CDATA[<!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  1. Díaz C. Microbiología de la leche y de los productos lácteos.  Vol. I. Editorial Venezolana C.A. Mérida. Venezuela. 270 pp.  2000.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221118&pid=S1316-7138201300010000600001&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  2. Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN).  Norma Venezolana COVENIN: 903. Leche Cruda. Caracas-  Venezuela. Fondonorma. 1993.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221119&pid=S1316-7138201300010000600002&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  3. Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN)  Norma Venezolana COVENIN: 798. Leche Pasteurizada. 2ª  revisión general. Caracas, Venezuela. 1994.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221120&pid=S1316-7138201300010000600003&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  4. Valbuena E, Castro G, Lima K, Acosta W. Bríñez W, Tovar  A. Calidad microbiológica de las principales marcas de  leche pasteurizada distribuidas en la ciudad de Maracaibo,  Venezuela. Veterinaria. Rev Cient FCV-LUZ 2004; 14: 1-14.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221121&pid=S1316-7138201300010000600004&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  5. Instituto de Nutrición de Centro América y Panámá/  Organización Panaméricana de la Salud (INCAP/OPS).  Adaptación del Manual 5 Claves de la OMS para la  Inocuidad de los Alimentos en Escuelas Primarias de  Guatemala. Guatemala.2006. Disponible en:  <a href="http://www.who.int/foodsafety/consumer/Guatemala.pdfç">http://www.who.int/foodsafety/consumer/Guatemala.pdf.</a></font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221122&pid=S1316-7138201300010000600005&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">6. Alerte V, Cortés S, Díaz J, Vollaire J, Espinoza M, Solari V,  Cerda J, Torres M. Brotes de enfermedades transmitidas  por alimentos y agua en la Región Metropolitana, Chile  (2005-2010). Rev Chil Infect 2012; 29: 26-31.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221123&pid=S1316-7138201300010000600006&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  7. Scallan E, Griffi P, Angulo F, Tauxe R, Hoekstra R. Foodborne  Illness Acquired in the United States-Unspecified Agents.  Emerg Infect Dis 2011; 17: 16-22.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221124&pid=S1316-7138201300010000600007&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  8. Olsen SJ, Ying M, Davis MF, Deasy M, Holland B, Iampietro  L et alMultidrug-resistant Salmonella Typhimurium infection  from milk contaminated after pasteurization. Emerg Infect  Dis 2004; 10: 932-935.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221125&pid=S1316-7138201300010000600008&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  9. Araújo V, Pagliares V, Queiroz M, Freitas-Almeida A.  Occurrence of Staphylococcus and enteropathogens in soft  cheese commercialized in the city of Rio de Janeiro, Brazil.  J. Appl. 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Comparación del empleo de nisina y cultivos de  Lactococcus lactis subsp. lactis para la biopreservación de  queso blanco. Rev Cient FCV-LUZ 2009; 19: 201-209.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221128&pid=S1316-7138201300010000600011&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  12. Prieto M, Mouwen J, López S, Cerdeño A. Concepto de  calidad en la industria agroalimentaria. Interciencia 2008;  33: 258-264.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221129&pid=S1316-7138201300010000600012&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  13. Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN).  Norma Venezolana COVENIN: 938. Leche y productos  lácteos. Métodos para la toma de muestra. Caracas-  Venezuela. Fondonorma. 1983.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221130&pid=S1316-7138201300010000600013&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  14. Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN).  Norma Venezolana COVENIN: 902. Método para Recuento  de Microorganismos Aerobios en Placa de Petri. Caracas  Venezuela. 1987.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221131&pid=S1316-7138201300010000600014&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  15. American Public Health Association (A.P.H.A.). Compendium  of Methods for the Microbiological Examination of Foods.  3th. 3rd ed. 80 pp. Washington, USA. 1998.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221132&pid=S1316-7138201300010000600015&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  16. Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN).  Norma Venezolana COVENIN: 939. Leche y productos  derivados. Método de ensayo, reducción del azul de  metileno. Caracas-Venezuela. 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Estadística para Biología y Ciencias de la Salud. 3ª  ed. McGraw-Hill/ Interamericana de España, S.A.U. 2001.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221135&pid=S1316-7138201300010000600018&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  19. Calderón A, García F, Martínez G. Indicators of raw milk  quality in different regions of Colombia. Rev MVZ Córdoba  2006; 11:725-737.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221136&pid=S1316-7138201300010000600019&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  20 Da Silva A, Da Cunha M, Carneiro L, Almeida A, Queiroz M.  Isolation and serological identification of enteropathogenic  Escherichia coli in pasteurized milk in Brazil. Rev Saúde  Pública 2001; 35:375-379.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221137&pid=S1316-7138201300010000600020&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  21. Tahiri R. A. comparison on microbial conditions between  traditional dairy products sold in Jarak and same products  produced by modern dairies. Pakistan J Nut 2005; 4: 345-  348.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221138&pid=S1316-7138201300010000600021&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  22. Chatterjee N, Bhattacharjee I, Chatterjee S, Chandra G.  Microbiological examination of milk in Tarakeswar, India  with special reference to coliforms. Afric J Biotechnol  2006; 5: 1383-1385.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221139&pid=S1316-7138201300010000600022&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  23. Díaz S y Zambrano M. Calidad microbiológica de tres  marcas de leche pasteurizada expendidas en el Sector  la Cueva de San Cristóbal. Departamento de Ingeniería  de Producción Animal. Universidad Nacional Experimental  del Táchira UNET. San Cristóbal, Táchira, Venezuela.  2001.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221140&pid=S1316-7138201300010000600023&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  24. Comisión Venezolana de Normas Industriales (COVENIN)  Norma Venezolana COVENIN: 1086.Alimentos. Método  para el recuento de bacterias coliformes en placas de  Petri. Caracas-Venezuela. Fondonorma. 1977.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221141&pid=S1316-7138201300010000600024&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  25. Román S, Guerrero L, y Pacheco L. Evaluación de la  calidad fisicoquímica, higiénica y sanitaria de la leche  cruda almacenada en frío. Rev Cient FCV-LUZ 2003; 13:  146-152.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221142&pid=S1316-7138201300010000600025&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  26. Revelli G, Sbodio O, Tercero E. Recuento de bacterias  totales en leche cruda de tambos que caracterizan la zona  noroeste de Santa Fe y sur de Santiago del Estero. Rev  Argent Microbiol. 2004; 36: 145-149.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221143&pid=S1316-7138201300010000600026&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  27. Cepero O, Aguiar J, Pérez I. Efecto de los campos  magnéticos en la conservación de la leche cruda sin  refrigerar. REDVET 2005; 8: 1-12.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221144&pid=S1316-7138201300010000600027&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  28. Dávila J y Reyes O. Evaluación Microbiológica de las  diferentes etapas del proceso de elaboración de queso  tipo Gouda en una Industria Venezolana. ALAN 2006;  56:51-59.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221145&pid=S1316-7138201300010000600028&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  29. Srairi M Moudnib J, Rahho L, Hamama A. How do milking  conditions affect the hygienic quality of raw milk. Case  study from Moroccan dairy farms. Liv. Res. Rural. Develop.  2006; 18 (97). Disponible en:  <a href="http://www.lrrd.org/lrrd18/7/srai18097.htm">http://www.lrrd.org/lrrd18/7/srai18097.htm</a> </font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221146&pid=S1316-7138201300010000600029&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  30. Chen P, Chen W, Mao F. Rapid detection of Salmonella  thyphimurium in chicken carcass wash water using a  immunoelectrochemical method. J Food Prot 2003; 63:  1043-1048.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221147&pid=S1316-7138201300010000600030&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  31. Ramírez N, Hernández E, González Y. Aplicación del  sistema DIRALEC para la evaluación de la calidad  microbiológica de la leche en la provincia de Sancti spiritus.  VI congreso de la sociedad de cubana de Bioingeniería.  Julio 19-22; La Habana. 2005.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221148&pid=S1316-7138201300010000600031&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  32. Burdovà O, Baranovà M, Laukovà A, Rozanska H, Rola J.  Hygiene of pasteurized milk depending on psychrotrophic  microorganisms. Bull. Vet. Inst. Pulawy 2002; 46: 325-329.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221149&pid=S1316-7138201300010000600032&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --><!-- ref --><p align="justify"><font face="Verdana" size="2">  33. Fernández N, y Hernández E. Métodos de ensayos  rápidos de detección de microorganismos en la leche.  REDVET 2006; 7: 1-18.</font>&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;&nbsp;[&#160;<a href="javascript:void(0);" onclick="javascript: window.open('/scielo.php?script=sci_nlinks&ref=3221150&pid=S1316-7138201300010000600033&lng=','','width=640,height=500,resizable=yes,scrollbars=1,menubar=yes,');">Links</a>&#160;]<!-- end-ref --> ]]></body>
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